يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

العلاج بالإبر الكهربائية لعلاج ضعف الإدراك بعد إصابة الحبل الشوكي

516 مشاهدات

⸱

DOI:

10.3791/69346

⸱

نوفمبر 21, 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1School of Acupuncture, Moxibustion and Tuina, Beijing University of Chinese Medicine, 2Department of Rehabilitation, The Third Affiliated Hospital of Beijing University of Chinese Medicine, 3Department of Rehabilitation, Jiangsu Changshu Second People's Hospital, 4Traditional Chinese Medicine Department, Shenzhen Third People's Hospital, Southern University of Science and Technology

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

أسست هذه الدراسة إجراء موحدا للوخز بالإبر الكهربائية يهدف إلى علاج الإعاقات الإدراكية بعد إصابة الحبل الشوكي. علاوة على ذلك، تم وصف بروتوكول إجراء متاهة Y وتجارب التعرف على الأشياء الجديدة لتقييم فعالية الوخز بالإبر الكهربائية في تخفيف العجز الإدراكي بالتفصيل.

الملخص

إصابة الحبل الشوكي (SCI) هي مرض شديد الإعاقة والمدمر في الجهاز العصبي المركزي (CNS)، لا يؤدي فقط إلى خلل في الحركة والحسية في الأطراف، بل يعطل أيضا بنية ووظيفة الحصين والقشرة الدماغية، مما يؤدي إلى ضعف إدراكي يؤثر بشكل خطير على جودة حياة المرضى. لذا، من الضروري استكشاف طرق علاجية فعالة وطرق تقييم. العلاج الكهربائي بالإبر الصينية (EA) هو علاج جديد يدمج الوخز بالإبر التقليدي مع تقنية العلاج الكهربائي الحديثة، والتي تتميز بمزايا السلامة العالية وقليل من الآثار الجانبية، وقد تم استخدامها على نطاق واسع في إدارة إصابة الحبل الشوقي. وفقا لنظرية الطب الصيني التقليدي (TCM)، يربط وعاء الحاكم بين الدماغ والحبل الشوكي. لذلك، يمكن لعضلات الدماغ الخارجي في نقاط الوخز الموجودة على الوعاء المنتظم استعادة وظائف الدماغ والحبل الشوكي بشكل فعال. في هذا البروتوكول، استخدمنا طريقة ألين لبناء نموذج SCI. قدمنا إجراء EA يهدف إلى علاج الإعاقات الإدراكية لدى الفئران المصابة بالحبل الشوكي. علاوة على ذلك، وصفنا بالتفصيل عملية تشغيل متاهة Y وتجربة التعرف على الأشياء الجديدة (NOR) لتقييم فعالية EA في تخفيف العجز الإدراكي لدى الفئران. لا يوفر هذا البحث بروتوكولا علاجيا يعمل كمرجع للضعف الإدراكي بعد إصابات الحبل الشوكي، بل يقدم أيضا دعما تجريبيا أوليا للتحقق من صحة استراتيجيات العلاج لهذه الحالة والاستكشاف اللاحق للبحث.

المقدمة

إصابة الحبل الشوكي (SCI) هي اضطراب شائع في الجهاز العصبي المركزي (CNS)، عادة ما ينتج عن تلف الحبل الشوكي أو الهياكل المحيطة به نتيجة قوى خارجية. يمكن أن تؤدي هذه الحالة إلى خلل في الوظائف العصبية الحسية والحركية والتلقائية دون مستوى الإصابة1. والأهم من ذلك، يمكن أن تسبب الإصابة الحالبية الشوكي أيضا مضاعفات ثانوية مثل القلق والاكتئاب وضعف الإدراك 2,3، والتي تضر بإعادة تأهيل المرضى وتقلل بشكل كبير من جودة حياتهم. وجدت العديد من الدراسات الوبائية أن خطر الإصابة بمرض الزهايمر لدى مرضى الحبل الشوكي أعلى بكثير من الخطر لدى عامة السكان4،5،6. أكدت دراسة أخرى أن معدل حدوث الضعف الإدراكي لدى مرضى إصابات الحبل الشوكي قد يصل إلى 60٪5,7. لا يؤدي اضطراب الحبل الشوكي إلى ضمور القشرة الحركية فحسب، بل يقلل أيضا من النشاط العصبي في مناطق الدماغ المرتبطة بالوظيفة الإدراكية8. يعتبر زيادة الالتهاب في الحصين والمهاد والقشرة بعد الإصابة بالحبل الشوكي مساهما مهما في ضعف الإدراك 9,10,11. تحسين المضاعفات المرتبطة بعصب الحبل الشوكي، مثل ضعف الإدراك، أمر بالغ الأهمية لتعزيز إعادة تأهيل المرضى وتسهيل إعادة اندماجهم في المجتمع.

