يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

مطيافية الرنين المغناطيسي للفوسفور-31 للقياسات التسلسلية للطاقة القلبية أثناء حفظ القلب بدرجة حرارة

302 مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/70070

⸱

مارس 17, 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Division of Cardiac Surgery, Johns Hopkins University School of Medicine, 2Division of MR Research, Russell H. Morgan Department of Radiology and Radiological Science, Johns Hopkins University School of Medicine, 3Krieger School of Arts and Sciences, Johns Hopkins University, 4Johns Hopkins University School of Medicine, 5Department of Pediatric Cardiac Surgery, Johns Hopkins University School of Medicine

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

في هذا المقال، وصفنا بروتوكولا قابلا للتكرار ويتم التحكم فيه بدرجة الحرارة لتحليل طياف الرنين المغناطيسي للفوسفور-31 خارج الجسم الحي ، مما يمكن من التقييم التسلسلي والكمي لطاقة عضلة القلب أثناء حفظ الأعضاء.

الملخص

الحفاظ الموثوق على الأعضاء أمر بالغ الأهمية لزيادة توفر المتبرعين وتحسين نتائج الزراعة. بينما لا يزال التخزين الساكن هو المعيار في قلوب المتبرعين، هناك حاجة لطرق دقيقة لمراقبة طاقة عضلة القلب طوال فترة الحفظ.

يتيح مطيافية الرنين المغناطيسي للفوسفور-31 (31P MRS) القياس المباشر والديناميكي لمستقلبات الطاقة الرئيسية، بما في ذلك الفوسفوكريتين (PCr)، أدينوزين ثلاثي الفوسفات (ATP)، الفوسفات غير العضوي (Pi)، والرقم الهيدروجيني داخل الخلية. تسمح هذه التقنية بتقييم طولي وكمي ودقيق لحالة الأيض في عضلة القلب أثناء التخزين خارج الجسم الحي . تشمل مزايا MRS التقييم الديناميكي لحالة الطاقة وتقييما عالميا لطاقة البطين.

يبدأ البروتوكول بتعافي متبرع الخنازير، وإعطاء القلب، واستئصال القلب. يقطع القوس الأبهر بالقرب من الجذع العضدي والسيفالي لتعظيم طول الشريان الأبهر الصاعد. يتم تثبيت قنية مضلعة في الشريان الأبهر الصاعد البعيد، ويتم وضع علامة على الأذين الأيسر، ووضع القلب في وعاء أسطواني معزول مملوء مسبقا بشلل القلب حسب درجة الحرارة. يتصل الغطاء بالكانيولا، معلقا القلب بداخله، ويتم إغلاق الحاوية، مع الحفاظ على درجة حرارة ضمن 1 درجة مئوية لمدة ساعة.

توضع الحاوية في صندوق من الستايروفوم مخصص مع فتحة لملف مضبوط بالفوسفور، بحيث يتوافق مركز الملف مع مركز البطين الأيسر (LV). صور الاستطلاع تؤكد وضع LV بالقرب من ملف 31P. يضمن الاهتزاز B0 إثارة منتظمة، يتبعه اكتساب طيف MR غير محلي 31P. تحدد المعالجة اللاحقة القمم الطيفية لحساب PCr/ATP، ونسب PCr/Pi، ودرجة الحموضة داخل الخلية.

في بروتوكولنا، يتم إجراء 31P MRS في نقاط زمنية تسلسلية بين h 0 و8. بين الفترات الزمنية، يخزن القلب في جهاز تخزين قياسي عند درجة الحرارة المطلوبة.

31سمح لنا P MRS بدراسة التغيرات المعتمدة على الوقت في استنزاف الطاقة ودور درجة حرارة التخزين في التخفيف من استنزاف الطاقة مع مرور الوقت.

