تمت مراجعة بروتوكول الدراسة والموافقة عليه من قبل لجنة أخلاقيات التجارب على بجامعة هيلونغجيانغ للطب الصيني (الموافقة # 2023021101). تم إجراء جميع التجارب على وفقا لإرشادات ARRIVE (البحوث الحيوانية: الإبلاغ عن التجارب في الجسم الحي) والمبادئ التوجيهية الوطنية والمؤسسية ذات الصلة لرعاية واستخدام المختبر. نظرا لأن هذه الدراسة تضمنت تجارب على ، فإن الموافقة المستنيرة لم تكن قابلة للتطبيق. تلتزم جميع إجراءات تربية وحصاد الفراء بشكل صارم باللوائح الفنية الصينية لإدارة تربية البرية. تمت الموافقة على الدراسة من قبل لجنة أخلاقيات التجارب على بجامعة هيلونغجيانغ للطب الصيني ، الصين (الموافقة # 2023021101).
تحضير عينة الصفراء الثعلب الأزرق
يتم توفير مورد صفراء الثعلب الأزرق في جدول المواد. تم القتل الرحيم لما مجموعه 30 ثعبا أزرق (Vulpes lagopus) بصدمة كهربائية ، تليها حصاد الفراء وجمع المرارة. المرارة الثعلب الأزرق بيضاوية الشكل ، مع قسم علوي ضيق وقسم سفلي منتفخ. سطحه الخارجي بني غامق مع طيات مرئية ، وغشاء الكبسولة رقيق. تم شفط الصفراء على الفور باستخدام حقنة معقمة يمكن التخلص منها سعة 1 مل وظهرت لونها أسود داكن أو أخضر داكن. ثم تم تجفيف المرارة عند 37 درجة مئوية لمدة 48 ساعة للحصول على مسحوق صفراء الثعلب الأزرق المجفف (الشكل 1). أظهر مسحوق الصفراء الناتج لونا أصفر-بني مع ملمس لامع وقابل للتفتيت. كان متوسط محصول مسحوق الصفراء المجفف لكل مرارة حوالي 0.82 ± 0.30 جم. لتحضير العينة ، تم إذابة 250 مجم من مسحوق الصفراء المجففة إما من الثعلب الأزرق (كما هو موضح أعلاه) أو الدب (انظر جدول المواد) في 1 مل من 70٪ ميثانول كروماتوغرافيا. تم صوتنة الحل بالموجات فوق الصوتية (40 كيلو هرتز ، 300 واط) ، وتم تصفيته من خلال غشاء 0.22 ميكرومتر ، وتخفيفه إلى حجم نهائي يبلغ 50 مل (أي إلى 5 مجم / مل) ، ويتم تخفيفه إلى تركيز عمل قدره 0.5 مجم / مل للتحليل اللاحق. يتم تلخيص سير العمل التجريبي العام في الشكل التكميلي 1.
في هذه الدراسة ، كان نطاق جرعة مسحوق الصفراء الثعلب الأزرق المستخدم في التجارب على 5-10 جم / كجم بناء على تقييمات السمية السابقة والدراسات الدوائية ، مع عدم ملاحظة أي آثار ضارة كبيرة عند هذه التركيزات14،15. أثناء تحضير مسحوق الصفراء ، تم تجفيف المرارة عند 37 درجة مئوية لمدة 48 ساعة ؛ ومع ذلك ، قد يختلف وقت التجفيف اعتمادا على الرطوبة المحلية وحجم العينة ، وبالتالي يجب فحص محتوى الرطوبة لضمان الجفاف الكامل. للذوبان ، كان تركيز 5 مجم / مل في الميثانول من الدرجة الكروماتوغرافية هو الأمثل لتحليلات HPLC و UPLC-Q-TOF-MS. قد يؤثر الذوبان غير المكتمل أو بقايا الجسيمات على الدقة التحليلية ، مما يتطلب صوتنة أو ترشيح إضافي. من القيود المعروفة التباين في تكوين الصفراء بسبب الاختلافات الفسيولوجية الموسمية والغذائية والفردية بين الثعالب الزرقاء ، والتي يمكن أن تؤثر على الوفرة النسبية للمركبات النشطة مثل TUDCA و UDCA16. لذلك ، يوصى بالتحقق من صحة الدفعات عن طريق التنميط الكروماتوغرافي قبل الاستخدام الدوائي لضمان ملفات تعريف المكونات المتسقة.