يعد الوخز بالإبر عنصرا مهما في الطب الصيني التقليدي (TCM)، ويشتهر بفعاليته السريرية المذهلة. يمثل الوخز بالإبر الكهربائية (EA) علاجا مبتكرا يدمج الوخز بالإبر التقليدي مع تقنيات العلاج الكهربائي المعاصرة12. يحفز الأعصاب والعضلات من خلال تطبيق تيار منخفض الجهد على نقاط خزة محددة، مما يوفر فوائد علاجية للتعافي الوظيفي بعد الألم المزمن وإصابات الجهاز العصبي13،14،15. أظهرت العديد من الدراسات أن EA يمكن أن يعزز التعافي الوظيفي العصبي بعد الحبل الشوكي ويخفف من المضاعفات مثل الألم العصبي، والمثانة العصبية، والتشنج 16,17,18,19. وفقا لنظرية الطب الصيني التقليدي، فإن وعاء الحاكم متصل بالدماغ والحبل الشوكي، مما يؤثر على وظائفهما20. وجدنا أن العلاج الخارجي المطبق في نقاط دازوي (GV14) ومينغمن (GV4) على الوعاء المنظم يمكن أن يخفف الالتهاب العصبي ويثبط تكوين الندوب الدبقية، مما يسهل تعافي الوظائف الحركية بعد الإصابةبالحبل الشوكي 21. علاوة على ذلك، أثبتت تحقيقاتنا أن EA في نقاط الوخز Baihui (GV20) وYintang (GV29) على وعاء Governor يمكن أن يعزز القدرات الإدراكية لدى فئران نموذج AD22,23. ومع ذلك، لا تزال الإمكانات لعلاج الاضطراب الإدراكي بعد الإصابة بالحبل الشوكي غير مستكشفة بشكل كاف.

في هذه الدراسة، نسصف الطرق التشغيلية لعلاج الضعف الإدراكي لدى فئران الحبل الشوكي، بما في ذلك اختيار نقاط الإبر، وزاوية العلاج بالإبر، ومدة العلاج، وتفاصيل أخرى. بالإضافة إلى ذلك، استخدمنا اختبارات Y-maze وNOR، إلى جانب التقييمات المرضية، لتقييم فعالية EA في علاج ضعف الإدراك. تهدف هذه الدراسة إلى توفير مرجع للعلاج السريري لهذه الحالة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تم إجراء جميع الإجراءات التجريبية وفقا لمعايير المعاهد الوطنية للصحة لرعاية واستخدام المختبرية، وتمت الموافقة عليها من قبل لجنة أخلاقيات في جامعة بكين للطب الصيني (رقم الموافقة: BUCM-2024042505-2065).

1. تحضير

  1. اختيار ذكور بالغين من جرذان سبراج داولي (SD) بوزن 220.0 جرام ± 20.0 جرام للتجربة.
  2. تضم في مركز التجريبية بجامعة بكين للطب الصيني بدرجة حرارة مضبوطة (24 ± 2 درجة مئوية) وتحت دورة مظلمة/مضيئة لمدة 12 ساعة، مع مياه شرب معقمة ونظام غذائي قياسي للحبيبات متاحة حسب الرغبة.
  3. تعويد جميع على البيئة لمدة 7 أيام قبل بدء التجارب.
  4. قسم عشوائيا 24 فأر SD إلى ثلاث مجموعات (n = 8 لكل مجموعة): مجموعة العمليات الوهمية (Sham)، مجموعة نموذج SCI (النموذج)، ومجموعة الوخز بالإبر الكهربائية (EA). يوضح مخطط محور الزمن في التصميم التجريبي في الشكل 1.

2. تأسيس نموذج SCI

ملاحظة: تم حرمان الفئران من الماء والطعام لمدة 8 ساعات قبل العملية، وتم تعقيم الأدوات الجراحية باستخدام بخار عالي الحرارة. تم بناء نموذج SCI باستخدام تعديل لطريقة ألينرقم 24.