المقدمة

تظل زراعة القلب العلاج النهائي لمرضى مختارة يعانونمن فشل القلب في المرحلة النهائية. ومع ذلك، فإن النقص المستمر في الأعضاء المتبرعة المناسبة وقيود استراتيجيات الحفظ الحالية تشكل عوائق رئيسية أمام النتائج المثلى وتوسيع توفر الزراعة 2,3. تقليديا، يتم حفظ قلوب المتبرعين باستخدام التخزين الساكن البارد، وهو أمر بسيط وفعال من حيث التكلفة، لكنه معرض لاستنزاف الطاقة تحت السريري أثناء النقل المطول 2,4. مع تزايد قبول البرامج لأعضاء ذات مخاطرة أعلى وبعيدة جغرافيا، هناك حاجة متزايدة لأدوات موضوعية تصف الحالة الأيضية لعضلة القلب أثناء الحفظ بدلا من الاعتماد فقط على وقت الإقفار والفحص الإجمالي 5,6,7. بالإضافة إلى ذلك، يتأثر استقلاب عضلة القلب وتحمل الإقفاري بشدة بدرجة الحرارة، ويمكن أن يؤدي التبريد غير الكافي وانخفاض الحرارة المفرط إلى تفاقم استنزاف الطاقة وإصابة الخلايا أثناء التخزين. تقييم قلوب المتبرعين عند درجات حرارة حفظ متعددة ذات صلة سريرية يساعد في تحديد الحالات التي تحافظ على بقاء عضلة القلب بشكل أفضل مع مرور الوقت3.

التقييم الدقيق والديناميكي للطاقة الحيوية لعضلة القلب أثناء التخزين ضروري لتحسين تقنيات الحفظ وتعظيم استخدام الأعضاء. حاليا، تعتمد الممارسة القياسية على التخزين البارد الساكن عند درجات حرارة تتراوح بين حوالي 4-8 درجات مئوية8. على الرغم من أن هذا البروتوكول أظهر نتائج ناجحة خلال فترات تخزين قصيرة، إلا أن التخزين المطول عند هذه الدرجة قد يعرض سلامة عضلة القلب للخطر. لذلك، من الضروري إجراء قياسات متسلسلة للنشاط الأيضي عبر درجات حرارة وفترات مختلفة لتحديد أفضل ظروف التخزين اللازمة لضمان نجاح زراعة الأعضاء. غالبا ما يعتمد التقييم التقليدي لإصابة الحفظ على الفحص النسيجي أو الفحوصات الكيميائية الحيوية من خزعات عضلة القلب، والتي تكون غازية ومدمرة وتوفر فقط لقطات إقليمية متقطعة لحالة الأنسجة9. على النقيض من ذلك، يعد مطيافية الرنين المغناطيسي للفوسفور-31 (31P MRS) وسيلة قوية وغير مدمرة تتيح القياس المباشر والمتسلسل لمستقلبات الطاقة الرئيسية، بما في ذلك الفوسفوكرياتين (PCr)، الأدينوزين ثلاثي الفوسفات (ATP)، الفوسفات غير العضوي (Pi)، والرقم الهيدروجيني داخل الخلية، ضمن أنسجة القلب السليمة 6,10,11,12. من خلال السماح بإجراء قياسات متكررة في نفس العضو دون معالجة إضافية للأنسجة، يوفر 31P MRS رؤى عالمية وطولية حول الحالة الطاقية لعضلة القلب، مما يعزز الدقة التجريبية وقابلية التكرار مقارنة بالطرق القائمة على الخزعة أو النهج البديل في المصل 6,13.

تمت مراجعة تقييم جدوى زراعة القلب باستخدام 31P MRS من قبل برناردوآخرون 14. هنا، يعرض بروتوكول مفصل ومنظم بدرجة الحرارة لجهاز MS خارج الجسم الحي 3 تسلا 31P لقلب الخنزير أثناء الحفظ. توفر هذه الطريقة إطارا عمليا لمراقبة استنزاف الركائز، واختبار متغيرات التخزين، والتحقق من تدخلات الحفظ. البروتوكول مناسب بشكل خاص للمختبرات التي تسعى لقياسات تسلسلية على كامل البطين أثناء التخزين البارد الثابت، مثل دراسات الحفظ المعتمد على درجة الحرارة، أو إصابة نقص الدم بإعادة التروية، أو تحسين المحاليل لقلوب المتبرعين ذات المعايير الهامشية والممتدة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

يتبع هذا البروتوكول إرشادات رعاية الحيوانات المؤسسية وقد تمت الموافقة عليه من قبل لجنة رعاية واستخدام الحيوانات في جامعة جونز هوبكنز (رقم البروتوكول SW24M319) لجميع الإجراءات التي تشمل الحيوانات الحية حتى ويشمل الحصاد الجراحي. أجريت جميع التجارب الخارجية اللاحقة باستخدام أنسجة تم الحصول عليها بعد القتل الرحيم.

