يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

المراقبة في الوقت الحقيقي للديناميكيات التي يسببها الوخز بالإبر في النسيج الضام تحت الجلد عبر التصوير متحد البؤر بالليزر في الجسم الحي

559 مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/69173

⸱

أكتوبر 10, 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Institute of Acupuncture and Moxibustion, Jianghan University, 2School of Medicine, Jianghan University, 3Institute of Acupuncture and Moxibustion, China Academy of Chinese Medical Sciences

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

تؤسس هذه الدراسة التصوير متحد البؤر بالليزر في الجسم الحي كطريقة في الوقت الفعلي لتتبع الديناميكيات المورفولوجية الناجمة عن الوخز بالإبر ، مثل توسع الأوعية وإعادة تشكيل الكولاجين ، في الفئران الحية. باستخدام وضع العلامات على الصوديوم بالفلوريسين ، يلتقط النهج استجابات الأنسجة الفورية والمتأخرة ، مما يوفر أداة جديدة للتقييم الكمي للعلاجات الفيزيائية ، بما في ذلك الوخز بالإبر والتكسي.

الملخص

تعد المراقبة الديناميكية في الوقت الفعلي لتأثيرات الوخز بالإبر أمرا بالغ الأهمية لتوضيح آلياتها البيولوجية ، ومع ذلك تفشل الأساليب النسيجية التقليدية في التقاط الاستجابات العابرة في البيئة المكروية الحية. هنا ، أنشأنا إطارا منهجيا يعتمد على التصوير متحد البؤر بالليزر في الجسم الحي ، مما يتيح المراقبة عالية الدقة في الوقت الفعلي للتغيرات المورفولوجية في الأنسجة المحلية بعد التدخل في الوخز بالإبر. بعد الحقن الوريدي لفلورسين الصوديوم في الفئران ، تم تتبع التغيرات الديناميكية في دوران الأوعية الدقيقة والمصفوفة خارج الخلية (على سبيل المثال ، ترتيب ألياف الكولاجين) أثناء الوخز بالإبر. أظهرت النتائج أن هذه الطريقة ميزت بوضوح تفاعلات الأنسجة الفورية (على سبيل المثال ، توسع الأوعية) والمتأخرة (على سبيل المثال ، الاستجابة الالتهابية) الناتجة عن الوخز بالإبر ، بدقة مكانية تبلغ 0.5 ميكرومتر ودقة زمنية تبلغ 3.5 إطارا في الثانية. مكن التحليل الكمي اللاحق من القياس الموضوعي للمعلمات المورفولوجية. يوفر هذا البروتوكول ، الموصوف في هذه الدراسة ، أداة تصور للدراسات في الجسم الحي لآليات الوخز بالإبر ويعمل كمرجع تقني لتقييم تأثيرات المحفزات الفيزيائية الأخرى (على سبيل المثال ، الوكسي).

المقدمة

الوخز بالإبر ، باعتباره حجر الزاوية في الطب التقليدي ، يمارس تأثيرات علاجية من خلال الاستجابات المعقدة على مستوى الأنسجة1،2،3،4. ومع ذلك ، تظل الرؤى الميكانيكية محدودة بالأنسجة التقليدية ، التي تلتقط لقطات ثابتة ولكنها تفشل في حل ديناميكيات الوقت الفعلي للتكيفات المورفولوجية (على سبيل المثال ، تعديل الأوعية الدموية ، وإعادة تشكيل المصفوفة خارج الخلية) في الأنسجة الحية5. في حين أن الفحص المجهري داخل الحيوية يوفر إمكانات تصوير ديناميكية ، فإن تطبيقه في أبحاث الوخز بالإبر نادر ، لا سيما لقياس الاستجابات الزمانية المكانية للمنبهاتالجسدية 6،7. في المقابل ، يتيح نهج التصوير متحد البؤر هذا الاستخراج الكمي للمعلمات الهيكلية والديناميكية - مثل معدل التغيير في سرعة حركة خلايا الدم الحمراء وترتيب الكولاجين - في الأنسجة العميقة (على سبيل المثال ، طبقات العضلات ونقاط الوخز ST 36 / GB 34) ، والتغلب على قيود الفحص المجهري التقليدي داخل الحيوية في الدقة المكانية ، والتصوير الحجمي ، والتتبع طويل المدى8.