  1. ضع الجرذ في صندوق تحفيز التخدير وتحفزه بالأكسجين الذي يحتوي على 4٪ إيزوفلوران (1 لتر/دقيقة) حتى يتم تخديره بالكامل.
  2. أخرج الجرذ من صندوق الحث ووضع أنفه وفمه عند قناع التخدير. اضبط تركيز الإيزوفلوران إلى 1.5٪-2٪ للحفاظ على التخدير.
    ملاحظة: أثناء عملية تخدير الفئران، من الضروري مراقبة حالة الجرذ عن كثب. إذا أظهر الفأر تنفسا ضحلا وسريعا أو انخفاضا في درجة حرارة الجسم، قلل تركيز الأيزوفلوران لتجنب الإفراط في التخدير.
  3. احلق شعر ظهر الفأر لكشف منطقة الجراحة بالكامل. قم بتعقيم منطقة العمليات باليودوفور والكحول.
  4. حدد الفقرة الصدرية العاشرة (T10). أنشئ شق طولي متوسط بقطر 2.5 سم مركزه على T10.
  5. استخدم شفرات جراحية لفصل عضلات الظهر، مما يكشف عن النتوء الشوكي والعضلات المجاورة للفقرات الصدرية. إزالة النتوء الشوكي واللامينا في T10 باستخدام ملقط دموي، مما يكشف عن جزء بحجم حوالي 10 مم من الحبل الشوكي.
  6. يصطدم بالدورا ماتر المكشوفة (200 كيلوداين) بدقة باستخدام جهاز ألين المعدل لتحفيز كدمة متوسطة.
    ملاحظة: يتميز نجاح نموذج الحبل الشوكي بالاحتقان والوذمة في الجافة في موقع الإصابة وتأرجح تشنج الذيل. بالنسبة لمجموعة شام، خضعت الفئران لنفس الإجراء الجراحي، بما في ذلك إزالة الصفيحة الفقرية، لكن الحبل الشوكي لم يتضرر.
  7. غط الجاف بإسفنج جيلاتين وخيط الجرح طبقة طبقة.
  8. ضع الفأر على وسادة تسخين بدرجة حرارة ثابتة مضبوطة على 37 درجة مئوية وراقبه حتى يستعيد وعيه.
  9. حقن البنسلين الصوديوم في عضلة الجرذ مرة واحدة يوميا لمدة ثلاثة أيام بعد العملية لمنع العدوى. بالإضافة إلى ذلك، قم بتدليك المثانة للجرذ 2-3 مرات يوميا لتسهيل التبول.

3. علاج EA

  1. نفذ تدخل EA لمدة 24 ساعة بعد تأسيس نموذج الحبل الشوكي بنجاح.
  2. جهز إبر الوخز بالإبر المعقمة القابلة للتخلص منها (القطر: 0.30 مم؛ الطول: 25 مم).
  3. وفقا لنظرية الطب الصيني التقليدي والخبرة السريرية، اختر نقاط الوخز بايهوي (GV20)، دازوي (GV14)، ومينغمن (GV4) لعلاج EA.
  4. حضر جوارب حريرية سوداء. وجه الفأر ليحفر في الجوارب السوداء. اربط الفأر وثبت على لوح باستخدام رباط.
    ملاحظة: يجب شد الحبل بشكل معتدل لمنع اختناق الجرذ من الارتباط بإحكام مفرط أو هروبه بسبب الربط الفضفاض المفرط.
  5. حدد نقطة الوخز GV20 في مركز العظم الجداري، عند تقاطع منتصف الجبهة ومنتصف الخط الذي يربط بين طرفي الأذنين. حدد موقع GV14 بين الفقرة العنقية السابعة (C7) والفقرة الصدرية الأولى (T1)، على الخط الأوسط من الظهر. حدد موقع GV4 في الانخفاض تحت النتوء الشوكي للفقرة القطنية الثانية (L2)، على الخط الأوسط للظهر (الشكل 2).
  6. قم بتعقيم نقاط الوخز باستخدام اليودوفور الطبي و75٪ كحول طبي.
  7. أدخل الإبر بشكل مائل للأسفل بزاوية 15° إلى عمق 2-3 مم عند GV20. أدخل الإبر في نقاط GV14 وGV4 بزاوية 45°، بعمق 5-7 مم (الشكل 3A).
  8. قم بتوصيل الإبر بجهاز العلاج الخارجي بتردد 2 هرتز وشدة 1 مللي أمبير. اختر شكل الموجة كموجة مستمرة (الشكل 3B، C).
    ملاحظة: تم إجراء هذا التدخل التفاعلي المبكر يوميا لمدة 28 يوما، واستغرقت كل جلسة 20 دقيقة. لم تتلق الفئران في مجموعتي شام وموديل أي علاج، لكنها تم تجميدها لمدة 20 دقيقة يوميا بنفس الطريقة التي كانت في مجموعة EA.