التحليل الدوائي الشبكي
تم تحليل التركيب الكيميائي لصفراء الثعلب الأزرق باستخدام الكروماتوغرافيا السائلة عالية الأداء (انظر جدول المواد) والكروماتوغرافيا السائلة فائقة الأداء إلى جانب قياس الطيف الكتلي رباعي الأقطاب لوقت الطيران (UPLC-Q-TOF-MS). تم إجراء HPLC باستخدام عمود SB-C18 (4.6 مم × 150 مم ، 5 ميكرومتر) مع طور متحرك يتكون من 0.03 M فوسفات ثنائي هيدروجين الصوديوم (تم تعديل الرقم الهيدروجيني إلى 4.4 باستخدام حمض الفوسفوريك) كمرحلة A والميثانول (انظر جدول المواد) كمرحلة ب (الجدول 1). تم ضبط الطول الموجي للكشف عند 210 نانومتر ، مع معدل تدفق طور متحرك يبلغ 1.0 مل / دقيقة ، وكانت درجة حرارة العمود 40 درجة مئوية. كان حجم الحقن 10 ميكرولتر. تم إجراء تحليل UPLC-Q-TOF / MS باستخدام عمود UPLCTM HSS T3 (انظر جدول المواد). تتكون المرحلة المتحركة من محلول مائي من حمض الفورميك -0.1٪ (B ؛ انظر جدول المواد). كان برنامج شطف التدرج على النحو التالي: 0-25.0 دقيقة ، 98٪ -2٪ A ، و 25.0-28.0 دقيقة ، 2٪ -2٪ A بمعدل تدفق 4 مل / دقيقة. تم الحفاظ على درجة حرارة العمود عند 35 درجة مئوية. تم إجراء قياس الطيف الكتلي باستخدام مصدر تأين الرش الكهربائي (ESI) مع المعلمات التالية: معدل تدفق غاز المذيب 650 لتر / ساعة ، درجة حرارة غاز المذيب 350 درجة مئوية ، معدل تدفق الغاز المخروطي 50 لتر / ساعة ، درجة حرارة مصدر الأيون 120 درجة مئوية ، جهد شعري 2.8 كيلو فولت (وضع الأيون الموجب) و 2.0 كيلو فولت (وضع الأيون السالب) ، جهد مخروطي 25 فولت ، وطاقة تصادم 6 فولت. تم جمع الأطياف كل 0.2 ثانية بفاصل 0.02 ثانية. Leucine-enkephalin (انظر جدول المواد; [M + H] + = 556.2771) كمحلول معايرة مرجعي بتركيز 40 fmol / μL ومعدل تدفق 15 ميكرولتر / دقيقة17.
تحليل التركيب الكيميائي والتنبؤ بالهدف
تم تحديد المكونات النشطة لصفراء الثعلب الأزرق باستخدام HPLC و UPLC-Q-TOF / MS ، مع حمض الأوروكوليك والصوديوم tauroursooxycholate (انظر جدول المواد) كمعايير داخلية18. تم استرداد الصيغ الهيكلية للمركبات المحددة من قاعدة بيانات PubChem (https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/). لاستكشاف الأهداف النشطة بيولوجيا المحتملة ، تم الاستعلام عن المكونات النشطة لصفراء الثعلب الأزرق في قاعدة بيانات PharmMapper (http://www.lilab-ecust.cn/pharmmapper/) لتحديد الأهداف الجينية المرتبطة.
