يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

توليد خلايا جذعية بشرية مستحثة متعددة القدرات ذات عدد صبغيات غير طبيعي من خلايا السائل السلوي الأولية عبر التثقيب الكهربائي للبلازميد الإيبيسومي

149 مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/71975

⸱

سبتمبر 3, 2026

 ,  ,  ,  ,  , 
1State Key Laboratory of Female Fertility Promotion, Center for Reproductive Medicine, Department of Obstetrics and Gynecology, Peking University Third Hospital, 2National Clinical Research Center for Obstetrics and Gynecology, Peking University Third Hospital, 3Key Laboratory of Assisted Reproduction (Peking University), Ministry of Education, 4Beijing Key Laboratory of Collaborative Innovation in Frontier Technologies for Population Quality

في هذه المقالة

ملخص

يوفر هذا البروتوكول طريقة قابلة للتكرار لإنتاج خلايا جذعية مستحثة متعددة القدرات بشرية (iPSCs) ذات عدد صبغيات غير طبيعي (aneuploid) وخالية من التكامل الجيني من خلايا السائل السلوي الأولية باستخدام عملية التثقيب الكهربائي للبلازميدات فوق الصبغية (episomal plasmid electroporation). ويعمل البروتوكول على تحسين ظروف التوصيل والزراعة لتثبيت التشوهات الصبغية، مما يوفر منصة عملية لإنشاء نماذج خاصة بأمراض معينة لاستخدامها في الأبحاث اللاحقة والتطبيقات السريرية.

الملخص

يوفر توليد الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات (iPSCs) الخاصة بالمريض من خلايا السائل السلوي (AFCs) التي تحمل اختلالات في الصيغة الصبغية (aneuploidies) محددة منصة قوية لنمذجة الاضطرابات الوراثية. ومع ذلك، لا يزال إنشاء مسار إعادة برمجة موثوق وقابل للتكرار لخلايا AFCs ذات الصيغة الصبغية غير الطبيعية يمثل تحدياً تقنياً بسبب عدم الاستقرار الجينومي الجوهري والقدرة التكاثرية المتغيرة لهذه الخلايا. نقدم هنا طريقة شاملة وغير دمجية لتوليد خلايا iPSCs بشرية ذات صيغة صبغية غير طبيعية من خلايا AFCs أولية باستخدام التثقيب الكهربائي للبلازميدات فوق الصبغية (episomal plasmid electroporation). يفصل هذا البروتوكول سير العمل الكامل، بما في ذلك إذابة الخلايا وتوسيعها باستراتيجية تكييف تدريجي للوسط الغذائي، وتحسين عملية توصيل البلازميدات عن طريق نظام التثقيب الكهربائي، والزراعة المتسلسلة بعد التثقيب الكهربائي مع تغييرات في الأوساط الغذائية الموجهة نحو التحول من الميزنشيمي إلى الظهاري (MET)، والالتقاط الميكانيكي للمستعمرات بناءً على معايير مورفولوجية محددة. كما نصف كذلك إجراءات التحقق، بما في ذلك صبغ المناعة الفلورية لعلامات تعدد القدرات الأساسية، وتحليل النمط النووي عن طريق نطاقات G (G-banding) لتأكيد الحفاظ على الصيغة الصبغية غير الطبيعية، والتحقق من خلو الخلايا من الناقل فوق الصبغي باستخدام تقنية PCR. ينتج عن هذا البروتوكول الخالي من الخلايا المغذية وغير الدمجي خطوط iPSC ذات صيغة صبغية غير طبيعية مناسبة لنمذجة الأمراض، وفحص الأدوية، ودراسات بيولوجيا الكروموسومات.