ظهر التصوير متحد البؤر بالليزر كأداة قوية للتصور في الجسم الحي بالدقة الخلوية9،10،11،12،13. ومع ذلك ، تركز الدراسات الحالية بشكل أساسي على الأنسجة السطحية (مثل الجلد أو القرنية) ، مع القليل منها يتناول أهداف الوخز بالإبر العميقة أو دمج التحليل المورفولوجي الكمي. بشكل حاسم ، على حد علمنا ، لا توجد منهجية موحدة لربط التلاعب بالوخز بالإبر بالتغيرات الحركية للأنسجة الحية.

هنا ، نقوم بسد هذه الفجوة من خلال إنشاء منصة منهجية قائمة على التصوير متحد البؤر لتتبع الأحداث المورفولوجية الناجمة عن الوخز بالإبر في الوقت الفعلي. باستخدام فلورسين الصوديوم (يدار عن طريق الوريد بتركيز 1٪ ، 0.1 مل / 100 جم من وزن الجسم) كعامل تباين ، نحقق مراقبة عالية الدقة (0.5 ميكرومتر دقة مكانية / 3.5 إطارا في الثانية) لتغيرات الدورة الدموية الدقيقة والمصفوفة عبر مجال رؤية 450 ميكرومتر × 450 ميكرومتر على عمق يصل إلى 400 ميكرومتر - من توسع الأوعية الفوري إلى شلالات التهابية متأخرة - أثناء تحفيز الوخز بالإبر. يتيح هذا النهج أيضا إعادة البناء ثلاثي الأبعاد وقياس المعلمات لإعادة تنظيم ألياف الكولاجين ، والتغلب على قيود أنسجة نقطة النهاية.

الاعتبارات العملية لتنفيذ هذا البروتوكول هي (أنا) تتضمن الأجهزة الموصى بها نظاما متحد البؤر بدقة ≥0.5 ميكرومتر ومعدل اكتساب ≥3 إطارا في الثانية ، (2) تشمل القيود النموذجية التبييض الضوئي بعد 90 ثانية من التصوير المستمر والحساسية لحركة الجهاز التنفسي أو الأنسجة ، و (ثالثا) قد يتم تقليل اختراق العمق في الأنسجة عالية الكثافة أو المتناثرة. على حد علمنا ، لا يوفر هذا العمل الأطلس الديناميكي الأول لإعادة تنظيم الأنسجة المستحثة بالوخز بالإبر فحسب ، بل يشكل أيضا سابقة لتقييم العلاجات الفيزيائية (على سبيل المثال ، التأكسج) في الأنظمة الحية. من خلال تحويل الاستجابات الفسيولوجية العابرة إلى مقاييس قابلة للقياس الكمي ، نقدم نموذجا جديدا للدراسات الميكانيكية للعلاجات المعدلة العصبية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تمت الموافقة على جميع الإجراءات من قبل لجنة أخلاقيات التابعة لمعهد الوخز بالإبر والتكسي ، الأكاديمية الصينية للعلوم الطبية الصينية (رقم D2023-01-29-01). تم الحصول على ثمانية فئران ذكور من Sprague Dawley (SD) (عمر 8 أسابيع ، 200-220 جم) من شركة التكنولوجيا الحيوية المحدودة (رقم الترخيص. SCXK (جينغ) 2020-0001). تم إيواء في حاويات عزل معقمة في ظل ظروف خاضعة للرقابة: دورة الضوء والظلام لمدة 12 ساعة ، ودرجة حرارة 21 ±± 2 درجة مئوية ، مع إمكانية الوصول إلى كريات الطعام القياسية والماء. امتثلت جميع التجارب للمبادئ التوجيهية المؤسسية ودليل رعاية واستخدام المختبر.

