تمت الموافقة على جميع إجراءات من قبل لجنة أخلاقيات في جامعة بكين للطب الصيني [BUCM-2023-0912] وأجريت وفقا للإرشادات المؤسسية والوطنية لرعاية واستخدام المختبرية. لم يكن هناك أي أشخاص مشاركين.
المواد المستخدمة والمواد المستخدمة مدرجة في جدول المواد.
1. المواد والكواشف
تم استخدام مذيبات تحليلية وكواشف بدرجة علم الأحياء الجزيئي طوال الوقت. جميع المعلومات التجارية، بما في ذلك المصنعين، أرقام الكتالوج، وتفاصيل تراخيص البرمجيات، مقدمة في جدول المواد (xlsx). تم إزالة الأيونات من المياه لجميع التحضيرات وتصفيتها. تم تجهيز جميع المخازن المؤقت طازجة أو مخزنة تحت الظروف المحددة أدناه.
2. إعداد المعدات والبرمجيات
نظام UPLC-MS/MS مرتبط بمطياف كتلة رباعي الأقطاب؛ جهاز طرد مركزي مبرد مع دوار دلو متأرجح؛ حاضنة CO₂ تحافظ على 37 درجة مئوية، 5٪ CO₂، ورطوبة نسبية ≥95٪؛ قارئ ميكرو ليت (450 نانومتر)؛ جهاز دورة حرارة PCR في الوقت الحقيقي؛ الرحلان الكهربائي وجهاز التطهير؛ وتم استخدام مجهر فلوري مزود بمرشحات ثابتة للإثارة/الانبعاث. تم إجراء التحكم في الأجهزة وتحليل البيانات في MassLynx v4.2 لبيانات الكروماتوغرافية وتحليل الكتلة المطيافية في AutoDock 4.2 مع AutoDockTools 1.5.7 للالتحط. تم إجراء تحليل الصور في ImageJ/Fiji v1.53.
3. تحضير سائل الحقنة الشرجية ديباي (DBE)
تم سحق الخليط العشبي الذي يتكون من ديو (50 جرام)، وبيجي (50 جرام)، وإرتشا (20 جرام) بشكل خشن ونقعه في 1200 مل من ماء منزوع الأيونات في درجة حرارة الغرفة لمدة 30 دقيقة لضمان الترطيب الكامل. تم نقع الخليط المنقوع تحت غليان قوي لمدة 30 دقيقة مع تحريك متقطع لمنع الالتصاق. تم ترشيح المحلول الساخن عبر شاش طبي متعدد الطبقات معقم إلى زجاج معقم لإزالة المواد غير القابلة للذوبان. تم تركيز الترشيح في الفراغ في حمام ماء لا يتجاوز 45 درجة مئوية حتى يتم الحصول على تركيز نهائي للمخزون 1.98 جرام/مل (مخزون عالي الجرعة). تم تحضير محاليل العمل بجرعات متوسطة ومنخفضة عند 0.99 جرام/مل و0.50 جرام/مل عن طريق التخفيف باستخدام مياه معقمة منزوع الأيونات حتى حجم نهائي يبلغ 100 مل لكل منهما. كان يمر كل محلول عبر غشاء بحجم 0.22 ميكرومتر تحت ظروف معقمة، ويصرف في حاويات معقمة موسومة، ويخزن عند 4 درجات مئوية لمدة تصل إلى سبعة أيام. قبل الاستخدام، كانت المحاليل تخلط بلطف؛ كان المظهر المقبول واضحا إلى قليل من العقيق بدون جزيئات ظاهرة.