4. تقييم الوظيفة الحركية (الشكل 4)

ملاحظة:في اليوم الأول والسابع والرابع عشر والحادي والعشرين والثامن والعشرين بعد العملية، تم تقييم الوظيفة الحركية للفئران في كل مجموعة بواسطة موسيقى باسو، بيتي، وبريسنهان (BBB).

  1. ضع الفأر في مكان مفتوح وهادئ للسماح بالحركة بحرية.
  2. راقب حركات الأطراف الخلفية للجرذ وقم بتقييمها وفقا للمقياسالمعتمد 25.
    ملاحظة: قام باحثان، كانا غير مدركين لتجميع الفئران، بتوزيع الدرجات بشكل مستقل، وتم حساب الدرجة النهائية لكل فأر كمتوسط تقييماتهم.

5. إجراء تجربة متاهة Y (الشكل 5)

ملاحظة: في اليوم الأول بعد تدخل EA(اليوم التاسع والعشرون من التجربة)، تم إجراء تجربة متاهة Y، بما في ذلك اختبار التناوب التلقائي واختبار استكشاف الذراع الجديد. يتم عرض إجراء التجربة في متاهة Y في الشكل 5A.

  1. ضع أقفاص التجريبية في بيئة تجريبية قبل الاختبار واعتادها لمدة 30 دقيقة.
  2. نظف جهاز المتاهة Y بالكحول، واضبط عشوائيا الأذرع الثلاثة في متاهة Y كذراع بداية، وذراع جديدة، وذراع أخرى.
  3. خلال مرحلة اختبار التناوب التلقائي، غط الذراع الجديدة بحواجز.
  4. ضع الفأر برفق في نهاية ذراع البداية ودعه يستكشف بحرية في كلا الذراعين لمدة 10 دقائق. سجل أوقات ومسافة ووقت إقامة الفأر الذي دخل ذراع البداية والذراع الأخرى.
  5. قم بإزالة أي فضلات من الحجرة بعد إكمال كل فأر الاختبار. نظف داخل الحجرة بنسبة 75٪ كحول طبي وجففها بشاش نظيف لمنع التداخل الناتج عن الروائح التي تركها المشاركون السابقون. حافظ على بيئة داخلية هادئة طوال فترة التجربة.
  6. أزل الحاجز وأجر تجربة استكشاف الذراع الجديدة بعد 4 ساعات من تجربة التناوب التلقائي.
  7. ضع الفأر برفق في نهاية ذراع البداية ودعه يستكشف بحرية في الأذرع الثلاثة لمدة 5 دقائق.
  8. سجل تسلسل وعدد الإدخالات والمسافة ووقت إقامة الفأر الذي يدخل كل ذراع خلال 5 دقائق.

6. إجراء تجربة التعرف على الأجسام الجديدة (NOR) (الشكل 6)

ملاحظة: في اليوم الثاني بعد تدخل EA(اليوم الثلاثون من التجربة)، تم إجراء تجربة NOR. يتم عرض إجراء التجربة في NOR في الشكل 6A.

  1. جهز إعدادا تجريبيا يتكون من صندوق بقياس 70 سم × 60 سم × 30 سم، وأجسام مكعبة زرقاء، وأجسام أسطوانية حمراء.
  2. أدخل الفأر في صندوق التجارب ودعه يستكشف المحيط بحرية لمدة 10 دقائق.
  3. بعد الانتهاء من التجربة السابقة لمدة ساعة واحدة، ضع جسمين مكعبين متماثلين بشكل متماثل في زاويتين من صندوق التجربة، على بعد حوالي 10 سم من الجدران.
  4. أدخل الفأر في صندوق التجارب مع توجيه رأسه بعيدا عن كتلة الجسم. دع الفأر يستكشف محيطه بحرية لمدة 10 دقائق ليصبح معتادا على كتلة الأشياء.
  5. بعد الانتهاء من تجربة كل فأر، امسح صندوق التجربة جيدا بالكحول لتقليل تأثير الروائح المتبقية على سلوك الفئران اللاحقة. بمجرد أن يجف الصندوق، ضع الفأر التالي بداخله.
  6. بعد الانتهاء من التجربة أعلاه لمدة 4 ساعات، استبدل كتلة الجسم الأيمن بجسم أسطواني.
  7. أعد إدخال الفأر في صندوق التجارب ورأسه مواجها بعيدا عن جدار كتلة الجسم. دع الفأر يستكشف بحرية لمدة 5 دقائق داخل الصندوق.
  8. سجل الوقت الذي قضيته في استكشاف الأجسام الأسطوانية والمكعبة والمسافة والوقت الكلي. احسب مؤشر التفضيل باستخدام الصيغة: (وقت استكشاف الكائن الجديد - وقت استكشاف الكائن القديم)/(وقت استكشاف الكائن الجديد + وقت استكشاف الكائن القديم) × 100٪.