ملاحظة: يظهر مخطط انسيابي يسلط الضوء على الإجراءات الرئيسية في الشكل 1.

1. تحضير والمتتبع: فلورسين الصوديوم (FS)

  1. لتحضير محلول تلطيخ الفلورسين الصوديوم (FS) بنسبة 1٪ ، قم بإذابة 0.1 جم من FS في 10 مل من محلول ملحي معقم (0.9٪ كلوريد الصوديوم). قم بتخزين المحلول في درجة حرارة الغرفة (RT) للاستخدام اللاحق.
  2. تخدير الفئران SD عن طريق تحريض الأيزوفلوران (الحث: 5٪ إيزوفلوران, صيانة: 2.5٪ إيزوفلوران). أزيلي الشعر من منطقة الجمجمة (باستثناء الرأس) باستخدام ماكينات قص كهربائية ، ثم ضعي كريم مزيل الشعر لمدة 5 دقائق. تخلص من بقايا الكريم والشعر عن طريق الشطف بالماء الدافئ.
    ملاحظة: حافظ على شفرة المقص موازية لسطح الجلد أثناء التشغيل لمنع إصابة الجلد التي قد تضر بتحليل التصوير الكمي. يجب استخدام الماء الدافئ بشكل صارم للشطف لتجنب انخفاض حرارة الجسم في الذي يؤثر على النتائج التجريبية.

2. حقن FS

  1. تأمين الفئران.
    1. تخدير الفئران التي تمت إزالتها من الشعر عن طريق الحقن داخل الصفاق بنسبة 10٪ من اليوريثان (1 جم / 10 مل ، في محلول ملحي) بجرعة 1.0 جم / كغ.
    2. عند تحقيق التخدير الكامل ، قم بتأمين في وضع ضعيف على منصة التشغيل. ضع قرصة إصبع القدم اللطيفة على المخلب الخلفي باستخدام الملقط ولاحظ عدم وجود منعكس الانسحاب. تحقق من فقدان منعكس القرنية عن طريق لمس القرنية برفق بطرف قطني رطب.
    3. تأكد من عدم الاستجابة المستمرة ومعدل التنفس المستقر قبل متابعة الإجراء. أثناء التخدير ، حافظ على درجة حرارة جسم باستخدام وسادة تسخين 37 درجة مئوية.
      ملاحظة: يجب تأكيد التخدير الكامل لمنع الحركات اللاإرادية التي من شأنها أن تضر بنقل نافذة التصوير.
  2. يتم إعطاء محلول FS 1٪ عن طريق الوريد عبر وريد الذيل بجرعة 0.1 مل لكل 100 جرام من وزن الجسم.
    1. قم بإجراء حقن وريد الذيل باستخدام حقنة سعة 1 مل مزودة بإبرة 27 جرام. امسح الذيل برفق بالماء الدافئ لتعزيز توسع الأوعية ، متبوعا بالتطهير بنسبة 70٪ من الإيثانول.
    2. أدخل الإبرة المخطوفة لأعلى بزاوية ضحلة (≤15 درجة) على طول المحور الطولي للوريد. حقن المحلول ببطء بمعدل 0.1-0.2 مل / دقيقة.
    3. ضمان التدفق التقني الخالي من المقاومة ، وعدم وجود وذمة حول الأوعية الدموية ، وتأكيد الحقن الناجح عن طريق تغير لون التلاميذ والصيوان والكفوف.
      ملاحظة: يجب تجنب الحقن العرضي داخل الشرايين بدقة.