4. UPLC - تحليل MS/MS ل DBE
تم وزن المسحوق من كل مكون طبي بدقة 50 ملغ واستخرجه ب 1.0 مل من 80٪ ميثانول (v/v) بواسطة تحريك بالموجات فوق الصوتية لمدة 30 دقيقة في درجة الحرارة المحيطة. تمت إعادة المستخلصات إلى درجة حرارة الغرفة بعد السونيك، وتم طرد مركزها بحرارة 15,000 × جرام لمدة 10 دقائق عند 4 درجات مئوية، وتم ترشيح المواد الفائقة عبر أغشية قطرها 0.22 ميكرومتر إلى قوارير سامبلر تلقائية. تم إجراء فصل كروماتوغرافي على عمود طور معكوس (2.1 × 100 مم، 1.8 ميكرومتر؛ نوع C18 ذو نهاية قطبية) يحافظ على درجة حرارة 35 °م؛ يتم توفير العلامة التجارية للعمود أو الطراز ورقم الكتالوج في جدول المواد. المرحلة المتنقلة A: حمض الفورميك 0.1٪ في الماء؛ المرحلة المتنقلة B: الأسيتونيتريل. معدل التدفق: 0.30 مل/دقيقة؛ حجم الحقن: 10 ميكرولتر. التدرج: 5٪ B لمدة 0-2 دقيقة؛ 5→95٪ B من 2 إلى 20 دقيقة؛ 95٪ B لمدة 20-23 دقيقة؛ 95→5٪ B من 23.0 إلى 23.1 دقيقة؛ إعادة التوازن عند 5٪ B حتى الدقيقة 26 (جدول التدرج الكامل مقدم في الجدول 1).
استخدم مطيافية الكتلة التأين بالرش الكهربائي مع التبديل الموجب/السالب، والحصول على البيانات من خلال المسح منخفض وعالي الطاقة (MSE). نطاق الكتلة: m/z 100-1,500; جهد الشعيرات الدموية: 2.0 كيلوفولت؛ مخروط العينة: 20 فولت؛ درجة حرارة المصدر: 120 درجة مئوية؛ درجة حرارة الذوبان: 360 درجة مئوية؛ غاز المخروط: 50 لتر/ساعة؛ غاز الذوبان: 600 لتر/ساعة. تستخدم دالة الطاقة العالية طاقة تصادم متدرجة تتراوح بين 20-50 إلكترون فولت. تمت معالجة البيانات في MassLynx v4.2 مع تصحيح الكتلة القفلية ومعايير كشف الذروة القياسية. قائمة شاملة تضم 105 مكونات محددة (الصيغ الجزيئية، الملاحظة في الجزء، أوقات الاحتفاظ، ودرجات الثقة) في الجدول التكميلي 1.
5. الالتحام الجزيئي
تم إجراء الالتحام في أوتودوك 4.2 وفق بروتوكول تركيب مستحث. تم إعداد البنية ثلاثية الأبعاد ل S100β (PDB 3HCM) عن طريق إزالة جزيئات الماء البلورية، وإضافة الهيدروجينات القطبية، وتعيين شحنات كولمان. تم بناء هياكل ليغاند تمثل مكونات DBE المميزة، وتم تحويلها إلى بروتونات عند درجة حموضة فسيولوجية، وتم تقليل الطاقة. تم تحديد موقع الربط بواسطة إحداثيات الليغاند الأصلية؛ تم التعامل مع بقايا حمض الأمين ضمن 6 أنجلوست من الليغاند الأصلي على أنها مرنة أثناء الالتحام. كانت صناديق الشبكة تغطي الجيب بأكمله بمسافة شبكية تبلغ 0.375 أنجلوستروم (Å). كانت معلمات خوارزمية الوراثة اللاماركية: حجم السكان 150؛ تقييمات طاقة تصل إلى 2.5 × 10⁶؛ 100 جري مستقل لكل ليجند. تم تصنيف الوضعيات النهائية حسب الطاقة الحرة المتوقعة للارتباط وتجميعها بواسطة RMSD؛ تم تصور أنماط التفاعل (الروابط الهيدروجينية، الاتصالات الكارهة للماء، تفاعلات π-π) لتحقيق الاتساق مع مجمعات S100β المعروفة.