المقدمة

أحدث ظهور تقنية الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات تحولاً جذرياً في الطب التجديدي، ونمذجة الأمراض، واكتشاف الأدوية، وذلك من خلال تمكين توليد خلايا متعددة القدرات خاصة بالمريض دون المخاوف الأخلاقية المرتبطة بالخلايا الجذعية الجنينية البشرية (hESCs). نشأ الأساس المفاهيمي لإعادة البرمجة الخلوية من إثبات جوردون لنقل نواة الخلية الجسدية1، تلى ذلك تأسيس الخلايا الجذعية الجنينية2,3,4، وفي النهاية تطوير تعدد القدرات المستحث5 عن طريق التعبير خارجي المنشأ لـ OCT4 و SOX2 و KLF4 و c-MYC. ومنذ ذلك الحين، أصبحت تقنية iPSC منصة لا غنى عنها للبحث في التطور البشري، والاضطرابات الوراثية، والطب الدقيق. استخدمت طرق إعادة البرمجة المبكرة ناقلات فيروسية قهقرية أو ناقلات لينتيفيروسية، ولكن المخاطر المرتبطة بدمجها حدت من تطبيقاتها السريرية. وبناءً على ذلك، أصبح تطوير طرق إعادة برمجة خالية من الدمج أولوية للترجمة السريرية. وتشمل هذه الطرق استخدام فيروس سينداي6، والـ mRNA الاصطناعي7، والناقلات الإيبيسومية القائمة على آلية oriP/EBNA1 (المستضد النووي 1 لفيروس إبشتاين-بار)8، وإعادة البرمجة الكيميائية9,10,11,12 باستخدام مركبات الجزيئات الصغيرة فقط.

تعد اختلال الصيغة الصبغية (Aneuploidy) السبب الرئيسي للإجهاض والعيوب الخلقية عند البشر. ويتطلب فهم الآليات الخلوية والجزيئية الكامنة وراء التشوهات التنموية المرتبطة باختلال الصيغة الصبغية وجود نماذج خلوية مناسبة تحاكي بدقة الخلفية الجينية لهذه الحالات. تمثل خلايا السائل السلوي (AFCs) مادة بدائية جذابة وفعالة لتوليد الخلايا الجذعية المستحثة وافرة القدرة (iPSC) الخاصة بالمريض13,14,15، لا سيما في سياق الاضطرابات الجينية التي يتم تشخيصها قبل الولادة16,17. ويوفر السائل السلوي المتبقي الذي يتم الحصول عليه أثناء عملية بزل السائل السلوي الروتينية إمكانية الوصول إلى الخلايا المشتقة من الجنين دون الحاجة إلى خزعة نسيجية تداخلية إضافية بعد الولادة. وبالمقارنة مع الخلايا الجسدية البالغة، تظهر خلايا السائل السلوي (AFCs) عموماً قدرة تكاثرية أعلى، وتيلوميرات أطول، وعبئاً أقل من الطفرات البيئية التراكمية، ولدونة تنموية أكبر، وكل ذلك يسهل عملية إعادة البرمجة الخلوية18,19. والأهم من ذلك، أن خلايا السائل السلوي تحافظ بدقة على التركيب الصبغي للجنين النامي، مما يجعلها مصدراً مثالياً لإنشاء نماذج iPSC خاصة بالأمراض من الاختلالات الصبغية، بما في ذلك التثلث الصبغي 2120، والتثلث الصبغي 1821، ومتلازمة تيرنر، ومتلازمة كلاينفلتر22.