7. إجراء اختبار تفضيل السكروز

ملاحظة: يستخدم السكن في قفص واحد لمنع المنافسة الاجتماعية على المياه، والتي قد تعيق سلوك الشرب.

  1. حضر زجاجة بمحلول سكروز بنسبة 1٪ وزجاجة بماء الصنبور.
  2. ضع محلول السكر وزجاجات ماء الصنبور داخل القفص، مع التأكد من تبديل مواقعهما كل 12 ساعة.
  3. دع الجرذ يتكيف مع ماء السكر وماء الصنبور لمدة 48 ساعة. بعد ذلك، حرم الفأر من شرب الماء لمدة 24 ساعة دون صيام.
  4. أعد إلى القفص زجاجة ماء سكر وزجاجة ماء صنبور. غير مواقع الزجاجات بعد ساعتين، وسجل استهلاك كل سائل خلال فترة 4 ساعات. احسب نسبة تفضيل السكروز باستخدام الصيغة: (تناول محلول السكروز/(مدخل محلول السكروز + مدخل الماء) × 100٪.

8. تلوين HE على الحصين

  1. بعد الاختبار السلوكي، قم بتخدير الفأر بكمية 3٪ من الفينوباربيتال الصوديوم (2.0 مل/كجم). قم بإجراء تروية القلب باستخدام بارافورمالديهايد. خذ نسيج الدماغ وادمجها في البارافين. حضر شرائح بسماكة 5 ميكرومتر.
    تحذير: البارافورمالديهايد مهيج ويجب التعامل معه في بيئة جيدة التهوية.
  2. قم بإزالة البارافين من الشرائح باستخدام الزيلين (I) والزيلين (II) لمدة 10 دقائق متتالية. انقع الشرائح في كحول تدرج لتجفيفها، بحيث يستمر كل تدرج لمدة 3 دقائق. وأخيرا، اغمر الشرائح في ماء مقطر لمدة دقيقتين.
  3. صبغ الشرائح بمحلول الهيماتوكسيلين لمدة 10 دقائق. اشطف المحلول الزائد بالماء لمدة 1-3 دقائق. اغمر الشرائح بسرعة في حمض المورياتيك الإيثانول لمدة 5-10 ثوان. اشطف الزحليقة بالماء مرة أخرى.
  4. انقل الشرائح إلى محلول قلوي ضعيف للعودة الزرقاء. اشطف الشرائح بالماء لمدة 1-3 دقائق. اغمر الشرائح في 85٪ إيثانول لمدة 3-5 دقائق.
  5. صبغ الشرائح بمحلول الإيوزين لمدة 3-5 دقائق، ثم جفف بالكحول المتدرج بعد الغسيل. ضع الشرائح في الزيلين لمدة 5-10 دقائق. وأخيرا، استخدم راتنج محايد لإغلاق الشرائح.
  6. افحص الشرائح الملونة تحت المجهر الضوئي بتكبير 400×.

9. تحليل ELISA

  1. بعد الاختبار السلوكي، قم بقتل الجرذ بحقن الصوديوم بنتوباربيتال داخل الصفاق (200 ملغ/كغ). احصد أنسجة الحصين.
  2. وزن نسيج الحصين وانقله إلى أنبوب تجانس مبرد مسبقا.
  3. قم بتجانس الأنسجة على الجليد باستخدام أداة تجانس الأنسجة.
  4. قم بالطرد المركزي بالتجانس عند 5000 × جرام لمدة 10 دقائق عند 4 درجات مئوية. اجمع المادة الفائقة وحدد تركيز البروتين الكلي.
  5. حدد تركيز IL-1β وIL-6 في الحصين باستخدام مجموعات ELISA.

10. التحليل الإحصائي

  1. استخدم برنامج تحليل إحصائي مناسب للتحليل الإحصائي. عبر عن البيانات كمتوسط ± انحراف معياري.
  2. إجراء تحليل ثنائي الاتجاه للتباين (ANOVA) باستخدام مقاييس متكررة واختبار الفرق الأقل دلالة (LSD) لتحليل الفروقات بين المجموعات في بيانات درجات BBB.
  3. إجراء تحليل أنوفاي أحادي الاتجاه باستخدام طريقة LSD لمقارنة التباين بين المجموعات في تجارب أخرى عندما كانت البيانات موزعة بشكل طبيعي أو تحتوي على تباين متجانس. وإلا، قم بإجراء الاختبار غير المعلمي.
  4. إذا كانت البيانات تتوافق مع توزيع طبيعي، قم بإجراء تحليل بيرسون للارتباط. وإلا، قم بإجراء تحليل الارتباط بتقنية سبيرمان.
  5. ضع في اعتبارك الفروق ذات دلالة إحصائية عندما < P 0.05.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