6. نموذج لعلاج التهاب القولون الناتج عن DSS وعلاج DBE
تم تأقلم ذكور فئران C57BL/6J (8 أسابيع، 20-22 جرام) لمدة لا تقل عن 7 أيام عند 22 ± 2 درجة مئوية، رطوبة نسبية 50٪-60٪، دورة 12 ساعة من الضوء إلى الظلام، مع تناول الطعام والماء بحرية اللازم. تم تقسيم عشوائيا إلى ست مجموعات (n = 10/مجموعة): ضابطة، نموذج كبريتات الصوديوم (DSS)، دليل إيجابي للسلفاسالازين (SASP)، وعلاجات DBE بجرعات منخفضة ومتوسطة وعالية. كان الموظفون المسؤولون عن تقييم النسيجات وقياس الصور غير مبالين بتوزيع المجموعات.
تم تحفيز التهاب القولون التجريبي بواسطة DSS بنسبة 2.0٪ (مع الخصم/الجسم) في مياه الشرب لمدة 7 أيام، تلاها 1.0٪ DSS لمدة 3 أيام، ثم ماء منتظم لمدة 4 أيام قبل القتل الرحيم. تم إعطاء DBE مرة واحدة يوميا عن طريق حقنة شرجية بقوة 10 مل/كغ باستخدام قسطرة مرنة تم إدخالها على بعد 2.5 سم في المستقيم؛ تم الاحتفاظ بالحيوانات عموديا لمدة 30 دقيقة لتقليل التسرب. كانت جرعات DBE اليومية 12.35، 27.4، و49.4 جرام/كغ/يوميا للمجموعات المنخفضة والمتوسطة والعالية على التوالي؛ تم إعطاء SASP بجرعة 0.5 جرام/كغ/يوميا كحالة ضابطة إيجابية. تم تسجيل وزن الجسم، وقوام البراز، ودم البراز الخفي يوميا لحساب مؤشر نشاط المرض. في النهاية، تم تخدير الفئران ببنتوباربيتال الصوديوم 50 ملغ/كغ i.p.؛ تم جمع الدم من الجيب الرجعي الحجاجي باستخدام الشعيرات الدموية الهيبارينية؛ تم إعدام بالقتل الرحيم بسبب خلع عنق الرحم. تم استئصال القولون من الوصلة اللفائفي إلى المستقيم، وتم تمديده بلطف، وتم قياس الطول تحت ضغط ضئيل. تم تثبيت المقاطع التمثيلية في 4٪ بارافورمالديهايد؛ تم تجميد الأنسجة المتبقية في النيتروجين السائل وتخزينها عند درجة حرارة −80 درجة مئوية.
7. تحضير مصل يحتوي على الأدوية
تم تقسيم ذكور فئران سبراج-داولي عشوائيا إلى مجموعات ضابطة ومجموعات DBE (n = 6/مجموعة). تلقت مجموعة DBE 12.34 جم/كغ/يوم عن طريق التميح الفموي مرة واحدة يوميا لمدة 7 أيام؛ تلقت عناصر التحكم ماء نقيا بنفس الحجم. بعد أربع وعشرين ساعة من الجرعة النهائية، تم تخدير، وجمع الدم الكامل من الشريان الأبهر البطني. تم فصل المصل بعد التجلط لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة، تلاها الطرد المركزي عند 1500 × جرام لمدة 10 دقائق عند 4 درجات مئوية. تم تعطيل المصل حراريا عند درجة حرارة 56 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة وترشيح عبر أغشية بحجم 0.22 ميكرومتر تحت ظروف معقمة قبل التخزين. تم إدخال المصل إلى أنابيب معقمة وتخزينه عند −80 درجة مئوية. تم استبعاد العينات المحللة من الهيمول، والتي تم تحديدها من خلال ارتفاع الامتصاص بالقرب من 414 نانومتر.