يوفر هذا البروتوكول دليلاً شاملاً لإنتاج خلايا جذعية مستحثة متعددة القدرات (iPSCs) خالية من الاندماج من خلايا السائل السلوي ذات الصيغ الصبغية غير الطبيعية (aneuploid) باستخدام ناقلات خارج صبغية (episomal vectors). وتتضمن الطريقة إجراءات مفصلة لعزل الخلايا، وإعادة البرمجة، واختيار المستعمرات، والتوصيف. وبالمقارنة مع طرق إعادة البرمجة الأخرى الخالية من الاندماج، يوفر نظام البلازميد خارج الصبغي توازناً عملياً بين السلامة الجينومية والبساطة التقنية وفعالية التكلفة، مما يجعله مناسباً بشكل خاص للاستخدام المختبري الروتيني وتطبيقات البنوك الحيوية واسعة النطاق. هذا البروتوكول قابل للتطبيق على كل من خلايا السائل السلوي (AFCs) المحفوظة بالتجميد من البنوك الحيوية القائمة وعينات السائل السلوي المتبقية الطازجة التي يتم الحصول عليها أثناء التشخيص الروتيني قبل الولادة. وعلى الرغم من أن كفاءات إعادة البرمجة خارج الصبغية المبلغ عنها لخلايا السائل السلوي منخفضة نسبياً، وقد يحدث إنقاذ صبغوي تلقائي أثناء إعادة البرمجة أو الزراعة المطولة، لا سيما في بعض حالات اختلال الصيغة الصبغية، فإن سير العمل هذا قابل للتطبيق بسهولة في إنشاء بنوك حيوية لخلايا iPSC خاصة بأمراض معينة، ودراسات بيولوجيا الصبغيات والتطور البشري المبكر، والتمايز اللاحق إلى أنواع خلايا متخصصة في سلالات محددة. ويعد هذا النهج مناسباً بشكل خاص لإنتاج خطوط iPSC خالية من الاندماج وذات صلة سريرية من عينات ما قبل الولادة لنمذجة الأمراض والدراسات الميكانيكية للاختلالات الصبغية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

أُجريت جميع الإجراءات التي تضمنت عينات من السائل السلوي البشري وفقًا لإعلان هلسنكي، وحصلت على موافقة مجلس المراجعة المؤسسية (IRB)/لجنة أخلاقيات البحوث البشرية في مستشفى جامعة بكين الثالث (بروتوكول رقم M2023406). تم الحصول على العينات ذات اختلال الصيغة الصبغية من البنك الحيوي لمركز الطب التناسلي في مستشفى جامعة بكين الثالث، وهو مستودع سريري معتمد من الدولة ومتخصص في الموارد التنموية والتناسلية البشرية. تتكون هذه العينات من السائل السلوي المتبقي الذي تم جمعه أصلاً أثناء عملية بزل السائل السلوي الروتينية للتشخيص السريري قبل الولادة، والتي كان من المفترض التخلص منها لولا ذلك. تم الحصول على موافقة كتابية مستنيرة من جميع المتبرعين قبل الجمع، مع تفويض صريح بتخزين العينات المتبقية في البنك الحيوي واستخدامها لاحقاً في الأبحاث. تم إخفاء هوية جميع العينات بدقة لحماية خصوصية المرضى. تم اختيار العينات ذات النمط النووي المؤكد لاختلال الصيغة الصبغية والتي تم تحديدها من خلال تحليل النطاقات G السريري، بما في ذلك Trisomy 21 (متلازمة داون، N = 2)، وTrisomy 18 (متلازمة إدواردز، N = 1)، وMonosomy X (متلازمة تيرنر، N = 1)، ومتلازمة كلاينفلتر (N = 2)، وذلك لتحفيز تكوين iPSCs. تلخص الجدول 1 معلومات مفصلة عن الخطوط الخلوية ذات اختلال الصيغة الصبغية المستخدمة في إعادة البرمجة.

1. إذابة واستنبات أولي لخلايا السائل السلوي المحفوظة في البنك الحيوي

ملاحظة: يوضح هذا القسم الإجراء الموحد لاسترجاع واستعادة خلايا AFCs ذات الصيغة الصبغية غير الطبيعية (aneuploid) من البنك الحيوي. يتم تكثير الخلايا المستنبتة للحصول على مجموعات كافية لعملية إعادة البرمجة فوق الصبغية (episomal reprogramming) اللاحقة.