باستخدام إصابة الكبد الكحولية وإصابات الكبد الناجمة عن الكحول ككلمات رئيسية ، تم الحصول على الجينات المرتبطة بالأمراض من قواعد بيانات GeneCards (https://www.genecards.org/) و OMIM (https://omim.org/). في قاعدة بيانات GeneCards ، تم فحص الأهداف وفقا لدرجة الملاءمة ، مع تحديد عتبة عند 20 ≥. يضمن هذا القطع التجريبي شائع الاستخدام توازنا بين الحساسية والخصوصية ، والاحتفاظ بمعظم الجينات ذات الصلة المحتملة (استدعاء عالي) أثناء تصفية الجينات ذات الصلة الضعيفة أو الصاخبة (دقة عالية). في المقابل ، لم يتم تطبيق أي تصفية إضافية في قاعدة بيانات OMIM ، لأنها تلتقط الأهداف ذات الأدلة الجينية القوية ، وبالتالي تكمل درجات الملاءمة الحسابية ل GeneCards. تم دمج البيانات المستهدفة التي تم الحصول عليها وتكرارها لتحديد الأهداف المتعلقة ب ALD. تمت مقارنة أهداف العنصر النشط وأهداف المرض باستخدام Venny 2.1.0 (https://bioinfogp.cnb.csic.es/tools/venny/index.html) للتصور. تم تحديد التقاطعات كأهداف محتملة لصفراء الثعلب الأزرق ضد ALD وتم استيرادها إلى قاعدة بيانات STRING (http://version10.string-db.org/). في قاعدة بيانات STRING ، تم إنشاء شبكة التفاعل باستخدام المعلمات الافتراضية (درجة ثقة متوسطة ≥ 0.4) ، وتم إخفاء العقد الحرة لتحسين وضوح التصور. تم إخفاء العقد الحرة لإنشاء مخطط شبكة تفاعل البروتين والبروتين (PPI) ، والذي تم تصوره باستخدام برنامج Cytoscape (الإصدار 3.9.1). تم إجراء التحليل الطوبولوجي لحساب قيم الدرجة ، وتم تحديد الأهداف الستة ذات أعلى قيم الدرجة باستخدام قاعدة بيانات التعليقات التوضيحية والتصور والاكتشاف المتكامل (DAVID ، https://david.ncifcrf.gov/) مع عتبة دلالة تبلغ p < 0.05. تم استخدام قاعدة بيانات موسوعة كيوتو للجينات والجينوم (KEGG) لتحليل إثراء المسار.
الإرساء الجزيئي
تم إجراء الإرساء الجزيئي لتقييم التفاعلات بين البروتينات المستهدفة الأساسية والمكونات النشطة بيولوجيا لصفراء الثعلب الأزرق. تم استرداد الهياكل ثلاثية الأبعاد للبروتينات المستهدفة الأساسية من بنك بيانات البروتين التعاوني للمعلومات الحيوية الهيكلية (RCSB) (https://www.rcsb.org/) ، وتم الحصول على هياكل مكونات الصفراء من قاعدة بيانات PubChem (https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/). تم إجراء محاكاة الإرساء باستخدام برنامج بيئة التشغيل الجزيئية (MOE) (الإصدار 2022.02). بالنسبة إلى AKT1 ، تم تنزيل الهيكل البلوري (معرف PDB: 4EKL) ، وشملت المعالجة المسبقة في وزارة التربية والتعليم إزالة جزيئات الماء والروابط الأصلية ، وإضافة الهيدروجين مع البروتون عند درجة الحموضة الفسيولوجية (7.0) ، وتقليل الطاقة. تم استرداد هياكل الترابط (TUDCA و UDCA و TCDCA و TCA و BILIRUBIN) من PubChem وتقليل الطاقة قبل الالتحام. أثناء عملية الإرساء ، تم إنشاء مطابقات متعددة لليجند ، وتم وضع كل شكل في جيب ربط المستقبل في اتجاهات مكانية مختلفة. تم إجراء الإرساء باستخدام بروتوكول Induced Fit ، مع London dG للموضع الأولي و Affinity dG كوظيفة تسجيل النقاط. تم إنشاء ثلاثين مطابقة لكل رابط ، وتم تحسين الأوضاع النهائية عن طريق تحسين مجال القوة. تم تعيين جميع المعلمات الأخرى على الإعدادات الافتراضية لوزارة التربية والتعليم دون مزيد من الضبط الدقيق. تم تقييم التقارب بين كل شكل ليجند والمستقبل باستخدام وظيفة تسجيل البرنامج. تم تقييم نتائج الإرساء عن طريق ربط الطاقة الحرة ، مع اختيار أكثر أشكال الطاقة السلبية في أكبر مجموعة كوضع ربط تمثيلي. تم اختيار وضع الربط مع أقوى تقارب وتشكل مثالي للتصور. تشير قيم التقارب التي تقل عن -4.25 كيلو كالوري / مول إلى ارتباط هدف الترابط ، وتشير القيم التي تقل عن -5.0 كيلو كالوري / مول إلى ارتباط معتدل ، وتشير القيم التي تقل عن -7.0 كيلو كالوري / مول إلى تقارب ربط قوي 19.