3. إعداد الفحص المجهري بالليزر متحد البؤر (pCLE) في الجسم الحي

  1. قم بتنشيط نظام pCLE وتحقق من نظافة كل من موصل مسبار المسح الضوئي والطرف البعيد.
  2. نظف الطرف البعيد للمسبار (يسمى أيضا طرف المسح) باستخدام قطعة قطن مبللة بالمحلول الملحي الفسيولوجي ، ثم جففها برفق باستخدام أنسجة العدسة.
  3. ضع مسبار الليزر في موقع المراقبة المستهدف (على سبيل المثال ، منطقة الفخذ الإنسي). قم بتأمين مسبار التصوير متحد البؤر باستخدام مشبك قابل للتعديل ، مما يضمن ملامسة ثابتة لسطح الأنسجة بدون قطع أثرية مضغوطة ، وقم بإصلاحه عن طريق إحكام ربط مقبض الضبط.
  4. قم بتوصيل المسبار بنظام pCLE وقم بتكوين معلمات الاستحواذ (على سبيل المثال ، مجال الرؤية [FOV] ، دليل التخزين). المعلمات المحددة المستخدمة في هذه التجربة هي كما يلي: العمق: 18 ميكرومتر ؛ الليزر: 219 ميغاواط ؛ السطوع: 76٪ ؛ السرعة: 1920 × 540 ؛ الكسب: 2400 ؛ التكبير: 1× (464 ميكرومتر) ؛ الفلتر: LP 515 ؛ جدول البحث: مسح ضوئي رمادي.
    ملاحظة: تم تحسين معلمات التصوير (عمق المسح / طاقة الليزر) بشكل متكرر حتى يتم تحقيق تصور مميز لبنية الأنسجة. الكثافة المتسقة أمر بالغ الأهمية لقابلية مقارنة الصورة الطولية. أدت إضافة قطرات محلول ملحي 37 درجة مئوية في واجهة أنسجة المسبار إلى القضاء على فقدان الإشارة الذي لوحظ في التكرارات الأولية. قوة الليزر المستخدمة في هذه الدراسة أقل من العتبة المقبولة عموما للسمية الضوئية في التصوير متحد البؤر في الجسم الحي .

4. تصوير الهيكل التنظيمي باستخدام pCLE والاستحواذ

  1. ضع المسبار على سطح الجلد وابدأ الحصول على البيانات لتصور بنية الأنسجة.
    1. امسك المسبار بطريقة قبضة قلم رصاص ؛ قم بالمناورة للمناطق المستهدفة (على سبيل المثال ، المناطق ذات الأوعية الدموية أو النسيج الضام الليفي داخل مجال الرؤية) ، ضع الطرف البعيد مباشرة على منطقة التصوير ، ثم استقر عبر ذراع المسبار.
  2. أولا ، اكتساب بنية الأنسجة الأساسية لمدة 1 دقيقة في ظل الظروف الفسيولوجية ، متبوعا بتسجيل 5 دقائق أثناء التدخل في الوخز بالإبر. إنهاء الاستحواذ بعد التدخل. يتم حفظ ملفات البيانات تلقائيا في الدليل المحدد في الخطوة 3.3-3.4.
    ملاحظة: يتم حفظ الملفات كمكدسات طبقات (.tiff) وإطارات فردية (.tiff).

5. التدخل في الوخز بالإبر

ملاحظة: يتم إجراء الاستحواذ في خطوة التصوير أثناء التدخل.

  1. أدخل إبرة من الفولاذ المقاوم للصدأ 1-cun (الوحدة الصينية لقياس الطول حوالي 13 مم) يمكن التخلص منها في نقطة الوخز المجاورة للأنسجة التي تمت ملاحظتها من قبل المسبار. قم بتوصيل سلك واحد بإبرة الفولاذ المقاوم للصدأ ، وقم بتأمين القطب المرجعي الآخر على ذيل الفئران.
  2. تطبيق التحفيز بالوخز بالإبر الكهربائية (EA) باستخدام المعلمات التالية: شدة 1 مللي أمبير، موجة كثيفة مشتتة (2/15 هرتز)، لمدة 5 دقائق.
    ملاحظة: حافظ على مسافة كافية (>3 مم) بين موقع إدخال الإبرة والمسبار لمنع الهزات الجلدية الناجمة عن EA والتي تعرض ثبات الصورة للخطر.