  1. إجراء الإذابة الموحد
    1. موازنة الوسط الغذائي: يتم تدفئة وسط AmnioType-1 الكامل إلى 37 °C قبل الاستخدام.
    2. استعادة العينة: استخرج أنبوب حفظ بالتجميد (cryovial) يحتوي على ما يقرب من 300,000 من الخلايا الدهنية المكونة للدم (AFCs) المحفوظة بالتجميد في وسط تجميد الخلايا من وحدة التخزين بالنيتروجين السائل. انقل الأنبوب فوراً إلى المختبر فوق ثلج جاف لمنع الذوبان المبكر.
    3. الإذابة السريعة: اغمر النصف السفلي من أنبوب الحفظ بالتجميد في 37 °C حمام مائي مع التقليب برفق. أوقف عملية الإذابة عندما تبقى بلورة ثلجية صغيرة ومرئية فقط.
      ​ملاحظة: تجنب الإذابة الكاملة؛ وذلك لمنع تعرض الخلايا للآثار السامة لـ DMSO الدافئ.
    4. التخفيف: في غطاء تدفق صفائحي، يُنقل معلق الخلايا قطرة تلو الأخرى إلى أنبوب مخروطي سعة 15 مل يحتوي على 4 مل من وسط AmnioType-1 المُدفأ مسبقاً.
    5. الطرد المركزي: يتم طرد المعلق مركزياً عند 300 × ج لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة.
    6. الاستزراع: يتم سحب السائل الطافي وإعادة تعليق كتلة الخلايا برفق في 2 مل من وسط AmnioType-1 الطازج. تُنقل الخلايا إلى طبق ذي 6 آبار أو قارورة T25 مطلية مسبقاً بـ 0.1% جيلاتين بكثافة تتراوح بين 30,000 إلى 50,000 خلية/سم²².
    7. التحضين الأولي: توضع الخلايا في حضانة رطبة عند 37 °C و5% CO22افحص الدوارق باستخدام مجهر تباين الطور المقلوب في اليوم الثالث بعد الاستزراع للتأكد من الالتصاق الأولي للخلايا.
  2. توسيع ونقل الوسط الغذائي للخلايا المكونة للحويصلات الأولية (AFCs)
    1. تحضير وسط استزراع الخلايا الليفية (FC): لتحضير 100 مل من وسط استزراع الخلايا الليفية المُعد مختبرياً، اخلط 82 مل من وسط DMEM عالي الجلوكوز مع 15 مل من مصل جنين البقر (FBS). أضف 1 مل من 100× GlutaMAX، 1 مل من 100× الأحماض الأمينية غير الأساسية (NEAA)، و1 مل من البنسلين-ستربتومايسين (P/S). قم بترشيح الوسط عبر 0.22 µm نظام ترشيح بالتفريغ في بيئة معقمة.
    2. أثناء عملية التوسع، يتم تغيير وسط خلايا السائل السلوي (AFC) تدريجياً كل 3 أيام من الوسط السريري المتخصص (AmnioType-1) إلى نظام قياسي لاستزراع الخلايا الليفية (وسط FC، مُحضّر داخلياً)، وذلك لضمان الاستقرار الأيضي قبل عملية التثقيب الكهربائي.
      1. أجرِ انتقالاً تدريجياً للوسط الزراعي:
        1. اليوم الثالث (75% AmnioType-1: 25% FC): اسحب وسط AmnioType-1 الموجود. أضف وسطاً مختلطاً يتكون من 75% من AmnioType-1 و25% من وسط FC.
