$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
تصنيع وتوصيف رقع CPG (الشكل 1)
في تجربة نموذجية ، تم تجميع جزيئات السيليكا النانوية أحادية التشتت ذاتيا من خلال تبخر المذيبات لتشكيل مصفوفات معبأة بشكل وثيق ، مما أدى إلى طلاء ألوان هيكلي (SCCs) 17،18،19 ، والتي تم استخدامها لاحقا لإنشاء رقع هيدروجيل ملونة هيكلية متعددة الوظائف ، كما هو موضح في الشكل 1. تضمنت العملية تسلل محلول ما قبل الهلام إلى الفجوات النانوية للخلايا النلوية قصيرة السلسلة عبر العمل الشعري. ثم تم استخدام بلمرة الأشعة فوق البنفسجية لتشكيل الفيلم الهجين من الخلايا المكلورة قصيرة الخلايا والهيدروجيل. بمجرد حفر الخلايا المكافئة قصيرة السلسلة بعيدا ، تم الحصول على سقالة حجرية عكسية مضادة للبروتين ذات بنية مسامية دورية. أخيرا ، تم ملء هيدروجيل GelMA المستجيب للحرارة في الفجوات النانوية للسقالة الحجرية المضادة للبروتين ، متبوعا بالمعالجة ، لإنشاء بقع CPG المستقلة.
نقلت شبكة التشابك القوية للهيدروجيل خصائص ميكانيكية ممتازة إلى بقع CPG. لوحظ أن البقع كانت صلبة بما يكفي لتحمل التمدد دون التسبب في أي ضرر ويمكن تمديدها حتى 2.5 ضعف طولها الأصلي. الأهم من ذلك ، أن رقع CPG أظهرت ألوانا هيكلية نابضة بالحياة وخضعت لتغييرات ديناميكية في اللون أثناء التمدد ، وهي ميزة فريدة ناتجة عن الترتيب الدوري للهياكل النانوية عالية الترتيب داخل البقع. تخلق هذه الهياكل النانوية فجوات النطاق الضوئي (PBGs) ، حيث ينعكس الضوء بأطوال موجية معينة داخل PBG بشكل انتقائي بدلا من نقله ، مما يمنح رقع CPG ألوانها الهيكلية المميزة وقمم الانعكاس.
يمكن تقدير موضع الانعكاس الأقصى لتصحيح CPG بالمعادلة20:
λ =متوسط 1.633dn
حيث d هي المسافة بين مستويات الحيود و nمتوسط هو متوسط معامل الانكسار للمادة ، والذي يتم حسابه على أنه متوسط معامل الانكسار للمكونات ، بما في ذلك GelMA hydrogel والمواد الأخرى المستخدمة في التصحيح. تشير هذه المعادلة إلى أنه مع تمدد الرقعة وانخفاض d ، ينخفض الطول الموجي للانعكاس ، مما يؤدي إلى تحول أزرق في اللون الهيكلي للرقعة. كما تم اختبار قوة الشد للبقع ، ووجد أن قدرة إجهاد البقع انخفضت بسبب ملء GelMA hydrogel في الفجوات النانوية لسقالة الحجر المضادة للبروتين. يوفر تشوه رقع CPG عند التمدد وسيلة حساسة للغاية للكشف عن الإجهاد ، مما يجعلها مناسبة للتطبيقات التي تتطلب مراقبة ميكانيكية.
السلوك المستجيب للحرارة والحساس للأس الهيدروجيني لبقع CPG (الشكل 2)
أظهرت بقع CPG خصائص رائعة مستجيبة للحرارة بسبب هيدروجيل GelMA. عند زيادة درجة حرارة البيئة إلى 37 درجة مئوية ، خضع الهيدروجيل للانكماش ، مما أدى إلى إطلاق جزيئات الماء والبضائع المحملة. أدى هذا الانكماش إلى انخفاض حجم المسام النانوية داخل رقع CPG ، مما أدى إلى تغيير PBG وبالتالي تغيير طيف الانعكاس. يوضح الشكل 2 هذا السلوك ، موضحا كيف يتغير اللون الهيكلي للبقع استجابة للتغيرات في درجة الحرارة ودرجة الحموضة.
لتأكيد هذه الملاحظات ، تم وضع بقع CPG في بيئة محاكاة جرح العدوى المزمنة عند 37 درجة مئوية ودرجة الحموضة 7.2. مع زيادة درجة الحموضة في المحلول ، لوحظ تحول أزرق في ذروة الانعكاس لبقع CPG ، مما يشير إلى انخفاض حجم المسام النانوية. على العكس من ذلك ، عندما انخفض الرقم الهيدروجيني ، أظهرت البقع انححاما أحمر ، يتوافق مع توسع المسام النانوية. يعزى هذا السلوك الحساس للأس الهيدروجيني إلى التحلل المائي لروابط إستر البورونات في CSMA-PBA في ظل الظروف الحمضية ، مما أدى إلى كسر الروابط وأدى إلى تحول أحمر للون الهيكلي. ومع ذلك ، عندما كان الرقم الهيدروجيني قلويا ، لم يلاحظ أي تغيير كبير في اللون ، مما يشير إلى استقرار البقع في الظروف الأساسية. تشير هذه النتائج إلى أنه يمكن استخدام لصقات CPG لمراقبة كل من تغيرات درجة الحرارة ودرجة الحموضة في بيئات الجرح ، وهو أمر بالغ الأهمية للإدارة الفعالة للجروح.