1. إجراءات ما قبل الحصاد

  1. اضبط الحاضنة على درجة حرارة أقل ب 2 درجة مئوية من درجة حرارة الحفظ المستهدفة. اترك الحاضنة تستقر لمدة ساعتين على الأقل.
  2. ضع 6-7 أكياس ثلج في الحاضنة لتبريدها مسبقا إلى درجة الحرارة المحددة. تأكد من أن كمية أكياس الثلج كافية للحفاظ على درجة الحرارة أثناء النقل.
  3. تحضير محلول معدل لشلل القلب في سانت توماس:
    1. في 1 لتر من كيس محلول Lactated Ringer، أضف
      1. 30 مل من بيكربونات الصوديوم 8.4٪
      2. 5 مل من 30 ملليمول/10 مل من كلوريد البوتاسيوم
      3. 2.5 مل من 20 ملليمول/10 مل من كبريتات المغنيسيوم
      4. 15 مل من الدكستروز 50٪
      5. 100 ملغ من 50 ملغ/10 مل نيتروجليسرين
      6. 5000 وحدة من الإريثروبويتين البارد
    2. حضر ما مجموعه 3 لترات من محلول القلب وتخزين المحلول في الحاضنة المبردة مسبقا.
  4. ضع المبرد المعزول جانبا مع أنبوب سيليكون مدمج يسمح بتحديد الارتفاع الرأسي للقلب بشكل مثالي. ضع علامة مرجعية سوداء على أنبوب السيليكون في النقطة التي تقع مباشرة تحت طرف فتحة غطاء المبرد.
  5. ضع جانبا قنية مضلعة لتثبيت وتعليق القلب المحصود. ضع علامة مرجعية سوداء على السطح الخارجي للقنية لتكون نقطة محاذاة قابلة للتكرار.

2. إجراءات الحصاد

  1. قم بتهدئة الحيوان باستخدام مزيج من التيلازول والكيتامين والزيلازين ممزوجين في حقنة واحدة وإعطاؤه عبر العضلات، لتقليل التوتر والألم المرتبط بعدة حقن.
    1. تيلازول (50 ملغ تيليتامين + 50 ملغ زولازيبام) بجرعة 4.4 ملغ/كغ لكل مكون.
    2. الكيتامين بجرعة 2.2 ملغ/كجم.
    3. زيلازين بمعدل 2.2 ملغ/كجم.
  2. قم بتنبيبه وتخدير الحيوان.
    1. حجم المد والجزر بين 5-10 مل/كجم.
    2. معدل التنفس 12-15 نفسا في الدقيقة.
    3. ضغط نهائي إيجابي عند 5 سمH2O.
    4. تم استنشاق الإيزوفلوران بنسبة 0.5-2٪ مع تدفق أكسجين يتراوح بين 1-2 لتر/دقيقة.
  3. ضع خطوط وريدية محيطية، وأجر عملية فتح القص وفتح التامور15. أعط مضادات اضطراب نظم القلب إذا لزم الأمر.
  4. ضع إبرة القلب في الشريان الأبهر الصاعد، فوق الصمام الأبهر ولكن أسفل قوس الأبهر.
  5. قم بوضع الشوكة وتوصيل كيس 1 لتر من محلول الكارديوبلجيا بالإبرة.
  6. قم بتهوية الأذين الأيسر، الوريد الأجوف السفلي، والوريد الأجوف العلوي.
  7. ضع مشبك عرضي أبهر قريب على القوس.
  8. ابدأ تدفق القلبية عبر القلبية التاجية بضغط يقارب 75-80 ملم زئبق. راقب الضغط باستخدام مقياس متناغم.
  9. حصاد القلب مع الحفاظ على السلامة التشريحية.
  10. صب محلول ملحي مبرد مسبقا على القلب المحصود لتبريد سطحه بسرعة.
  11. ضع القلب في وعاء مملوء بمحلول بارد للهلل القلبي.
  12. أدخل مسبار درجة حرارة عضلة القلب في قمة القلب، ومقياس حرارة في وعاء محلول الشلل القلبي لمراقبة درجة الحرارة.
  13. افصل الشريان الأبهر عن الشريان الرئوي (PA).
  14. ثبت القنية المضلعة في الشريان الأبهر باستخدام أربطة حريرية وربطة بلاستيكية، مع التأكد من أن الجزء المميز من القنية يتوافق مع موقع البطين الأيسر (LV).
  15. املأ المبرد بمحلول سانت توماس حتى 60-70٪ من السعة، ثم انقل القلب ومحلول الوعاء إلى المبرد لملء كامل، مما يزيد من الغمر.
  16. قس ووثق المحلول النهائي ودرجة حرارة الأنسجة.
  17. ثبت الكانيولا المضلعة على غطاء المبرد باستخدام أنبوب سيليكون عند العلامة المحددة مسبقا. تأكد من أن العلامات على القنية المضلعة وأنبوب السيليكون متزامنة، بحيث يحافظ LV على اتجاه ثابت بالنسبة للغطاء عند إغلاق المبرد، مما يضمن تموضع LV القابل للتكرار في كل فحص (الشكل 1A).
  18. قم بإزالة الهواء من العضو لضمان تجانس المجال الأمثل للرنين المغناطيسي ونسبة إشارة إلى ضوضاء جيدة أثناء جمع بيانات الرنين المغناطيسي.
  19. ثبت غطاء المبرد، لضمان محاذاة الجهد الأيسر (LV).
  20. ضع أكياس الثلج ومبرد في كيس نقل.