        2. اليوم السادس (50% AmnioType-1: 50% FC): يتم سحب الوسط واستبداله بنسبة 1:1 من وسط AmnioType-1 ووسط FC.
        3. اليوم التاسع (25% AmnioType-1 : 75% FC): يتم سحب الوسط المستزرع واستبداله بخليط يتكون من 25% من AmnioType-1 و75% من وسط FC.
        4. اليوم 12 (100% FC): يتم سحب السائل واستبداله بوسط 100% FC.
          ملاحظة: يقلل هذا التكيف التدريجي من الصدمة الخلوية ويمنع انفصال المستنسخات غير الصيغية (aneuploid clones) الحساسة.
    3. راقب مورفولوجيا المستعمرات يومياً. يحتوي السائل السلوي على مجتمع غير متجانس من الخلايا. حدد النوعين الأساسيين باستخدام مجهر تباين الطور: النوع F (شبيه بالأرومات الليفية، مغزلي الشكل) والنوع E (شبيه بالظهارية، مستدير). وتعد المجموعة الفرعية الميزنكيمية الشبيهة بالأرومات الليفية هي الأمثل لإعادة البرمجة.
      ​ملاحظة: راقب الخلايا عن كثب لرصد أي علامات على الشيخوخة الخلوية.
  3. تمرير الخلايا الدهنية المكونة للدم الأولية (AFCs)
    1. بمجرد وصول الخلايا إلى درجة تلاحم تتراوح بين 80% و90% (عادةً في اليوم 10-14)، يتم سحب الوسط من القارورة وغسل الخلايا مرة واحدة برفق باستخدام 2 مل من محلول دلبكو الملحي المنظم بالفوسفات (DPBS) الخالي من الكالسيوم (Ca).²⁺/ملغ²⁺.
    2. أضف 1 مل من محلول Trypsin-EDTA بتركيز 0.25% لبئر واحد من طبق يحتوي على 6 آبار لتغطية الطبقة الخلوية الأحادية.
    3. حضّن في 37 °C لمدة 4-5 دقائق حتى تنفصل الخلايا تماماً.
    4. قم بمعادلة كاشف التفكيك بإضافة 3 مل من وسط FC. ثم انقل المعلق إلى أنبوب مخروطي سعة 15 مل.
    5. قم بالطرد المركزي عند 300 × ج لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة.
    6. اشفط الطافي وأعد تعليق كتلة الخلايا في 1 مل من وسط FC الطازج. قم بعد الخلايا الحية باستخدام مقياس كرات الدم (hemocytometer) أو عداد خلايا آلي مع استخدام صبغة التريبان الأزرق لاستبعاد الخلايا الميتة.
    7. قم بتوزيع الخلايا في دورق T25 جديد بكثافة تتراوح بين 30,000 و50,000 خلية/سم²² في وسط غذائي كامل (عادةً بنسبة 1:2 أو 1:3).
    8. قم بتوسيع الخلايا حتى الممر 3-5 قبل استخدامها في إعادة البرمجة. ولا تستخدم الخلايا التي تتجاوز الممر 6.
      ملاحظة: تعد جودة الخلايا وقت التثقيب الكهربائي العامل الأكثر أهمية على الإطلاق في تحديد نجاح عملية إعادة البرمجة. استخدم فقط خلايا AFC من النوع F السليمة والتي تنمو في طور النمو اللوغاريتمي، على ألا تظهر عليها أي علامات للشيخوخة أو تشوهات مورفولوجية.