8. الفحص الأنسجي (H&E)
تم تجفيف نسيج القولون المثبت في بارافورمالديهيد بنسبة 4٪ لمدة 24 ساعة عبر الإيثانول المصنف، وتم تطهيره في الزيلين، وغرس في البارافين. تم قطع الأقسام (5 ميكرومتر) وإزالة البارافين وإعادة ترطيبها وصبغها بالهيماتوكسيلين لمدة 5 دقائق، ثم تم تلوينها في ماء جاري لمدة 5 دقائق، وصبغها بالإيوزين لمدة دقيقتين. تم تركيب شرائح باستخدام الراتنج وفحصها من حيث بنية القبو، وكثافة خلايا الكأس، واستمرارية الظهارة، والتسرب الالتهابي. سيتم الإشارة إلى التعديلات التمثيلية باستخدام الأسهم/رؤوس الأسهم ومعرفة في أساطير الشخصيات؛ سيتم تحديد أشرطة المقياس (مثل 200 ميكرومتر) والعتبات البصرية المحددة مسبقا في الأساطير.
9. الكيمياء المناعية (IHC)
خضعت أقسام البارافين لسحب المستضدات في محلول السيترات (pH 6.0) لمدة 15-20 دقيقة عند 95-98 درجة مئوية، وتبريد بيروكسيداز داخلي بنسبة 3٪ بيروكسيد الهيدروجين لمدة 10 دقائق، وتم تقييد المحلول بنسبة 5٪ مصل طبيعي لمدة ساعة واحدة في درجة حرارة الغرفة. تم حضان الأجسام المضادة الأولية طوال الليل عند درجة حرارة 4 درجات مئوية في غرفة رطبة. بعد الغسيل، تمت معالجة المقاطع باستخدام نظام كشف ستريبتافيدين-بيروكسيداز، تم تطويره باستخدام DAB لمدة دقيقتين (مراقبة مجهرية)، ثم صبغ بالهيماتوكسيلين، ثم جفف، وتم تركيبه. تم تضمين الضوابط السلبية التي تفتقر إلى الجسم المضاد الأساسي في كل دفعة.
10. تحليل التألق المناعي (IF)
تم إزالة البارافينات من القطع المدمجة بالبارافين وتعرضها لاسترجاع المستضدات في مخزن EDTA (pH 8.0). بعد التبريد، تم حجب الارتباط غير النوعي بألبومين مصل البقري بنسبة 3٪ لمدة ساعة في درجة حرارة الغرفة. تم حضنة الأقسام طوال الليل عند 4 درجات مئوية مع الأجسام المضادة الأولية ضد GFAP (1:500) و S100β (1:200)، تلتها أجسام مضادة ثانوية متقاربة بالفلوروفور (1:500) لمدة ساعة واحدة في درجة حرارة الغرفة في الظلام. تم تلوين النوى بتقنية DAPI، وتم تركيب الشرائح في وسط مضاد للتلاشي. تم التقاط الصور باستخدام أهداف متطابقة، وزمن تعريض ثابت يبلغ 100 مللي ثانية، وكسب كاشف 1.0 عبر المجموعات. تم قياس متوسط شدة الفلورة في ImageJ/Fiji v1.53 بعد معايرة حجم البكسل، وطرح الخلفية (نصف قطر كرة الدوران 50 بكسل)، والتطبيع إلى منطقة إيجابية DAPI. تم تحليل ما لا يقل عن خمس نسخ بيولوجية لكل مجموعة وثلاثة حقول غير متداخلة لكل نسخة.
11. زراعة الخلايا والعلاجات
تم زراعة خلايا الفئران الدبقية المعوية (التسمية CRL-2690) في DMEM مع 10٪ مصل بقري جنيني و1٪ بنسلين-ستريبتوميسين عند 37 درجة مئوية في حاضنة رطبة تحتوي على 5٪ CO₂. تم تأكيد هوية الخلية من خلال التحليل المتكرر القصير المتتالي، وكانت الزراعة خالية من الميكوبلازما. أجريت التجارب في الفقرات 5-15. تم زرع الخلايا في صفائح ذات 6 آبار بحجم 2.0 × 10⁵ خلايا/بئر في وسط 2.0 مل/بئر وسمح لها بالالتصاق لمدة 24 ساعة. كانت المجموعات التجريبية هي: ضابط غير معالج، ضابط مركبة، نموذج، مصل DBE، ومثبط.
