تسجيل المواد
تم اختيار وتصنيف المرضى الذين يعانون من إصابات شوكية حادة (عدد = 300) الذين عولجوا في المستشفى من يناير 2023 إلى مايو 2025 إلى مجموعة إصابات الحبل الشوكي الكاملة (CSCI) (الدرجة A، n = 98)، ومجموعة إصابات الحبل الشوكي غير المكتملة (ISCI) (الدرجات B وC وD؛ n = 95)، ومجموعة الوظائف العصبية الطبيعية (NNF) (الدرجة E، n = 107) وفقا لمقياس إعاقة إصابات العمود الفقري الأمريكي (تصنيف AIS). بالنسبة للمرضى في مجموعة NNF، تم تأكيد الأدلة الإشعاعية على وجود الحبل الشوكي مثل الوذمة أو الكدمات أو الضغط، بواسطة التصوير بالرنين المغناطيسي (MRI)، لكن لم تظهر أي عيوب حسية أو حركية. تم اختيار 90 مشاركا أصحاء آخرين تم تجنيدهم خلال نفس الفترة كمجموعة ضابطة. كانت معايير الإدراج: (1) تشخيص إصابة الحبل الشوكي مؤكد بالتصوير (الرنين المغناطيسي أو الأشعة المقطعية)، وفقا للإرشادات الإدارية السريرية المعتمدة16؛ (2) الإصابة التي تعرضت لها خلال 24 ساعة قبل دخول المستشفى؛ و(3) مشاركون بالغون لديهم بيانات سريرية كاملة. كانت معايير الاستبعاد: (1) تاريخ الجراحة السابقة المتعلقة بكسر أو الحبل الشوكي؛ (2) مرض شريان تاجي شديد أو مرض قلبي رئوي كبير؛ (3) إصابة شديدة حادة في القمجمة والدماغ؛ و(4) الأورام الخبيثة، أمراض القلب والأوعية الدموية الدماغية، أو أمراض المناعة. تم الحصول على موافقة لجنة الأخلاقيات في مستشفى الشعب الرابع في شنتشن على هذه الدراسة، وتم الحصول على موافقة مستنيرة من المشاركين. التزمت الإجراءات المستخدمة في هذه الدراسة بمبادئ إعلان هلسنكي.
مجموعة العينات
تم جمع عينات دم وريدية (5 مل) من المشاركين عند دخولها باستخدام أنابيب فاصل المصل خلال 24 ساعة من الإصابة. تم السماح للدم بالتخثر في درجة حرارة الغرفة لمدة 30 دقيقة ثم تم تمركزه المركزي عند 3,000 × جرام لمدة 10 دقائق عند 4 درجات مئوية. تم فصل المصل الفائق بعناية، وتم تجميعه في أنابيب دقيقة خالية من RNase، وتخزين عند -80 درجة مئوية حتى إجراء المزيد من التحليل.
زراعة الخلايا وتحفيز LPS
تم زراعة خلايا الورم الورمي الغرمي للفئران (PC-12) وخلايا الميكرودبقية في المورس (BV-2) في وسط إيغل المعدل من دولبيكو مع إضافة 10٪ مصل أبقار جنيني عند درجة حرارة 37 درجة مئوية. لوضع نماذج إصابات التهابية في المختبر ، تعرضت خلايا PC-12 وBV-2 لبوليبوليسكاريد (LPS) بتركيزات 0، 1، 5، و10 ميكروغرام/مل لمدة 12 ساعة17. تم اختبار كل تركيز في ثلاث نسخ بيولوجية مستقلة.