6. تحليل الصور

  1. افتح مكدسات الصور المكتسبة في ImageJ. قم بتحويل المعايرة المكانية إلى ميكرومتر وتحويل تنسيق الصورة إلى 8 بت لتوافق المكون الإضافي (الصورة > النوع > 8 بت).
    ملاحظة: أبعاد الصورة الافتراضية بالبوصة (إعداد خاص بالنظام).
  2. تحديد منطقة الاهتمام (ROIs) من أجل: دوران الأوعية الدقيقة: جزء شعري واحد ، هيكل المصفوفة: منطقة ألياف الكولاجين. حافظ على عائد استثمار متطابق عبر الصور المتسلسلة لتحقيق الاتساق الطولي.
  3. تحليل دوران الأوعية الدقيقة
    1. حدد المنطقة التي تحتوي على خلايا الدم الحمراء التي يجب ملاحظتها، واقتصاص الصورة لإزالة المناطق الأخرى المتداخلة (مستطيل > صورة > اقتصاص). استخدم أداة العتبة لتقسيم خلايا الدم الحمراء (RBC) حصريا (الصورة > أداة ضبط العتبة >).
    2. قم بتحميل المكون الإضافي MTrack2 . قم بتعيين معلمات التتبع المناسبة بناء على حجم كرات الدم الحمراء (في هذه التجربة ، 10-42 بكسل) لاستبعاد التداخل وضمان تتبع RBC بدقة (تتبع > المكون الإضافي > MTrack2).
  4. التحليل الهيكلي للمصفوفة
    1. قم بتحميل المكون الإضافي Directionality ، وحدد وضع مكونات فورييه ، وقم بإجراء تحليل إحصائي على نسبة توزيع ألياف الكولاجين عبر اتجاهات 0 درجة إلى 180 درجة (تحليل > الاتجاه).

7. وضع اللمسات الأخيرة على البيانات

  1. قم بتصدير البيانات التي تم تحليلها بتنسيقات TIFF / XSL باستخدام اصطلاح التسمية: [Group]_[Date].extension. قم بعمل نسخة احتياطية من جميع الملفات الأولية والمعالجة إلى خادم آمن معين. سجل المخرجات الكمية في جدول بيانات موجز للتحليل الإحصائي.

8. السلامة وإدارة النفايات

  1. معدات الحماية الشخصية (PPE): ارتد قفازات النتريل ومعطف المختبر ونظارات واقية عند التعامل مع اليوريثان أو الأيزوفلوران أو الفلورسين الصوديوم.
  2. التعامل مع التخدير: قم بإجراء الإجراءات التي تتضمن اليوريثان أو الأيزوفلوران داخل غطاء الدخان لتقليل التعرض للاستنشاق.
  3. احتياطات الأدوات الحادة: تخلص من جميع الإبر والأشياء الحادة على الفور في حاويات الأدوات الحادة المقاومة للثقب.
  4. سلامة الوخز بالإبر الكهربائية (EA): تحقق من العزل الكهربائي لمعدات EA وتأمين توصيلات الرصاص لمنع تيارات التسرب أو الدوائر القصيرة.
  5. التخلص من النفايات: تخلص من زجاجات الأيزوفلوران كنفايات طبية وفقا للإرشادات المؤسسية. تخلص من نفايات المواد الملوثة بالصبغة (مثل المسحات والأنسجة) في حاويات نفايات خطرة محكمة الغلق. اجمع الأدوات الحادة في صناديق التخلص من الأدوات الحادة المعتمدة.
    ملاحظة: يجب أن تتوافق جميع الإجراءات مع لوائح السلامة المؤسسية والصحة البيئية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