نماذج الماوس من ALD
في هذه الدراسة ، تم شراء 30 فأر كونمينغ محدد خال من مسببات الأمراض (SPF) (18-22 جم ، 6-8 أسابيع ، 15 ذكرا ، 15 أنثى). تم إيواء في ظروف خاضعة للرقابة عند 25 ± 2 درجة مئوية مع رطوبة نسبية تتراوح بين 60٪ ± 10 ٪ ، مع إمكانية الوصول إلى الغذاء والماء. قبل التجربة ، تأقلمت الفئران لمدة أسبوع واحد.
تم إنشاء نموذج ALD على النحو التالي. تم تحضير محلول إيثانول 70٪ من حجم / حجم عن طريق قياس 70.21 مل من الإيثانول اللامائي في قارورة حجمية وإضافة ماء فائق النقاء إلى الحجم النهائي البالغ 100 مل. تم تقليب المحلول باستخدام محرك مغناطيسي لمدة 1 دقيقة وسمح له بالوقوف لمدة 5 دقائق حتى لم يلاحظ أي فصل مرحلي. كانت جرعة التزقيم 2 مل / كغ من وزن الجسم ، تعطى مرة واحدة يوميا لمدة 7 أيام متتالية. في صباح اليوم 7 ، بعد 4 ساعات من التزقيم النهائي ، تم جمع عينات الدم وأنسجة الكبد لمزيد من التحليل. تم تأكيد إنشاء النموذج من خلال تقييم المؤشرات النموذجية لإصابة الكبد. تم قياس مستويات مصل ألانين أمينوترانسفيراز (ALT) وأسبارتات أمينوترانسفيراز (AST) والكوليسترول الكلي (T-CHO) ومالونديالديهايد (MDA). بالإضافة إلى ذلك ، خضعت أنسجة الكبد للفحص النسيجي المرضي باستخدام تلطيخ الهيماتوكسيلين والإيوزين (H & E) لتقييم مورفولوجيا خلايا الكبد ، والفجوة السيتوبلازمية ، والنخر ، وتسلل الخلايا الالتهابية. تم تقسيم الفئران بشكل عشوائي إلى خمس مجموعات (ن = 6 لكل مجموعة): تلقت المجموعة الضابطة الفارغة 2 مل / كجم من الماء المقطر. تلقت المجموعة النموذجية 2 مل / كجم 70٪ إيثانول بدون معالجة ؛ تم إعطاء مجموعة المراقبة الإيجابية أقراص موقية للكبد عند 0.4 جم / كغ (انظر جدول المواد) ؛ تم إعطاء جرعة عالية من مجموعة مسحوق الصفراء الثعلب الأزرق 10 جم / كجم من مسحوق الصفراء الثعلب الأزرق. تم إعطاء جرعة منخفضة من مجموعة مسحوق الصفراء الثعلب الأزرق 5 جم / كغ مسحوق الصفراء الثعلب الأزرق. تم إعطاء جميع المجموعات باستثناء العنصر الشاهد عن طريق الفم 70٪ إيثانول (2 مل / كغ) مرة واحدة يوميا لمدة 7 أيام متتالية للحث على إصابة الكبد الكحولية. في اليوم 7 ، 4 ساعات بعد إعطاء الإيثانول ، تم إعطاء العلاجات ذات الصلة (أقراص كبدية أو مسحوق صفراء الثعلب الأزرق) ، وأجريت التجارب اللاحقة. تلقت المجموعة الضابطة الفارغة الماء المقطر طوال التجربة.