3. بروتوكول التحليل الطيفي

  1. هذا البروتوكول محسن لماسح الرنين المغناطيسي بتقنية 3T. مزود ماسح MR بخيار مطيافية متعددة الأنوى، بما في ذلك مضخم ومستقبل ترددات راديوية عريضة النطاق بقدرة 4 كيلوواط، بما في ذلك ملف الفوسفور القياسي المقدم من البائع (P140). ملف 31P هو ملف إرسال/استقبال بقطر 14 سم بحلقة واحدة مع قضيبين للضبط والمطابقة.
  2. إبلاغ موظفي منشأة الرنين المغناطيسي قبل النقل وتأكيد توفر المسح.
  3. جهز صندوق ستايروفوم بأبعاد خارجية كالتالي: الطول 33.5 سم، العرض 28 سم (الحافة الأطول)، العرض 23 سم (الحافة القصيرة)، والسمك 4 سم. اصنع شقا بعرض 3.3 سم على جانب واحد من الصندوق للسماح بوضع ملف 31P بجانب القلب (الشكل 1B).
  4. أدخل المبرد مع وجود القلب المعلق بجانب محور الملف المركزي، مستهدفا موقع ال LV (الشكل 1C). جهز مبردا يبلغ ارتفاعه 25.4 سم وعرضه 11.4 سم. أنبوب السيليكون مثبت بطول 7 سم من السطح الداخلي للغطاء، عند نقطة تثبيت القلب (الشكل 1D).
  5. ضع أكياس الثلج في الفجوات حول المبرد، مع الحرص على تجنب خلق مساحة بين المبرد والملف الداخلي، ثم قم بلصق غطاء الصندوق لضمان الثبات أثناء المسح (الشكل 1E).
  6. مركز المبرد على مركز المغناطيس باستخدام أدلة الليزر وعلامة المركز، لضمان التجانس الأمثل ل B0 (الشكل 1F).
  7. قم بتوصيل ملف 31P بموصل المسح وربط قضبان الضبط والمطابقة بالملف (الشكل 1F).
  8. احصل على صور استطلاع موضعية ثلاثية المستويات للتحقق من موقع الملف والقرب الأمثل من ملف 31P (الشكل 2).
  9. إذا كان وضع LV غير صحيح، قم بتدوير غطاء المبرد وأعد فحص الكشافة.
  10. الحصول على خريطة حقل ثابت B0-map للشيمينغمن الدرجة الثانية المحلية16 لضمان وجود مجال مغناطيسي موحد عبر منطقة الاهتمام المطلوبة لجودة طيفية عالية:
    1. بعد الحصول على خريطة B0، يتم إطلاق "شيمتول"16 تلقائيا مع تحميل تلك الخريطة (الشكل 3).
    2. نقاط النقر لمضلع أملس تحدد عضلة القلب في جميع الشرائح (الشكل 3A).
    3. يقوم "شيمتول" بعد ذلك بإجراء ضبط مربعات صغيرة لتحديد تردد الرنين الموضعي وتصحيحات حقل الشم الأولى (x, xz, yz, x2-y 2, z 2-(x2+y2)/2) (الشكل 3C). قم بتحميل مصطلحات التصحيح هذه إلى الماسح الضوئي وطبقها على الفحوصات التالية.
  11. قبل اكتساب 31P MRS، قم بتدوير قضبان الضبط في الملف لضمان ضبط مثالي لملف التردد الراديوي ومطابقة مقاومته مع نظام MR، مما يؤدي إلى تعظيم كفاءة نقل الإشارة وتقليل الانعكاسات في نظام الترددات الراديوية (الشكل 4).
  12. الحصول على طيف MR غير محلي أولي بحجم 31P (زمن التكرار [TR]: 10 ثوان، زاوية الانقلاب = 90° باستخدام نبضات B1-غير الحساسة للدوران-4 (BIR-4) الأديباتيكية؛ زمن الصدى [TE] = 0.1 مللي ثانية؛ عرض النطاق الترددي=3000 هرتز (هرتز)؛ 1024 نقطة طيفية، 5 متوسطات) لتحديد تردد الرنين في المركز بين قمم PCr و γ-ATP. إجمالي وقت الاستحواذ: 50 ثانية.
  13. ثم تحصل على أطياف MR غير محلية 31P مسترخية بالكامل بعد ضبط تردد الإزاحة بناء على الحساب في 3.12 (TR: 16 ثانية، زاوية الانقلاب = 90° باستخدام نبضات BIR-4 الأديباتيكية؛ TE = 0.1 مللي ثانية; عرض النطاق الترددي = 3000 هرتز؛ 512 نقطة طيفية، 20 متوسطا). إجمالي وقت الاستحواذ: 5 دقائق و20 ثانية.
  14. بعد المسح، قس درجات حرارة السوائل وعضلة القلب؛ مما يضمن الانحراف عن الهدف ≤1 درجة مئوية.
  15. خزن القلب في الحاضنة عند درجة الحرارة المطلوبة حتى الفحص التالي المجدول.