في التحفيز النموذجي، تعرضت الخلايا لبوليسكاريد الدهون (LPS، 1 ميكروغرام/مل) بالإضافة إلى IFN-γ (20 نانوغرام/مل) لمدة 24 ساعة في وسط كامل؛ القيمة المقابلة ل U/mL ل IFN-γ تذكر في جدول المواد وفقا للقوة الخاصة بالدفعة. في معالجة مصل DBE، تلقت الخلايا مصل جرذ محبط بالحرارة بنسبة 15٪ (56 درجة مئوية، 30 دقيقة)، و0.22 ميكرومتر يحتوي على DBE مصفى في وسط كامل لمدة 24 ساعة (يستخدم نطاق الجرعة 5٪-20٪ لتحسين الصلاحية كما هو محدد في قسم CCK-8). لمعالجة المثبط، تم تطبيق مثبط S100β الانتقائي SBI-4211 (10-50 ميكرومولار؛ 45 ميكرومولار للقراءات الرئيسية) لمدة 24 ساعة. تطابقت ضوابط المركبات مع محتوى المذيب (0.1٪ DMSO (v/v)) مع وسط متطابق في الخارج. ما لم يذكر خلاف ذلك، كانت العلاجات تحضر في وسط دافئ مسبقا (37 درجة مئوية)، وكانت الخلايا تغسل 2× ب PBS قبل استبدال العلاج. بعد العلاج، تم جمع الخلايا لاستخراج الرنا، وتحليل البروتينات، والفلورة المناعية كما هو موضح في الأقسام التالية. كان التكاثر البيولوجي ≥ خمس ثقافات مستقلة لكل حالة.
12. اختبار بقاء خلايا CCK-8
تم زرع الخلايا في صفائح بحجم 96 بئر بحجم 5 × 10³ في بئر في وسط 100 ميكرولتر وتركت لتثبت طوال الليل. تم استبدال الوسط بوسط يحتوي على مصل معالج ب DBE بنسبة 5٪ أو 10٪ أو 15٪ أو 20٪ (v/v) لمدة 24 ساعة. أضيف كاشف CCK-8 (10 ميكرولتر/بئر)، وتم حضن الألواح لمدة ساعة واحدة عند 37 درجة مئوية. تمت قراءة الامتصاص عند 450 نانومتر مع طرح فارغ (وسط + كاشف، بدون خلايا). تم التعبير عن الجدوى كنسبة مئوية من التحكم في المركبات. كل حالة استخدمت n ≥ 5 نسخ بيولوجية (مزارع مستقلة) مع ثلاث نسخ تقنية لكل مزرعة.
13. ELISA للسيتوكينات الأنسجة
تم تجانس نسيج القولون على الثلج في PBS (1:9، بدون زجاج) يحتوي على مثبطات بروتيياز. تم توضيح التجانسات ب 12,000 × جرام لمدة 10 دقائق عند 4 درجات مئوية؛ تم اختبار الفائقين للكشف عن IL-1β وTNF-α وفقا لبروتوكولات المجموعة. تم تشغيل المعايير والعينات بشكل مكرر، وتم تزويد المنحنيات بنموذج لوجستي من أربعة معاملات (4PL) بمعدل R² ≥ 0.99؛ تم قبول المعايير المحسوبة بعكس الحساب ضمن 85٪-115٪ من النسبة الاسمية. تمت قراءة الامتصاص عند 450 نانومتر مع مرجع 620-650 نانومتر عند توفره. تم تطبيع تركيزات السيتوكين إلى وزن النسيج (نسيج pg/mg). شملت كل مجموعة n ≥ 5 نسخ بيولوجية.