يحسن EA وظيفة المحركات لدى فئران الحبل الشوكي
فياليوم الأول بعد تشغيل SCI، سجلت درجات BBB لمجموعة النماذج عند 0، مما يشير إلى نجاح إنشاء نموذج SCI. خلالاليوم الأول والسابع والرابع عشر والحادي والعشرين والثامن والعشرين بعد التشغيل، كانت درجات BBB لمجموعة النماذج أقل بكثير من درجات مجموعة شام (P < 0.01). ومن الجدير بالذكر أنهفي اليوم السابع والرابع عشر والثامن وال...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

الحبل الشوكي هو حدث مرهق يسبب صدمة شديدة لوظائف المرضى ونفسيتهم، مما يؤدي ليس فقط إلى خلل في الوظائف الحركية والحسية، بل أيضا إلى ضعف إدراكي3. كما وردفي التقرير الرابع، فإن خطر التدهور الإدراكي بعد الحبل الشوكي أعلى بمقدار 13 مرة مقارنة بالأفراد الأصحاء. يظهر المرضى في منتصف العمر وكبار السن المصابين بالحبل الشوكي عرضة أعلى للإصابة بمرض الزهايمر مقارنة بأقرانهم الذين لم يسبق لهم تجربة الإصابةبالحبل الشوكي 6. بعد الإص...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

جميع المؤلفين أعلنوا عدم وجود تضارب محتمل في المصالح.

شكر وتقدير

وقد دعم هذا البحث المؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين (رقم 82374593، 82305381)، وصندوق بناء المستشفيات عالية المستوى في شنتشن (رقم 24275G1001)، والمشروع المدعوم لخطة تشانغشو الطبية والصحية للعلوم والتكنولوجيا (رقم CSWSQ202302)، ومشروع البحث المستقل لطلاب الدراسات العليا في جامعة بكين للطب الصيني (رقم ZJKT2025016).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
0.9٪ محلول ملحيشركة بكين سولايباو للتكنولوجيا، المحدودة.IN9000، ص1022-10
4٪ بارافورمالديهيدبيوتايمP0099
75٪ كحول طبي، يودوفورشركة بكين أوباي للعلوم والتكنولوجيا البيولوجية المحدودةOB40126-1، HX0098Aيستخدم في التعقيم
إبر الوخز بالإبرشركة تشونغيان تايهي المحدودةZY500
جهاز تخدير للحيوانات الصغيرةشركة شنغهاي يويان إنسترومنتس المحدودةABM
نظام تحليل سلوكشركة بكين تشونغ شي دي تشوانغ للتكنولوجيا المحدودةZS-XWT-II
جهاز الطرد المركزيإبندورف، ألمانيا5811FR080384
جهاز الوخز بالإبر الكهربائيةشركة شانتو لمصنع الأدوات الطبية المحدودة6805-Dمستعمل  للعلاج بالإبر الكهربائية
مجموعات ELISAشركة جيانغلاي لعلوم وتكنولوجيا الأحياء المحدودةJL18365، JL20896يستخدم للكشف عن مستويات IL-1 وIL-6
إسفنجة الجيلاتينشركة جيانغشي شيانغ'إن لتطوير التكنولوجيا الطبية المحدودة24092901
محلول الهيماتوكسيلين، محلول إيوزينسيغما-ألدرتش03971يستخدم لتلطيع HE
مفاجئ الأفق اللانهائيليكسينغتون، كنتاكي، الولايات المتحدةIH-0400يستخدم لبناء نموذج إصابة الحبل الشوكي
إيزوفلورانشركة شنتشن رويوودي لايف ساينس آند تكنولوجيا، المحدودةR510-22-10
مجهرأوليمبوس
صوديوم البنسلينكولابرCP8271-5g
الصوديوم الفينوباربيتالسيغما-ألدرتشP3761
فئران SDشركة سيبيفو (بكين) لتقنية الأحياء المحدودةSCXK2019-0010
SPSSآي بي إمالإصدار 26.0البرمجيات الإحصائية
سكروزشركة بكين سولاربيو تكنولوجي المحدودةS8271
زيلينشركة شنغهاي علاء الدين للتكنولوجيا الكيميائية الحيوية المحدودةX112050