2. التثقيب الكهربائي للبلازميدات خارج الكروموسومية في الخلايا الليفية الجنينية (AFCs) باستخدام نظام التثقيب الكهربائي للخلايا

  1. طلاء أوعية الزرع بمصفوفة الغشاء القاعدي
    1. يتم إذابة مصفوفة الغشاء القاعدي (Matrigel) طوال الليل في درجة حرارة 4 °C على الثلج.
    2. يُبرد محلول DPBS المعقم أو وسط DMEM/F-12 على الثلج. تُبرد رؤوس الماصات والأنابيب مسبقاً على الثلج لمدة 30 دقيقة.
    3. قم بتخفيف مصفوفة الغشاء القاعدي بنسبة 1:200 في وسط DMEM/F-12 مبرد بالثلج باستخدام رؤوس ماصات وأنابيب مبردة (على سبيل المثال، 30 µL المصفوفة + 6 مل من وسط DMEM/F-12 لصفيحة ذات 6 آبار).
    4. امزج المزيج جيداً وببطء عن طريق سحب السائل وطرده بالماصة من 5 إلى 6 مرات، مع تجنب تكوين فقاعات هوائية.
    5. أضف محلول الطلاء المخفف إلى أوعية المزرعة بمعدل 1 مل لكل بئر في طبق ذي 6 آبار.
    6. يُحضن الوعاء المطلي عند 37 °C لمدة ساعة واحدة على الأقل، أو في درجة حرارة الغرفة لمدة ساعتين.
    7. قم بسحب محلول الطلاء مباشرة قبل زراعة الخلايا. أضف 2 مل من وسط FC الخالي من المضادات الحيوية بالإضافة إلى 10 μM Y-27632 (مثبط ROCK) وإعادة الطبق إلى الـ 37 °C الحاضنة. لا تسمح بجفاف السطح المغطى.
      ​ملاحظة: يمكن تخزين الأطباق المطلية في 4 °C تُغلق بإحكام باستخدام Parafilm لمدة تصل إلى 7 أيام. تُترك لتصل إلى درجة حرارة الغرفة قبل الاستخدام.
  2. إذابة وتحضير بلازميدات إعادة البرمجة الإبيسومية
    1. اختيار البلازميد: استخدم البلازميدات الخارجية التالية لإعادة البرمجة: pCXLE-hOCT3/4-shp53، وpCXLE-hSK، وpCXLE-hUL، وpCXLE-EBNA1.
      ملاحظة: (اختياري) لتحسين ظروف التثقيب الكهربائي، يمكن إجراء التثقيب الكهربائي لـ pCE-GFP بالتوازي تحت إعدادات متطابقة. ويوفر تعبير GFP خلال أول 48-72 ساعة مؤشراً ملائماً لكفاءة عفن الخلية، بينما يمكن استخدام الفقدان التدريجي لإشارة GFP أثناء عمليات الممرات اللاحقة لمراقبة التخفيف العابر للبلازميد.
    2. ضبط الجودة (QC): تحقق من تركيز الحمض النووي (DNA) ونقاوته باستخدام مقياس الطيف الضوئي. تأكد من أن نسبة A260/280 تتراوح بين 1.8 و1.9. تأكد من أن تركيز كل بلازميد أكبر من 1 µg/µL ومعقمة.
      ​ملاحظة: من الضروري التأكد من تحضير جميع البلازميدات باستخدام طرق خالية من الذيفان الداخلي (endotoxin-free)، حيث يمكن أن تؤدي البقايا من الذيفانات الداخلية إلى سمية خلوية عالية وانخفاض ملحوظ في كفاءة إعادة البرمجة. تُخزن البلازميدات في حصص صغيرة (aliquots) عند درجة حرارة -20 °C لتجنب تكرار دورات التجميد والإذابة.
    3. لـ 100 µL تفاعل، تحضير 5 µg من خليط البلازميد (بنسبة وزنية متساوية من pCXLE-hOCT3/4-shp53 وpCXLE-hSK، (pCXLE-hUL، وpCXLE-EBNA1).
  3. ضبط معلمات التثقيب الكهربائي.
    1. قم بتشغيل جهاز التثقيب الكهربائي. اضبط معاملات النبضة وفقاً للإعدادات المثالية للخلايا الأولية الملتصقة: جهد النبضة: 1,200 فولت؛ عرض النبضة: 20 ميلي ثانية؛ عدد النبضات: 2.
    2. املأ محطة الماصة بـ 2 مل من Buffer E، مع التأكد من غمر القطب الكهربائي بالكامل.
      ​ملاحظة: إذا أسفرت التجارب الأولية عن حيوية خلوية تقل عن 50%، ينبغي النظر في اختبار مجموعات معايير بديلة: 950 فولت / 20 ميلي ثانية / نبضتان (أكثر رفقاً). تضحي هذه البدائل ببعض الكفاءة في سبيل تحسين معدلات البقاء.
  4. تحضير الخلايا المكونة للدم (AFCs) لعملية التثقيب الكهربائي
    1. في اليوم 0، تحقق من أن الخلايا تُظهر مورفولوجيا مغزلية الشكل وسليمة تحت المجهر، مع عدم وجود علامات على فرط النمو، أو الشيخوخة، أو التلوث. تأكد من وصول الخلايا إلى درجة تلاقي بنسبة 90% وأنها في طور النمو اللوغاريتمي النشط.