النشاط المضاد للبكتيريا لبقع CPG (الشكل 3)
تم تقييم الخصائص المضادة للبكتيريا لبقع CPG من خلال استزراعها مع S. aureus و E. coli. يوضح الشكل 3 أ ، ب أن بقع CPG قللت بشكل كبير من نمو البكتيريا ، مما يدل على خصائصها الفعالة المضادة للبكتيريا. تعزى هذه الفعالية المضادة للبكتيريا إلى التفاعل الكهروستاتيكي بين سطح CMCSMA موجب الشحنة للبقع وجدران الخلايا البكتيرية سالبةالشحنة 21. أدى هذا التفاعل إلى تعطيل بنية الغشاء البكتيري ، مما أدى إلى موت البكتيريا. يمكن أن ترتبط المجموعات الموجبة ل CMCSMA بالمكونات الأنيونية في الغشاء البكتيري ، مما يؤدي إلى إزالة استقطاب الغشاء وزيادة النفاذية22. علاوة على ذلك ، نظرا لحجمها الجزيئي الصغير نسبيا وسلاسلها البوليمرية المرنة ، يمكن ل CMCSMA اختراق الطبقة الدهنية الثنائية بشكل أكثر فعالية ، مما يتسبب في تسرب المواد داخل الخلايا والتداخل مع نشاط التمثيل الغذائي. سهل الحجم الصغير لجزيئات CMCSMA تغلغلها في غشاء الخلية البكتيرية ، حيث تفاعلت مع الجزيئات الحيوية الأساسية ، مما أدى إلى تعطيل التمثيل الغذائي البكتيري وأنظمة الإنزيم23. بالإضافة إلى ذلك ، بالنظر إلى القدرة القوية على تشكيل الأغشية الحيوية ل S. aureus ، تجدر الإشارة إلى أن المواد القائمة على الكيتوزان مثل CMCSMA قد تم الإبلاغ عن أنها تعطل الأغشية الحيوية البكتيرية عن طريق اختراق مصفوفة المادة البوليمرية خارج الخلية (EPS) والتدخل في سلامتها. يتيح ذلك للعوامل المضادة للبكتيريا الوصول إلى البكتيريا المضمنة في الأغشية الحيوية وقتلها ، والتي عادة ما تكون مقاومة للمضادات الحيوية التقليدية24،25. كما هو موضح في الشكل 3 أ ، توضح المقارنة المرئية للمستعمرات البكتيرية بوضوح انخفاضا كبيرا بعد العلاج ببقع CPG ، مما يسلط الضوء على نشاطها الفعال للجراثيم وإمكاناتها الواعدة لاستخدامها في بيئات الجروح المعرضة للعدوى.
الوظيفة البيولوجية لبقع CPG (الشكل 4)
أظهرت لصقات CPG وظائف بيولوجية كبيرة بالإضافة إلى خصائصها المضادة للبكتيريا. يوضح الشكل 4C ، D أن البقع قامت بشكل فعال بمسح أنواع الأكسجين التفاعلية (ROS) داخل الخلايا ، كما يتضح من انخفاض إشارة التألق الخضراء في مجموعة CPG. يعد تنظيف أنواع الأكسجين التفاعلية أمرا ضروريا في التئام الجروح ، حيث يمكن أن يؤدي الإنتاج المفرط لأنواع الأكسجين التفاعلية إلى إضعاف تجديد الأنسجة. تم تقييم جدوى الخلايا البطانية للأوردة السرية البشرية (HUVECs) المزروعة بشكل مشترك مع بقع CPG باستخدام تلطيخ الجدوى ، كما هو موضح في الشكل 4 أ. أشارت النتائج إلى أن غالبية الخلايا كانت على قيد الحياة ، مع وجود نسبة صغيرة فقط من الخلايا الميتة ، مما يشير إلى أن بقع CPG تعزز بقاء الخلية وتدعم تكاثر الخلايا.
يوضح الشكل 4 ب نتائج مقايسة MTT ، والتي أظهرت أن بقع CPG عززت بشكل كبير تكاثر الخلايا. علاوة على ذلك ، أظهر الشكل 4F ، G أن بقع CPG عززت تكوين الأوعية الدموية من خلال تعزيز التعبير عن عامل نمو بطانة الأوعية الدموية (VEGF) وعامل نمو الخلايا الليفية الأساسي (bFGF) ، وهما ضروريان لتكاثر الخلايا البطانية وتكوين الأوعية الدموية الجديدة. تسلط هذه النتائج الضوء على إمكانات لصقات CPG ليس فقط في منع العدوى ولكن أيضا لتعزيز تجديد الأنسجة وتسريع التئام الجروح.