14. PCR الكمي في الوقت الحقيقي (qPCR)
تم عزل الحمض النووي الريبي الكلي من نسيج القولون (أو الخلايا، حسب الاقتضاء) باستخدام مجموعة عمود دوران من غشاء السيليكا. تم التحقق من سلامة الحمض النووي الريبي بواسطة A₂₆₀/A₂₈₀ = 1.8-2.1 وفحص أجاروز-جيل. تم تصنيع cDNA للسلسلة الأولى من 1 ميكروغرام RNA مع إزالة الحمض النووي الجيني. استخدم qPCR مزيج SYBR Green Master على جهاز دورة حرارية معاير مع البرنامج: 95 °C 30 ثانية؛ 40 دورة بمعدل 95 درجة مئوية 5 ثوان، 60 درجة مئوية 30 ثانية؛ منحنى الانصهار 65-95 درجة مئوية في 0.5 درجة مئوية/5 خطوات ثانية. عمل GAPDH كضابط داخلي. تم حساب التعبير النسبي بواسطة 2⁻ΔΔCt بعد التحقق من كفاءة البادئات (90٪-110٪، من منحدرات المنحنى القياسي). تم تضمين عناصر التحكم بدون RT وبدون قالب. تسلسلات البادئات مدرجة في الجدول 2. كل مجموعة كان لديها n ≥ 5 نسخ بيولوجية وتكراران تقنيان لكل عينة.
15. تحليل البقعة الغربية
تم استخراج البروتينات من نسيج القولون (أو الخلايا) في مخزن RIPA باستخدام مثبطات البروتياز/الفوسفاتاز وتم قياسها بواسطة اختبار BCA. تم تفكيك البروتين المتساوي (30 ميكروغرام/مسار)، وحل على SDS-PAGE بتدرج 4-20٪، ونقله إلى PVDF (0.45 ميكرومتر؛ 0.2 ميكرومتر لأهداف ≤ 20 كيلو دالتون). تم حجب الأغشية في حليب خالي الدسم بنسبة 5٪ لمدة ساعتين في درجة حرارة الغرفة وحضنتها طوال الليل عند 4 درجات مئوية مع الأجسام المضادة الأولية ضد GFAP (1:1,000)، S100β (1:1,000)، iNOS (1:1,000)، NF-κB p65 (1:1,000)، فوسفو-NF-κB p65 (Ser536، 1:1,000)، أوكلودين (1:1,000)، كلودين-1 (1:1,000)، وGAPDH (1:5,000). تم تطبيق الأجسام المضادة الثانوية المترافقة مع HRP (1:5,000) لمدة ساعة واحدة في درجة حرارة الغرفة. تم تطوير الإشارات باستخدام ECL؛ كانت أوقات التعريض مقيدة بالنطاق الديناميكي الخطي (10-90 ثانية). تم التحقق من النقلات من خلال تلوين الغشاء العكسي قبل الحصر. تم قياس شدة النطاق في ImageJ/Fiji v1.53 بعد طرح الخلفية وتم تطبيعه إلى GAPDH. الأوزان الجزيئية المتوقعة: GFAP ~49 كيلو دالتون، S100β ~10-12 كيلو دالتون، NF-κB p65 ~65 كيلو دالتون، iNOS ~130 كيلو دالتون، أوكلودين ~65 كيلو دالتون، كلودين-1 ~22 كيلو دالتون، GAPDH ~36-37 كيلو دالتون. شمل كل تحليل n ≥ 5 نسخ بيولوجية.