    2. قبيل البدء بإجراء التثقيب الكهربائي مباشرةً، قم بشفط طبقة Matrigel الواقية واستبدلها بـ 2 مل من الوسط الخالي من المضادات الحيوية والمسخن مسبقاً. وسط FC بلس 10 μM Y-27632 (مثبط ROCK). قم بتسخين وسط FC الخالي من المضادات الحيوية مسبقاً إلى 37 °C في حاضنة لمدة 20 دقيقة على الأقل قبل حصاد الخلايا لنظام التثقيب الكهربائي.
      ملاحظة: لا تضف البنسلين-ستريبتومايسين (P/S) أو أي مضادات حيوية أخرى إلى هذه الدفعة المحددة من الوسط الغذائي. فبعد عملية التثقيب الكهربائي، يظل غشاء الخلية نفاذاً وعرضة للتأثر لفترة وجيزة، وقد يؤدي وجود المضادات الحيوية إلى زيادة الموت الخلوي المبرمج.
    3. اشفط الوسط الزرعي للخلايا الدهنية المجمعة (AFCs) تمهيداً لعملية التثقيب الكهربائي، واغسل الطبقة أحادية الخلية مرة واحدة باستخدام محلول DPBS الخالي من الكالسيوم (Ca).²⁺/ملغ²⁺.
    4. أضف 2 مل (لقارورة T25) من إنزيم TrypLE Select واتركه في الحاضنة عند 37 °C لمدة 4-5 دقائق.
    5. يتم التعادل بإضافة 6 مل من وسط FC الكامل، ثم يُنقل المزيج إلى أنبوب مخروطي سعة 15 مل. قم بعدّ الخلايا باستخدام عداد خلايا آلي.
    6. طرد مركزي عند 300 × ج لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة.
    7. قم بإزالة الطافي تماماً باستخدام 200 μL طرف الماصة، مع الحرص على عدم تعكير راسب الخلايا الصغير.
    8. أعد تعليق كتلة الخلايا في Buffer R بكثافة نهائية تبلغ 1.0 × 10⁷ إلى 1.4 × 10⁷ خلية/مل.
      ​ملاحظة: يتم سحب السائل الطافي بأكبر قدر ممكن لضمان جفاف الكتلة الخلوية؛ حيث يمكن أن يؤدي وجود بقايا من وسط الزرع إلى تخفيف محلول إعادة التعليق، مما قد يقلل من كفاءة التثقيب الكهربائي. استخدم المحلول المنظم R (للخلايا الملتصقة) بالنسبة للخلايا المكونة للألياف (AFCs). تحقق من اختيار المحلول المنظم وفقاً لتوصيات الشركة المصنعة.
  5. قم بإجراء التثقيب الكهربائي.
    1. تجزئة العينة 110 μL من معلق الخلايا (الذي يحتوي على 1.0-1.4 × 106 (الخلايا) في أنبوب طرد مركزي دقيق معقم سعة 1.5 مل.
      ملاحظة: أضف كمية إضافية من 10 μL من المحلول المنظم R حتى الحجم النهائي لضمان وجود معلق خلوي كافٍ، مما يساعد في تجنب إدخال فقاعات الهواء أثناء عملية السحب.
    2. أضف 5 μg مزيج البلازميد إلى الـ 110 μL حصة من الخلايا. اخلط عن طريق السحب والضخ اللطيف باستخدام الماصة لـ 3 مرات.
    3. قم بتوصيل [أداة] معقمة 100 μL ثبّت رأس التثقيب الكهربائي في الماصة، مع التأكد من استقراره في مكانه بإحكام.
    4. تحميل 100 μL من معلق الخلايا/الحمض النووي (DNA)، مع التأكد من عدم وجود فقاعات هواء مرئية.
      ملاحظة: تتسبب الفقاعات الهوائية في حدوث قوس كهربائي أثناء النبضة الكهربائية، مما يؤدي إلى قتل الخلايا وإتلاف الطرف. إذا كانت الفقاعات مرئية، قم بطرد الخليط وإعادته إلى الأنبوب، ثم كرر عملية السحب ببطء.
    5. أدخل الماصة المُحمَّلة رأسيًا في أنبوب المنظم (Buffer tube) في المحطة حتى تستقر في مكانها وتسمع صوت طقة. تحقق من صحة جميع المعلمات على شاشة اللمس، ثم اضغط على زر البدء (Start) لتنفيذ تسلسل النبضات.
    6. انتظر حتى تظهر البيانات على الشاشة "مكتمل" (عادةً خلال 1-2 ثانية). أخرج الماصة فوراً من المحطة، ثم انقل معلق الخلايا التي خضعت للتثقيب الكهربائي مباشرة إلى 2-3 آبار طبق مُغلف ذي 6 آبار تحتوي على وسط FC خالي من المضادات الحيوية ومُدفأ مسبقاً + 10 μM Y-27632.
    7. تخلص من الطرف المستخدم بأمان. كرر الخطوات لآبار إضافية أو مكررات حسب الحاجة. ضع الطبق ذو الـ 6 آبار في 37 °C، 5% CO2₂ في حاضنة رطبة طوال الليل.