التقييم في الجسم الحي لبقع CPG (الشكل 5)
أظهرت التجارب في الجسم الحي التي أجريت باستخدام نموذج التهاب العظم والنقي المزمن أن بقع CPG قللت بشكل كبير من العدوى والالتهابات. يوضح الشكل 5 أ التحليل النسيجي (تلطيخ H & E) ، حيث أظهرت المجموعة الضابطة التهابا مميزا ، وتدمير العظام ، والأنسجة الميتة ، والتسلل العالي للخلايا الدفاعية ، بينما أظهرت مجموعة العلاج انخفاضا كبيرا في العدوى والالتهاب وتسلل الخلايا الدفاعية. في مجموعة CPG ، لوحظ زيادة هجرة بانيات العظم ، وتحويل بانيات العظم إلى خلايا عظمية ، وتكوين الأوعية الدموية ، وتكوين عظام جديدة ، وتقليل العدوى ، مما يؤكد بشكل أكبر فعالية بقع CPG في تعزيز تجديد الأنسجة.
بالإضافة إلى ذلك ، يوضح الشكل 5 ب تلطيخ تكوين الأوعية الدموية ، مما يؤكد أن بقع CPG عززت تكوين أوعية دموية جديدة ، وهو أمر بالغ الأهمية لإصلاح الأنسجة. تشير هذه النتائج إلى أن لصقات CPG تلعب دورا مزدوجا في كل من السيطرة على العدوى وتعزيز تجديد الأنسجة ، مما يجعلها مناسبة للغاية لتطبيقات التئام الجروح المزمنة وتجديد العظام.

الشكل 1: تحضير وتوصيف رقعة هيدروجيل اللون الهيكلي (CPG). (أ): التفاعل بين CSMA و PBA ؛ (ب): صورة CPG ، توضح تغير اللون عند التمدد ؛ (ج): توصيف SEM ل CPG؛ (د): سلوك تورم CPG. (ه): ملامح تدهور CPG؛ (و): حركية إطلاق الدواء من CPG. شريط المقياس: 100 نانومتر. تمثل أشرطة الخطأ الانحراف المعياري (SD). تم استخدام ستة فئران في المجموعة التجريبية. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 2: الاستشعار الذكي لرقعة CPG. (أ): اختلاف اللون الهيكلي لرقعة CPG مع التغيرات في درجة الحرارة البيئية ودرجة الحموضة ؛ (ب): التحليل الطيفي لرقعة CPG في درجات حرارة مختلفة؛ (ج): التحليل الطيفي لرقعة CPG عند مستويات مختلفة من الأس الهيدروجيني. شريط المقياس: 1 مم. تمثل البيانات متوسط ± SD ، تم تحليلها باستخدام ANOVA أحادي الاتجاه مع اختبار Tukey اللاحق. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 3: النشاط المضاد للبكتيريا لرقعة CPG. (أ): صور تمثيلية للاستزراع المشترك للمكورات العنقودية الذهبية والإشريكية القولونية مع رقعة CPG ؛ (ب): تحليل قيم الكثافة الضوئية (OD). شريط المقياس: 5 مم. تمثل أشرطة الخطأ SD. تم تحديد الدلالة الإحصائية بواسطة ANOVA أحادي الاتجاه مع اختبار Tukey اللاحق. تم استخدام ستة تكرارات لكل مجموعة. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 4: التقييم الوظيفي البيولوجي لرقعة CPG. (أ): تلطيخ قابلية البقاء لخلايا HUVEC المزروعة بالاشتراك مع رقعة CPG لمدة 48 ساعة ، وتظهر الخلايا الحية (الخضراء) والخلايا الميتة (الحمراء) ؛ (ب): تكاثر الخلايا المقاس بمقايسة MTT ؛ (ج): تلطيخ ROS لرقعة CPG ؛ (د): معدل التنظيف في DPPH في مجموعة VEGF؛ (ه): تحليل q-PCR للعوامل الالتهابية. (و): تعزيز تكوين الأوعية الدموية عن طريق رقعة CPG؛ (ز): نتائج اللطخة الغربية لتعبير VEGF و bFGF؛ (ح): التحليل الإحصائي لقيم التدرج الرمادي ل VEGF و bFGF. شريط المقياس: 100 ميكرومتر. تمثل أشرطة الخطأ SD. تم تحليل البيانات باستخدام ANOVA أحادي الاتجاه مع اختبار Tukey اللاحق. تم استخدام ستة فئران في كل مجموعة. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 5: تجارب في الجسم الحي لرقعة CPG. (أ): تلطيخ HE. (ب): تلطيخ تكوين الأوعية. شريط المقياس: 100 ميكرومتر. تمثل البيانات متوسط ± SD ، تم تحليلها بواسطة ANOVA أحادي الاتجاه مع اختبار Tukey اللاحق. احتوت كل مجموعة على 6. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.