4. تحليل البيانات

  1. تصدير بيانات MRS المرنة بالكامل بحجم 31P ك . ملفات بيانات SDAT وتحميلها في واجهة مستخدم رسومية للمعالجة (الشكل 5A)17.
  2. أولا، قم بعزل الأطياف باستخدام مرشح لورنتزي 15 هرتز (الشكل 5B)، ثم تطبيق إزاحةطور من الدرجة 0 و1، واضبط التردد على 0 أجزاء في مليون (جزء في المليون) في مركز ذروة PCr (الشكل 5C).
  3. ملاءمة الأطياف باستخدام دالة AMARES18 باستخدام قيم المعرفة المدرجة في الجدول 1.
  4. راجع التحليل للتأكد من التوافق المناسب في النافذة التالية (الشكل 6)، من خلال التأكد من تحديد كل قمة بشكل صحيح (المكونات الفردية) وأن الإشارة المتبقية الأدنى تبقى بعد التحليل (البقايا).
  5. احسب نسب مستقلبات عضلة القلب PCr/ATP وPCr/Pi بناء على سعة الذروة الطيفية (الشكل 7). يستخدم رنين γ-ATP كمقياس لاختبار ATP.
  6. احسب الرقم الهيدروجيني داخل الخلية بناء على التحول الكيميائي بين Pi و PCr بعد التعديل، ليعكس حالة درجة الحرارة14.
    ملاحظة: يمكن إيقاف البروتوكول مؤقتا بعد كل فحص بالرنين المغناطيسي (الخطوة 3.15). تأكد من الحفاظ على التحكم في درجة الحرارة طوال الوقت.

5. المعادلات

  1. احسب الرقم الهيدروجيني داخل الخلية (pHi) كما هو موصوفسابقا 19:
    المعادلة 1
    حيث T هي درجة الحرارة بدرجة مئوية، و δ0 هو فرق الإزاحة الكيميائي الملحوظ بين رنين PCr و Pi، بوحدة ppm.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