المراجع

  1. Kirshblum, S., Snider, B., Eren, F., Guest, J. Characterizing natural recovery after traumatic spinal cord injury. J Neurotrauma. 38 (9), 1267-1284 (2021).
  2. Lim, S. W., et al. Anxiety and depression in patients with traumatic spinal cord injury:a nationwide population-based cohort study. PLoS One. 12 (1), e0169623(2017).
  3. Calderone, A., et al. Cognitive, behavioral and psychiatric symptoms in patients with spinal cord injury:a scoping review. Front Psychiatry. 15, 1369714(2024).
  4. Craig, A., Guest, R., Tran, Y., Middleton, J. Cognitive impairment and mood states after spinal cord injury. J Neurotrauma. 34 (6), 1156-1163 (2017).
  5. Yeh, T. S., Ho, Y. C., Hsu, C. L., Pan, S. L. Spinal cord injury and Alzheimer's disease risk:a population-based, retrospective cohort study. Spinal Cord. 56 (2), 151-157 (2018).
  6. Mahmoudi, E., et al. Traumatic spinal cord injury and risk of early and late onset Alzheimer's disease and related dementia:large longitudinal study. Arch Phys Med Rehabil. 102 (6), 1147-1154 (2021).
  7. Sachdeva, R., Gao, F., Chan, C. C. H., Krassioukov, A. V. Cognitive function after spinal cord injury:a systematic review. Neurology. 91 (13), 611-621 (2018).
  8. Chen, X., et al. The gray matter atrophy and related network changes occur in the higher cognitive region rather than the primary sensorimotor cortex after spinal cord injury. PeerJ. 11, e16172(2023).
  9. Li, Y., et al. Delayed microglial depletion after spinal cord injury reduces chronic inflammation and neurodegeneration in the brain and improves neurological recovery in male mice. Theranostics. 10 (25), 11376-11403 (2020).
  10. Wu, J., et al. Endoplasmic reticulum stress and disrupted neurogenesis in the brain are associated with cognitive impairment and depressive-like behavior after spinal cord injury. J Neurotrauma. 33 (21), 1919-1935 (2016).
  11. Sefiani, A., Geoffroy, C. G. The potential role of inflammation in modulating endogenous hippocampal neurogenesis after spinal cord injury. Front Neurosci. 15, 682259(2021).
  12. Wu, R., et al. Electroacupuncture stimulation to modulate neural oscillations in promoting neurological rehabilitation. Brain Res. 1822, 148642(2024).
  13. Xu, Y., et al. Electroacupuncture alleviates mechanical allodynia and anxiety-like behaviors induced by chronic neuropathic pain via regulating rostral anterior cingulate cortex-dorsal raphe nucleus neural circuit. CNS Neurosci Ther. 29 (12), 4043-4058 (2023).
  14. Hu, R., et al. Electroacupuncture promotes the repair of the damaged spinal cord in mice by mediating neurocan-perineuronal net. CNS Neurosci Ther. 30 (1), e14468(2024).
  15. Chen, M., et al. Electroacupuncture alleviates sciatic nerve injury and inhibits autophagy in rats. Acupunct Med. 42 (5), 268-274 (2024).
  16. Chen, Y., et al. Electroacupuncture inhibits NLRP3 activation by regulating CMPK2 after spinal cord injury. Front Immunol. 13, 788556(2022).
  17. Cheng, J., et al. Electroacupuncture modulates the intestinal microecology to improve intestinal motility in spinal cord injury rats. Microb Biotechnol. 15 (3), 862-873 (2022).
  18. Zhang, T., Yu, J., Huang, Z., Wang, G., Zhang, R. Electroacupuncture improves neurogenic bladder dysfunction through activation of NGF/TrkA signaling in a rat model. J Cell Biochem. 120 (6), 9900-9905 (2019).
  19. Liu, Q., et al. The protein kinase A signaling pathway mediates the effect of electroacupuncture on excessive contraction of the bladder detrusor in a rat model of neurogenic bladder. Acupunct Med. 42 (1), 32-38 (2024).
  20. Xu, Y., et al. Effectiveness of acupuncture in the governor vessel and yangming meridian for the treatment of acute ischemic stroke:a systematic review and network meta-analysis. PLoS One. 19 (4), (2024).
  21. Hu, Y., et al. Effects of electroacupuncture on glial scar generation in SCI model rats. Anat Rec (Hoboken). 306 (12), 3156-3168 (2023).
  22. Ding, N., Hao, X., Zhang, Y., Zhang, Y., Li, Z. Benign regulation of short-chain fatty acids:the underlying mechanism of the beneficial effects of manual acupuncture on cognitive ability and the intestinal mucosal barrier in APP/PS1 mice. Front Neurosci. 19, 1509581(2025).