قياس الترانسامينازات المصل (ALT و AST) ومجموعة الكوليسترول الكلي (T-CHO)
تم طرد عينات الدم عند 1,000 × جم لمدة 15 دقيقة عند 4 درجات مئوية للحصول على المصل. تم تخزين العينات عند -20 درجة مئوية حتى التحليل. تم استخدام المجموعات التجارية لقياس مستويات ALT و AST و T-CHO (انظر جدول المواد) وفقا لتعليمات الشركة المصنعة.
مراقبة وزن الجسم
بعد 7 أيام متتالية من إعطاء الإيثانول ، تم إعطاء العلاجات في اليوم 7 ، وأجريت التجارب بعد 4 ساعات من الجرعات الصباحية. تم تسجيل وزن الجسم 2x يوميا خلال فترة المراقبة. تم قياس وزن الجسم غير الصائم باستخدام ميزان تحليلي إلكتروني في الأيام 1 و 2 و 3 و 5 و 7 و 10 و 14 بعد الإعطاء.
معالجة عينات الأنسجة
في اليوم 14 بعد الإعطاء ، تم تسجيل وزن الجسم وكمية الطعام المتبقية. ثم صيام في فترة ما بعد الظهر مع حرية الوصول إلى الماء. في اليوم التالي (بعد فترة صيام من 12-16 ساعة) ، تم قياس وزن الجسم الصائم قبل القتل الرحيم عن طريق خلع عنق الرحم. تم إجراء الفحوصات المرضية العيانية لتقييم التغيرات المورفولوجية في الأعضاء الرئيسية ، بما في ذلك على سبيل المثال لا الحصر القلب والكبد والطحال والرئتين والكلى والغدد الكظرية والدماغ والمعدة والأمعاء والخصيتين والبروستاتا والمبيض والرحم. تم جمع عينات الأنسجة من القلب والكبد والطحال والرئتين والكلى والمعدة والأمعاء بشكل عشوائي من مجموعة التحكم الفارغة (CN) ومجموعة الصفراء الثعلب الأزرق ذات الجرعة المنخفضة (LH) ، مثبتة في 4٪ بارافورمالديهايد ، مضمنة في البارافين ، مقسمة ، وملطخة بالهيماتوكسيلين والإيوزين (H & E) للتقييم النسيجي المرضي. تم فحص أقسام الأنسجة وتصويرها تحت المجهر.
تلطيخ H & E
تم تثبيت عينات الكبد بنسبة 4٪ بارافورمالديهايد في محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS) ، مضمن في البارافين ، ومقسمة. تم إزالة البارافين من الأقسام في الزيلين الأول والثاني ، وإعادة ترطيبها بتركيزات الإيثانول الهابطة (100٪ ، 95٪ ، 85٪ ، و 75٪) ، وغسلها بالماء ، وتمييزها ، وغسلها مرة أخرى ، وزرقها باستخدام محلول الازرقاء. بعد الشطف ، تم تجفيف الأقسام في 85٪ و 95٪ من الإيثانول لمدة 5 دقائق لكل منهما ، وتلطيخها باليوزين لمدة 5 دقائق ، وتجفيفها في الإيثانول اللامائي الأول والثاني والثالث (5 دقائق لكل منهما). أخيرا ، تم مسح الأقسام في الزيلين الأول والثاني (5 دقائق لكل منهما) وتركيبها بصمغ محايد. تم التقاط الصور باستخدام مجهر ضوئي (100x).
تحديد مالونديالديهايد (MDA) في أنسجة الكبد
تم تجانس عينات الكبد في 9 مجلدات من المحلول الملحي الفسيولوجي باستخدام مطحنة الأنسجة. تم طرد المتجانس عند 700 × جم لمدة 10 دقائق عند 4 درجات مئوية. تم إجراء فحص MDA على المادة الطافية باستخدام مجموعة تجارية (انظر جدول المواد) وفقا لتعليمات الشركة المصنعة.
التحليل الإحصائي
يتم تقديم البيانات كوسيلة ± الانحرافات المعيارية (SDs). تم إجراء مقارنات المجموعة باستخدام تحليل التباين (ANOVA) متبوعا باختبار لاحق للفرق الأقل دلالة (LSD). اعتبرت قيم p على الوجهين <0.05 ذات دلالة إحصائية.