أدى التداخل المحلي منالدرجة الثانية 16 إلى حقل مغناطيسي أكثر تجانسا B0 عبر منطقة الاهتمام، كما يتضح من تقليل الانحراف المعياري عند كل نقطة زمنية (0 ساعة: 14.0 إلى 4.0 هرتز؛ 4 ساعات: 17.5 إلى 3.2 هرتز؛ 8 ساعات: 16.0 إلى 3.2 هرتز). وقد ضمن ذلك تحقيق جودة طيفية ممتازة في كل نقطة زمنية (الشكل 7). تشير التغيرات الأيضية في عضلة القلب أثناء التخزين البارد خارج الجسم إلى استنزاف سريع لمخزون الفوسفات عالي الطاقة وتحمض داخل الخلايا تدريجيا مع مرور...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

تصف هذه المخطوطة تحضيرا جراحيا وبروتوكول اكتساب وتحليل MRS بحجم 31P للتقييم المتسلسل لطاقة عضلة القلب أثناء حفظ القلب. 31يسمح P MRS بتقييم متسلسل وغير مدمر للمستقلبات القلبية الرئيسية عند درجات حرارة تخزين باردة مختلفة، مما يوفر رؤى جديدة حول قابلية نسيج عضلة القلب الأيضية. هذا البروتوكول 31P MRS سريع نسبيا، ويتطلب وقتا ضئيلا للماسح، مما يسمح بتقييم الطاقة القلبية قبل حدوث تغيرات كبيرة في درجة حرارة الأنسجة. هذا النهج قابل للتكيف مع نماذج الحيوانات الكبير...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

لا يوجد لدينا أي تضارب مصالح.

شكر وتقدير

نود أن نشكر فريقنا في جونز هوبكنز في قسم جراحة القلب والأشعة للمساعدة في تنفيذ هذا البحث بنجاح. تم تمويل هذه الدراسة من قبل الجمعية الأمريكية لجراحة الصدر (AATS).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
الحاضنةبنچمارک ساينتفيك  H2265-HCحاضنة التبريد الساخنة MyTemp 65HC
مبرد عازلجاتوريد052000047097 UPCمبرد مشروبات رياضي معزول من جاتوريد
إصدار jMRUI 7.0جافاwww.jmrui.euواجهة المستخدم الرسومية لتحليل البيانات
مسبار درجة حرارة عضلة القلبدي رويال81-030415مسبار درجة حرارة عضلة القلب من سلسلة DeRoyal 400 (15 مم)
ماسح الرنين المغناطيسيفيليبسhttps://www.philips.com/healthcare/diagnostic-imaging/magnetic-resonance-imagingأشييفا 3T، فيليبس للرعاية الصحية
ملف الفوسفور ذو الحلقة الواحدةفيليبس للرعاية الصحية  https://www.philips.com/healthcare/diagnostic-imaging/magnetic-resonance-imagingP140، فيليبس للرعاية الصحية