RT-qPCR
تم عزل الحمض النووي الريبي الكلي من العينات باستخدام بروتوكول استخراج الفينول-كلوروفورم، تلاها ترسيب باستخدام الإيزوبروبانول. تم تقييم نقاء الحمض النووي الريبي بواسطة القياس الطيفي الضوئي (spectrophotome)، واستخدمت عينات بنسبةA 260/280 نانومتر ضمن نطاق 1.8–2.1 للتحليل اللاحق. تم نسخ RNA عكسيا إلى cDNA وفقا لبروتوكول مجموعة النسخ العكسي، واستخدم cDNA الناتج كقالب لتفاعلات RT-qPCR مع خلطة SYBR Green على جهاز PCR. تم استخدام إنزيم الجلسرا الديهيدريد 3-فوسفات ديهيدروجيناز (GAPDH) كجين مرجعي لmRNA ل CASC11 وSPP1 ، بينما استخدم الحمض النووي الريبي الصغير (U6) كجين مرجعي ل miR-130b-5p. بالنسبة لعينات المصل، تم إدخال سيل-مير-39 الصناعي في المصل قبل استخراج الحمض النووي الريبي للتحكم في التغيرات في استعادة الرنا. كانت المقدمات كما يلي: CASC11 للأمام 5'-ACCCTATGGAGAACCGAGAC-3' والخلف 5'-GAGGACCAACTCAGTAGGAAT-3'; miR-130b-5p أمامي 5'-ATCCATGGTTGAGCTTCCCG-3' والخلف 5'-TAGTGCAACCTCGTCAGAGC-3'; وSPP1 mRNA للأمام 5'-GTTAAACAGGCTGATCTGG-3' والخلف 5'-CATGGTCATCATCATCTTCA-3'. تم حساب التعبير باستخدام طريقة 2-ΔΔCt . تم إجراء كل تفاعل RT-qPCR في نسخ تقنية ثلاثية مع ثلاث نسخ بيولوجية.
النقل المتبادل
تم تصنيع وتحويل كاسكيد CASC11 (si-CASC11)، ومثبط miR-130b-5p، وبلازميد فرط التعبير SPP1 (ov-SPP1)، وضائعهم السلبية (NC) وتحويلها إلى خلايا PC-12 وBV-2 باستخدام كاشف نقل. تم تقييم كفاءة النقل بعد 48 ساعة من النقل في النسخ البيولوجية الثلاثية.
اختبار التكاثر وموت المبرمج
لاختبار بقاء الخلايا، تم زرع الخلايا في صفائح بئر 96 بئر بحجم 5 ×10 إلى 3 خلايا في كل بئر وزرعت لمدة 24 ساعة للسماح بالالتصاق. بعد هذه الحضانة، تم ضخ 10 ميكرولتر من كاشف CCK-8 في كل بئر، تلاها الحضانة لمدة ساعتين عند درجة حرارة 37 درجة مئوية. ثم تم تسجيل الكثافة البصرية عند 450 نانومتر باستخدام قارئ ميكرولبيت. لاكتشاف الاستماتة، تم فصل الخلايا بالتربسين، وشطفها مرتين بمحلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS)، وتعليق في مخزن الارتباط حتى تركيز نهائي من 1 ×10 6 خلايا/بئر. بعد ذلك، تم وضع 100 ميكرولتر من التعليق في أنبوب قياس خلوي بسعة 5 مل، تلاه إضافة محلول تلوين 5 ميكرولتر من Annexin V-FITC و5 ميكرولتر من يوديد البروبيديوم (PI). تم خلط العينات بلطف والاحتفاظ بها لمدة 15 دقيقة في درجة حرارة الغرفة محمية من الضوء. ثم أضيف مخزن الارتباط إلى حجم إضافي نهائي قدره 400 ميكرولتر لكل أنبوب، وتم قياس الخلايا المبوتجة بواسطة قياس خلوي التدفق. تم تحليل جميع الحالات باستخدام ثلاث نسخ تقنية في ثلاث تجارب بيولوجية مستقلة.
اختبار نشاط اللوسيفيراز المزدوج
تم التنبؤ بالأهداف اللاحقة ل CASC11 وmiR-130b-5p من خلال مواقع المعلوماتية الحيوية (lncRNASNP2 و TargetScan). تم تصنيع واستنساخ شظايا تحتوي على تسلسلات مكملة من النوع البري (wt) أو المتحولة (mut) إلى متجه مراسل مزدوج اللوسيفيراز لبناء بلازميدات wt وMut reporter. تم زرع خلايا PC-12 وتحويلها معا مع مثبط/مقلد miR-130b-5p، وبلازميدات wt/mut المبنية باستخدام كاشف نقل يعتمد على الدهون. بعد 48 ساعة، تم قياس نشاط اللوسيفيراز لتقييم التفاعل. تكونت كل مجموعة من ثلاث نسخ تقنية وثلاث نسخ بيولوجية.