  23. Wang, Z. D., et al. Electroacupuncture efficacy evaluation on blood-brain barrier and cerebral blood flow function in SAMP8 mice. Pak Vet J. 45 (1), 149-161 (2025).
  24. Koozekanani, S. H., Vise, W. M., Hashemi, R. M., McGhee, R. B. Possible mechanisms for observed pathophysiological variability in experimental spinal cord injury by the method of Allen. J Neurosurg. 44 (4), 429-434 (1976).
  25. Basso, D. M., Beattie, M. S., Bresnahan, J. C. A sensitive and reliable locomotor rating scale for open field testing in rats. J Neurotrauma. 12 (1), 1-21 (1995).
  26. Bai, J., et al. The impact of electroacupuncture on anxiety-like behavior and gut microbiome in a mouse model of chronic restraint stress. Front Behav Neurosci. 17, 1292835(2023).
  27. Man, S. C., et al. A pilot controlled trial of a combination of dense cranial electroacupuncture stimulation and body acupuncture for post-stroke depression. BMC Complement Altern Med. 14, 255(2014).
  28. Zhang, Y., et al. Manual acupuncture benignly regulates blood-brain barrier disruption and reduces lipopolysaccharide loading and systemic inflammation, possibly by adjusting the gut microbiota. Front Aging Neurosci. 14, 1018371(2022).
  29. Wang, X., et al. Electroacupuncture in promoting neural repair after spinal cord injury:inhibiting the Notch signaling pathway and regulating downstream proteins expression. Anat Rec (Hoboken). 304 (11), 2494-2505 (2021).
  30. Wang, W. W., Xie, C. L., Lu, L., Zheng, G. Q. A systematic review and meta-analysis of Baihui (GV20)-based scalp acupuncture in experimental ischemic stroke. Sci Rep. 4, 3981(2014).
  31. Lu, X. Y., et al. Impact of acupuncture on ischemia/reperfusion injury:unraveling the role of miR-34c-5p and autophagy activation. Brain Res Bull. 215, 111031(2024).
  32. Song, Y., Chen, Y., Li, J., Sun, W., Jin, F. Manual acupuncture enhanced therapeutic efficacy in vascular dementia rat model:systematic review and network meta-analysis. Syst Rev. 14 (1), 80(2025).
  33. Ding, N., Jiang, J., Xu, A., Tang, Y., Li, Z. Manual acupuncture regulates behavior and cerebral blood flow in the SAMP8 mouse model of Alzheimer's disease. Front Neurosci. 13, 37(2019).
  34. Ai, Q., et al. Electroacupuncture inhibits oxidative stress and improves cognitive function by downregulating the Ang II/AT1R/NOX axis in chronic cerebral ischemia rats. Neurosci Lett. 851, 138179(2025).
  35. Wang, X., et al. Electroacupuncture at Dazhui (GV14) and Mingmen (GV4) protects against spinal cord injury:the role of the Wnt/β-catenin signaling pathway. Neural Regen Res. 11 (12), 2004-2011 (2016).
  36. Li, K., et al. Effect of electroacupuncture treatment at Dazhui (GV14) and Mingmen (GV4) modulates the PI3K/Akt/mTOR signaling pathway in rats after spinal cord injury. Neural Plast. 2020, 5474608(2020).
  37. Ahuja, C. S., Martin, A. R., Fehlings, M. Recent advances in managing a spinal cord injury secondary to trauma. F1000Res. 5, F1000 Faculty Rev-1017(2016).
  38. Jure, I., De Nicola, A. F., Encinas, J. M., Labombarda, F. Spinal cord injury leads to hippocampal glial alterations and neural stem cell inactivation. Cell Mol Neurobiol. 42 (1), 197-215 (2022).
  39. Bromley-Brits, K., Deng, Y., Song, W. Morris water maze test for learning and memory deficits in Alzheimer's disease model mice. J Vis Exp. (53), e2920(2011).
  40. Kraeuter, A. K., Guest, P. C., Sarnyai, Z. The Y-maze for assessment of spatial working and reference memory in mice. Methods Mol Biol. 1916, 105-111 (1916).
  41. Leger, M., et al. Object recognition test in mice. Nat Protoc. 8 (12), 2531-2537 (2013).
  42. Li, C., et al. Regulation of NRF2/GPX4 signaling pathway by hyperbaric oxygen protects against depressive behavior and cognitive impairment in a spinal cord injury rat model. CNS Neurosci Ther. 31 (5), e70421(2025).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

Y
اتصل بنا
أوصِ بها للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

2026 © حقوق الطبع والنشر MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.