يوضح هذا البروتوكول فائدة pCLE للتقييم الديناميكي في الوقت الفعلي لتأثيرات الوخز بالإبر على دوران الأوعية الدقيقة وبنية المصفوفة خارج الخلية. بعد إعطاء فلوريسين الصوديوم عن طريق الوريد عبر وريد الذيل ، تم تقييم التغييرات من خلال ملاحظة التغيرات في سرعة كريات الدم الحمراء داخل الشعيرات الدموية المحلية وإعادة تنظيم ترتيب ألياف الكولاجين.

كشفت النتائج التمثيلية بعد الوخز بالإبر لمدة 5 دقائق عن حركة كريات الدم الحمراء المتسارعة (P &...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

كما هو موضح في النتائج ، يتيح بروتوكول التصوير متحد البؤر في الجسم الحي الذي تم إنشاؤه في هذه الدراسة التحليل الكمي المتزامن لديناميكيات المصفوفة الدورانية الدقيقة وخارج الخلية أثناء التدخل في الوخز بالإبر باستخدام المعدات القياسية المتاحة تجاريا ووضع العلامات الفلورية الروتينية. يعتمد نجاح هذا البروتوكول على خطوتين حاسمتين: التوقيت الدقيق لحقن فلورسين الصوديوم ، وضمان تباين الأوعية الدموية الدقيقةالمستدام 14 ، والتثبيت الصارم للحيوانات ، وهو أمر ضروري لت...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.

شكر وتقدير

تم تمويل هذا البحث من قبل البرنامج الوطني للبحث والتطوير الرئيسي في الصين (2024YFA1209900 ، 2024YFA1209903 ، 2024YFA1209904) ؛ الصناديق الخاصة للمؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين (82050006)؛ مشروع أبحاث الطب الصيني التقليدي التابع لإدارة طب الطب الصيني التقليدي في مقاطعة هوبي (ZY2025Z015) ؛ صندوق البحوث بجامعة جيانغهان (2024JCYJ13).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
1 إبرة الوخز بالإبر cunهواتو، سوتشو، الصينغير متاح13 مم / 0.25 مم
10٪ فلورسين الصوديومقوانغشي ووتشو الصيدلانية المحدودة ، الصينH45021477
آلة تخديرRWD ، شنتشن ، الصينR620IE
مراقبة درجة حرارة الجسمRWD ، شنتشن ، الصين69026
جهاز الوخز بالإبر الكهربائيةهواتو، سوتشو، الصينSDZ-III
كريم إزالة الشعرفيت، فرنسا
إيمج جيالمعاهد الوطنية للصحة ، الولايات المتحدة الأمريكيةhttps://imagej.nih.gov/ij/
في الجسم الحي الفحص المجهري بالليزر متحد البؤرOptiscan ، أستراليافيوفن فيفو بي 30القطر: مسبار صلب محمول باليد 4 مم ، مقاوم للانحناء ويحافظ على السلامة الهيكلية بمرور الوقت. الطول: ≥ 46 مم وضع المسح الضوئي: إمكانية المسح الضوئي عبر التكبير/التصغير.
إيزوفلورانRWD ، شنتشن ، الصين
R510-22-16
يوريتانسيجما ألدريتش ، الولايات المتحدة الأمريكية94300