المراجع

  1. Lechiancole, A., et al. Graft preservation in heart transplantation: current approaches. Front Cardiovasc Med. 10, 1253579(2023).
  2. Kounatidis, D., et al. Donor heart preservation: current knowledge and the new era of machine perfusion. Int J Mol Sci. 24 (23), 16693(2023).
  3. Ughetto, A., et al. Heart graft preservation technics and limits: an update and perspectives. Front Cardiovasc Med. 10, 1248606(2023).
  4. Wang, C. C., et al. Understanding preservation time thresholds in the modern era of heart transplantation. Sci Rep. 15 (1), 1-10 (2025).
  5. Tang, P. C., et al. Risk factors for heart transplant survival with greater than 5 h of donor heart ischemic time. J Card Surg. 36 (8), 2677-2684 (2021).
  6. Peterzan, M. A., Lewis, A. J. M., Neubauer, S., Rider, O. J. Non-invasive investigation of myocardial energetics in cardiac disease using 31P magnetic resonance spectroscopy. Cardiovasc Diagn Ther. 10 (3), 625-639 (2020).
  7. Lerman, J. B., et al. Donor heart recovery and preservation modalities in 2024. JACC Heart Fail. 12 (3), 427-437 (2024).
  8. Al-Ani, M. A. Z., Farr, M. A., Shah, P. Cold precision: enhancing organ preservation with controlled hypothermia. J Heart Lung Transplant. 43 (9), 1527-1529 (2024).
  9. Mishra, P. K., et al. Guidelines for evaluating myocardial cell death. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 317 (5), H891-H922 (2019).
  10. Abdurrachim, D., Prompers, J. J. Evaluation of cardiac energetics by non-invasive 31P magnetic resonance spectroscopy. Biochim Biophys Acta Mol Basis Dis. 1864 (5), 1939-1948 (2018).
  11. Sourdon, J., Lewsey, S. C., Schär, M., Weiss, R. G. Measuring myocardial energetics with cardiovascular magnetic resonance spectroscopy. Heart Fail Clin. 17 (1), 149-156 (2021).
  12. Samuel, T. J., et al. Myocardial ATP depletion detected noninvasively predicts sudden cardiac death risk in patients with heart failure. JCI Insight. 7 (12), e157557(2022).
  13. Buchthal, S. D., et al. 31P-magnetic resonance spectroscopy studies of cardiac transplant patients at rest. J Cardiovasc Magn Reson. 2 (1), 51-56 (2000).
  14. Bernard, M., Kober, F., Caus, T. Assessing cardiac transplant viability with MRS. eMagRes. 4 (3), 627-633 (2015).
  15. Pla, M. M., et al. A porcine heterotopic heart transplantation protocol for delivery of therapeutics to a cardiac allograft. J Vis Exp. (180), e63114(2022).
  16. Schär, M., Kozerke, S., Fischer, S. E., Boesiger, P. Cardiac SSFP imaging at 3 Tesla. Magn Reson Med. 51 (4), 799-806 (2004).
  17. Naressi, A., Couturier, C., Castang, I., De Beer, R., Graveron-Demilly, D. Java-based graphical user interface for MRUI, a software package for quantitation of in vivo/medical magnetic resonance spectroscopy signals. Comput Biol Med. 31 (4), 269-286 (2001).
  18. Vanhamme, L., Van den Boogaart, A., Van Huffel, S. Improved method for accurate and efficient quantification of MRS data with use of prior knowledge. J Magn Reson. 129 (1), 35-43 (1997).
  19. Taylor, D. J., Bore, P. J., Styles, P., Gadian, D. G., Radda, G. K. Bioenergetics of intact human muscle: a 31P nuclear magnetic resonance study. Mol Biol Med. 1 (1), 77-94 (1983).
  20. Kothari, P. Ex vivo preservation of heart allografts-an overview of the current state. J Cardiovasc Dev Dis. 10 (3), 105(2023).
  21. Kober, F., Caus, T., Riberi, A., Le Fur, Y., Bernard, M. Time course of high-energy phosphate depletion during cold storage of human heart grafts using the Celsior solution. Transpl Int. 37, 12994(2024).
  22. Tsampasian, V., Cameron, D., Sobhan, R., Bazoukis, G., Vassiliou, V. S. Phosphorus magnetic resonance spectroscopy (31P MRS) and cardiovascular disease: the importance of energy. Medicina (Kaunas). 59 (1), 174(2023).
  23. Gupta, A. Cardiac 31P MR spectroscopy: development of the past five decades and future vision-will it be of diagnostic use in clinics. Heart Fail Rev. 28 (2), 485-532 (2023).
  24. Michel, S. G., et al. Preservation of donor hearts using hypothermic oxygenated perfusion. Ann Transplant. 19, 409-416 (2014).
  25. Caenegem, O. V., et al. Hypothermic continuous machine perfusion enables preservation of energy charge and functional recovery of heart grafts in an ex vivo model of donation following circulatory death. Eur J Cardiothorac Surg. 49 (5), 1348-1353 (2016).
  26. Spencer, B. L., et al. Extending heart preservation to 24 h with normothermic perfusion. Front Cardiovasc Med. 11, 1325169(2024).
  27. Iyer, A., et al. Normothermic ex vivo perfusion provides superior organ preservation and enables viability assessment of hearts from DCD donors. Am J Transplant. 15 (2), 371-380 (2015).
  28. Brouckaert, J., Dellgren, G., Wallinder, A., Rega, F. Non-ischaemic preservation of the donor heart in heart transplantation: protocol design and rationale for a randomised, controlled, multicentre clinical trial across eight European countries. BMJ Open. 13 (12), e073729(2023).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

مطيافية الفوسفور-31استقلاب عضلة القلبالقلب خارج الجسممستقليات الطاقةإعطاء محلول شلل القلبنسبة فوسفات الكرياتين إلى ثلاثي فوسفات الأدينوسينالأس الهيدروجيني داخل الخلايا

تم نشر هذه المقالة

الفيديو قريباً

تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.