$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. مصادر البيانات والمعالجة المسبقة
- معالجة البيانات الخام في R (الإصدار 4.1.3؛ ويندوز 10 برو).
- بالنسبة GSE115002، تطبيق التطبيع الكمي باستخدام ليما (الإصدار 3.52.3).
- تصفية الجينات منخفضة التعبير ل TCGA: احتفظ بالجينات ذات CPM > 0.5 في ≥50٪ من العينات.
- تصفية الجينات منخفضة التعبير ل GSE115002: احتفظ بالجينات ذات الإشارة المتوسطة >50.
- log2تحويل قيم التعبيرات بعدد زائف +1.
ملاحظة: تم الحصول على بيانات تعبير جينات LUAD والسريرية من TCGA-LUAD (الإصدار 33.0، بوابة GDC، تم التحميل في 7 أغسطس 2025) و GSE115002 (Agilent microarray، GEO، تم التحميل في 7 أغسطس 2025). شمل اختبار TCGA-LUAD 535 ورما و59 عينة طبيعية. شملت GSE115002 52 ورما و52 عينة مطابقة للطبيعية.
2. تحديد الجينات المعبر عنها بشكل مختلف
- استخدم DESeq2 (الإصدار 1.36.0) لتسلسل RNA في TCGA وLIMMA (الإصدار 3.52.3) ل GSE115002 لتحليل التعبير التفاضلي. حساب قيم P المعدلة (FDR) باستخدام طريقة بنجاميني-هوشبرغ.
- لضمان قابلية المقارنة بين مجموعات البيانات، يوجد |log₂FC| موحد تم تقديم ≥ 1.0 لكلا الفئتين. تم تعريف DEGs على أنها FDR < 0.05 و |log₂FC| ≥ 1.0. تم تحديد مستويات DEG المتداخلة باستخدام VennDiagram (الإصدار 1.7.3). تم اختيار B3GNT3 وFERMT1 وSPP1 كمرشحين تم تنظيمهم باستمرار مع صلة معروفة بالسرطان.
3. تقييم القيمة التشخيصية
- قم بإنشاء منحنيات ROC لكل جين مرشح.
- حدد قيم القطع المثلى باستخدام مؤشر يودن.
- احسب AUC، والحساسية، والنوعية لكل جين.
- بناء لوحة تشخيص مشتركة باستخدام الانحدار اللوجستي متعدد المتغيرات.
ملاحظة: تم استخدام حزمة pROC v1.18.0 لتحليل ROC. تم استخدام دالة glm مع العائلة الثنائية لبناء النموذج التشخيصي.
4. تحليل البقاء
- تقسيم المرضى إلى مجموعات عالية ومنخفضة التعبير باستخدام التعبير الوسيط.
- توليد منحنيات بقاء Kaplan–Meier لكل جين.
- إجراء اختبارات التصنيف اللوغاريتمي لمقارنة فروق البقاء.
- إجراء تحليل الانحدار أحادي المتغيرات لكوكس.
- إجراء تحليل الانحدار متعدد المتغيرات لكوكس.
- تضمين المتغيرات السريرية في نماذج الانحدار.
- تحقق من افتراض المخاطر النسبية باستخدام بقايا شونفيلد.
- احسب درجة المخاطر الثلاثية الجينية.
ملاحظة: تم استخدام Survival v3.3.1 وsurvminer v0.4.9. شملت المتغيرات العمر، الجنس، المرحلة T، المرحلة N، والمرحلة M. تم حساب درجة المخاطر كما يلي:
درجة المخاطر = (0.328 × B3GNT3) + (0.331 × FERMT1) + (0.321 × SPP1). (1)
5. إثراء مجموعة الجينات والتعليقات الوظيفية
- قم بإجراء تحليل إثراء GO باستخدام DEGs.
- قم بإجراء تحليل إثراء مسار KEGG باستخدام DEGs.
- إجراء تحليل تخصيب مجموعات الجينات (GSEA).
- ترتيب الجينات حسب بيرسون مع تعبير الجين المرشح.
- حدد الحدود المهمة باستخدام P < 0.05 المعدل.
ملاحظة: تم استخدام clusterProfiler v4.6.2 لتحليلات GO وKEGG. تم استخدام FGSEA v1.22.0 وMSigDB Hallmark v7.5 في GSEA.
6. الارتباط وتحليل الشبكات
ملاحظة: تم استخدام ارتباط بيرسون للتعبير الجيني الموزع بشكل طبيعي؛ ارتباط سبيرمان لكسر الخلايا المناعية. تم توليد شبكات PPI باستخدام STRING (الإصدار 11.5، الثقة > 0.7) وتم تصورها في Cytoscape (الإصدار 3.9.1). تم تقدير التسلل المناعي باستخدام CIBERSORT (الوضع المطلق، 100 تبديل). لقد أظهر تسلسل الحمض النووي الريبي أحادي الخلية أنه يكشف عن انتقالات مميزة في البيئة الدقيقة ل NSCLC، وهو أمر ذو صلة بتحليل تسرب المناعة21،22، ويمكن للتحليل التكاملي للخلية الواحدة أن يفحص أدوار الخلايا المناعية مثل خلايا CD8+ في LUAD 23,24,25.
7. بناء والتحقق من الرسم النوموغرامي
ملاحظة: تم اختيار المتغيرات الخاصة برسم النوموجرام بناء على دلالة كوكس متعددة المتغيرات (P < 0.05): المرحلة T، المرحلة N، B3GNT3، FERMT1، وSPP1. تم بناء النوموجرام باستخدام rms (الإصدار 6.5.0). استخدم التحقق الداخلي إعادة أخذ عينات bootstrap 1000 مع الاستبدال. تم إجراء منحنيات المعايرة وتحليل منحنيات القرار (DCA) باستخدام RMDA (الإصدار 1.7). شملت البيئة الحاسوبية R 4.1.3، ويندوز 10 برو، وبيوكوندكت 3.15. تتوفر نصوص التحليل على https://github.com/[محذوف]/LUAD-biomarker-2025 عند الطلب المعقول.
8. التحليل الإحصائي
ملاحظة: جميع الاختبارات الإحصائية كانت ذات جانبين؛ اعتبر P < 0.05 ذا دلالة كبيرة.