المراجع

  1. Mo, Y., et al. Acupuncture as adjunctive treatment for linezolid-induced peripheral neuropathy: a case series report. Front Neurol. 21 (15), 1388544(2024).
  2. Roynard, P., Frank, L., Xie, H., Fowler, M. Acupuncture for small animal neurologic disorders. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 48 (1), 201-219 (2018).
  3. Zhou, L., Li, X., Ao, J., Duan, N. Acupuncture and cellular mechanisms: the role of foxo transcription factors in autophagy and senescence. J Pak Med Assoc. 74 (12), 2150-2154 (2024).
  4. Chen, Y., Zhang, F., Zheng, P., Cui, D., Fan, X. Postpartum stress urinary incontinence: current advances in non-pharmacological therapies. Arch Esp Urol. 78 (1), 1-9 (2025).
  5. Dietel, M. 20 years of pathology: from conventional histology to next-generation pathology. Pathologie. 45 (3), 167-172 (2025).
  6. Cao, L., Kobayakawa, S., Yoshiki, A., Abe, K. High resolution intravital imaging of subcellular structures of mouse abdominal organs using a microstage device. PLoS One. 7 (3), e33876(2012).
  7. Vaghela, R., Arkudas, A., Horch, R. E., Hessenauer, M. Actually seeing what is going on-intravital microscopy in tissue engineering. Front Bioeng Biotechnol. 9 (17), 627462(2021).
  8. Zhang, H., He, Z., Jin, Z., Yan, Q., Wang, P., Ye, X. The development and clinical application of microscopic endoscopy for in vivo optical biopsies:endocytoscopy and confocal laser endomicroscopy. Photodiagnosis Photodyn Ther. 38, 102826(2022).
  9. Streba, C. T., et al. Utility of confocal laser endomicroscopy in pulmonology and lung cancer. Rom J Morphol Embryol. 57 (4), 1221-1227 (2016).
  10. Chaw, S. Y., Wong, T. T. L., Venkatraman, S., Chacko, A. M. Spatio-temporal in vivo imaging of ocular drug delivery systems using fiberoptic confocal laser microendoscopy. J Vis Exp. (175), e62685(2012).
  11. Tian, S., et al. The role of confocal laser endomicroscopy in pulmonary medicine. Eur Respir Rev. 32 (167), 220185(2023).
  12. Villard, A., et al. Confocal laser endomicroscopy and confocal microscopy for head and neck cancer imaging: recent updates and future perspectives. Oral Oncol. 127, 105826(2022).
  13. Sievert, M., et al. Systematic interpretation of confocal laser endomicroscopy:larynx and pharynx confocal imaging score. Acta Otorhinolaryngol Ital. 42 (1), 26-33 (2022).
  14. Ren, W., et al. Expanding super-resolution imaging versatility in organisms with multi-confocal image scanning microscopy. Natl Sci Rev. 11 (9), nwae303(2024).
  15. Xia, Q., Li, D., Yu, T., Zhu, J., Zhu, D. In vivo skin optical clearing for improving imaging and light-induced therapy: a review. J Biomed Opt. 28 (6), 060901(2023).
  16. Zhang, C., Feng, W. Assessment of tissue-specific changes in structure and function induced by in vivo skin/skull optical clearing techniques. Lasers Surg Med. 54 (3), 447-458 (2022).
  17. Leal-Campanario, R., Martinez-Conde, S., Macknik, S. L. In vivo fiber-coupled pre-clinical confocal laser-scanning endomicroscopy (pCLE) of hippocampal capillaries in awake mice. J Vis Exp. (194), e57220(2023).
  18. Huo, Z. J., et al. The ameliorating effects of long-term electroacupuncture on cardiovascular remodeling in spontaneously hypertensive rats. BMC Complement Altern Med. 14, 118(2014).
  19. Yunshan, L., Chengli, X., Peiming, Z., Haocheng, Q., Xudong, L., Liming, L. Integrative research on the mechanisms of acupuncture mechanics and interdisciplinary innovation. Biomed Eng Online. 24 (1), 30(2025).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

ديناميكيات الوخز بالإبرالتصوير الحيتغيرات الدورة الدموية الدقيقةترتيب ألياف الكولاجينالمصفوفة خارج الخليةاستجابة توسع الأوعية الدمويةالمورفولوجيا الكمية
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.