16. التحليل الإحصائي
تم تحليل البيانات في GraphPad Prism 8.0 وتم تقديمها كمتوسط ± SEM. للمقارنات بين مجموعات متعددة، تم استخدام تحليل أنوفاي أحادي الاتجاه متبوعا باختبار توكي بعد الاختبار؛ للمقارنات الزوجية، تم تطبيق اختبارات t للطالب ذات الذيلين غير المقرنين عند الاقتضاء. بالنسبة للتصاميم ذات المسار الزمني أو التصاميم ذات العوامل الثنائية (مثل العلاج × الجرعة أو العلاج × الوقت)، تم استخدام ANOVA ثنائي الاتجاه (مقاييس متكررة عند الاقتضاء) مع تصحيح توكي أو دانيت كما هو محدد في أسطوانات الأشكال. استخدمت اختبارات شابيرو-ويلك وليفين لفحص الطبيعية والتجانسة قبل الاختبارات البارامترية؛ عندما تم انتهاك الافتراضات، كانت البيانات تحول إلى سجل أو تحلل باستخدام اختبارات غير معلمية مناسبة (كروسكال-واليس مع اختبار دان بعد الاستخدام؛ مان-ويتني U للزوج). يتم الإبلاغ عن قيم p الدقيقة ومقاييس حجم التأثير (η² ل ANOVA، وd كوهين لاختبارات t) في أساطير الأشكال حيثما كان ذلك مناسبا. اعتبر الp ذو الجانبين < 0.05 ذا دلالة إحصائية. تستخدم أساطير الأشكال الرموز التالية للدلالة: *p<0.05، **p<0.01، *** p<0.001 مقابل Control; # p<0.05, ## p<0.01, ### p<0.001 مقابل DSS; NS، غير مهم.
17. النتائج المتوقعة ومراقبة الجودة
من المتوقع أن يؤدي DSS إلى تقصير طول القولون، ورفع مؤشر نشاط المرض، وإحداث تلف نسيجي (تشوه معماري القدافة، استنزاف خلايا الكأس، تآكل الظهارة). يجب أن يحسن علاج DBE هذه المؤشرات اعتمادا على الجرعة ويقلل من مؤشرات تنشيط الأمعاء الدبقية. يجب أن تظهر البقع الغربية نطاقات عند الأوزان الجزيئية المذكورة أعلاه، مع زيادة الإشارات في DSS والتوهين باستخدام DBE أو SBI-4211؛ يجب أن تبقى التعريضات ضمن النطاق الديناميكي الخطي. يجب أن يظهر التألق المناعي ل GFAP و S100β شدة متوسطة مرتفعة في DSS وانخفاضا بعد علاج DBE. يجب أن تعرض كروماتوغرامات LC-MS/MS أوقات احتفاظ مستقرة (انحراف ≤ 0.2 دقيقة) ودقة كتلة ضمن ± 5 جزء في المليون للأيونات المرجعية، مع أيونات شظايا مميزة للمكونات الرئيسية. يجب ألا تعطي الضوابط السلبية (مثل حذف الأجسام المضادة الأولية) إشارة محددة. يجب أن تبقى معلمات اكتساب التصوير (الهدفية، التعريض، الكسب، الغاما) ثابتة عبر المجموعات لتمكين المقارنات الكمية الصحيحة.
18. ملاحظات استكشاف الأخطاء
العكارة أو الجسيمات في محاليل DBE تشير إلى عدم كفاية الترشيح أو الترطيب؛ كرر ترشيح 0.22 ميكرومتر وتأكد من الرقم الهيدروجيني 6.5-7.5. الوفاة المفرطة أو فقدان الوزن الشديد أثناء التعرض لمتلازمة DSS تشير إلى الإفراط في التحفيز؛ تقليل تركيز DSS، وتحقق من الوزن الجزيئي الدفعي، واستبدال محاليل DSS يوميا. عادة ما يعكس القياس غير المتسق للفوضى المناعية التعريض المتغير؛ حدد وقت التعريض والكسب، وأضف شريحة مرجعية للمعايرة الدفعية. قد تعكس نطاقات البقع الغربية الضعيفة انخفاض التحميل أو عدم كفاءة النقل؛ تحقق من كمية البروتين، واختر نسبة الجل المناسبة أو التدرج، وتأكد من النقل عبر التلوين الغشائي العكسي. ملاءمة ELISA السيئة (R² < 0.99 أو الحساب العكسي القياسي خارج 85-115٪) تستدعي تكرار المنحنى القياسي وإعادة تقييم العينات المخففة. بالنسبة لتشغيل qPCR بكفاءة برايمر تتجاوز 90-110٪، أعد تحسين درجة حرارة التلدين أو تركيز البرايمر قبل التحليل.