اختبار التكرار المناعي للحمض النووي الريبي (RIP)
تم إجراء عملية RIP باستخدام مجموعة توصيل مناعية مرتبطة بالحمض النووي الريبي. تم تحلل الخلايا باستخدام مخزن التحلل وحضانتها بأجسام مضادة مضادة Ago2 أو أجسام مضادة IgG طبيعية. تم إثراء مركبات البروتين الريبي باستخدام خرز مغناطيسي. بعد الغسيل، تمت إزالة البروتينات المرتبطة، وتم عزل الحمض النووي الريبي المناعي المثقل بالمشاهد. تم قياس مستويات التخصيب في CASC11 وmiR-130b-5p بواسطة RT-qPCR. تكونت كل مجموعة من ثلاث نسخ تقنية وثلاث نسخ بيولوجية.
البقعة الغربية
تم تحضير محللات البروتين من خلايا PC-12 وBV-2 باستخدام مخزن تحلل الخلية، وتم قياس محتوى البروتين الكلي باستخدام اختبار BCA. لكل عينة، تم تحميل 30 ميكروغرام من البروتين على هلام SDS-PAGE بنسبة 12٪ ونقلها إلى أغشية PVDF بعد الفصل الكهربائي. تم حجب الأغشية لمدة ساعتين في درجة حرارة الغرفة في حليب خالي الدسم بنسبة 5٪ مخفف في TBST ثم حضنتها طوال الليل عند 4 درجات مئوية مع الأجسام المضادة الأولية ضد Bcl-2، باكس، الكاسباز-3 المشقوق، وGAPDH بتخفيف 1:1,000. بعد الغسل، تم حضن الأغشية بأجسام مضادة ثانوية متقاربة ب HRP لمدة ساعة واحدة في درجة حرارة الغرفة. تم تحليل إشارات البروتين باستخدام برنامج تحليل الصور، واستخدمت كثافات النطاقات لتقييم تعبير البروتينات المرتبطة بالموت المبرمج. شملت تجارب البقعة الغربية ثلاث نسخ بيولوجية، مع ثلاث نسخ تقنية لكل مجموعة.
إليسا
تم قياس تركيزات السيتوكينات الالتهابية TNF-α وIL-1β وIL-6 في مصل المرضى والخلايا الفائقة PC-12 وBV-2 باستخدام مجموعات ELISA وفقا لتعليمات الشركة المصنعة. تم حضن العينات في آبار مطلية مسبقا، وأضيفت أجسام مضادة للكشف لمزيد من الحضانة. تمت إضافة واحتضان ترافق الإنزيم. بعد الغسيل، أضيفت ركائز لتطوير اللون، وتم إنهاء التفاعلات. تم قياس الامتصاص عند 450 نانومتر باستخدام قارئ الميكروبليت وتحويله إلى تركيزات عوامل التهابية بناء على المنحنى القياسي المقدم. تم إجراء كل اختبار ELISA في نسخ تقنية ثلاثية عبر ثلاثة نسخ بيولوجية مستقلة.
التحليل الإحصائي
تم الإبلاغ عن المتغيرات المستمرة كمتوسط ± الانحراف المعياري (SD)، وتم عرض المتغيرات التصنيفية كأرقام ونسب مئوية (n, ٪). تم إجراء مقارنات بين مجموعتين باستخدام اختبار t الخاص بالطالب. للمقارنات التي تشمل أكثر من مجموعتين، تم تطبيق تحليل التباين أحادي الاتجاه (ANOVA)، تلاه اختبار توكي بعد الاختبار. تم تقييم قدرة CASC11 على التمييز بين المجموعات السريرية باستخدام تحليل منحنى خصائص تشغيل المستقبل (ROC). تم فحص الروابط بين متغيرين من خلال تحليل الارتباط من بيرسون. بالنسبة للتجارب القائمة على الخلية، احتوت كل مجموعة على ثلاث نسخ بيولوجية مستقلة، وتم تكرار كل قياس في ثلاث نسخ تقنية. تم تعريف الدلالة الإحصائية بأنها P < 0.05.