3. استزراع إعادة البرمجة بعد التثقيب الكهربائي

ملاحظة: يصف هذا القسم التغييرات المتتالية في الأوساط الغذائية وتحقيق إعادة برمجة كاملة للخلايا الليفية المكونة للأنسجة الدهنية (AFCs) إلى خلايا جذعية مستحثة متعددة القدرات (iPSCs). يمتد الجدول الزمني لحوالي 25 يوماً بدءاً من التثقيب الكهربائي وصولاً إلى اختيار المستعمرات.

  1. بعد حوالي 16–18 ساعة من التثقيب الكهربائي، اشفط الوسط بعناية دون إزاحة أي من الخلايا الملتصقة الباقية. أضف بلطف 2 mL من وسط FC المُدفأ مسبقاً (الذي يحتوي على P/S) إلى كل بئر للسماح للخلايا بالاستقرار خلال أول 24 ساعة. أعد الطبق إلى الحاضنة.
  2. من اليوم 2 إلى اليوم 6، استبدل نصف الوسط كل يومين: اشفط بعناية 1 mL من الوسط المستهلك وأضف 1 mL من وسط TeSR-E8 (E8) الطازج.
    ملاحظة: يحافظ التغيير الجزئي للوسط على العوامل ذات الإفراز الذاتي (autocrine factors) المفرزة التي تدعم أحداث إعادة البرمجة المبكرة. اشفط ببطء من حافة البئر لتقليل اضطراب الخلايا الانتقالية ضعيفة الالتصاق.
  3. في اليوم 7، قم بإجراء استبدال كامل للوسط باستخدام 2 mL من E8 كل يومين.
  4. راقب التغيرات المورفولوجية تحت المجهر يومياً. يُتوقع ظهور تجمعات تشبه رصيف الشارع (cobblestone-like) مُعاد برمجتها جزئياً في حدود اليوم 10–14.
    ملاحظة: (اختياري) عزز المزارع بـ 25–100 μM من بوتيرات الصوديوم بين اليوم 9 و15 إذا كان تكوين المستعمرات ضعيفاً23.
  5. استبدل وسط E8 يومياً ابتداءً من اليوم 15 فصاعداً.
  6. ابتداءً من اليوم 18 تقريباً، افحص الآبار يومياً للبحث عن ظهور مستعمرات iPSC حقيقية. يتوفر الجدول الزمني الكامل لسير عمل إعادة البرمجة من التثقيب الكهربائي في اليوم 0 وحتى التقاط المستعمرات في الجدول 2.

4. الالتقاط الميكانيكي لمستعمرات الخلايا الجذعية المحفزة وافرار خطوط الخلايا الجذعية المحفزة المؤسسة

ملاحظة: ميز مستعمرات iPSC الحقيقية عن الخلايا المعاد برمجهـا أو غير المعاد برمجهـا بناءً على المعايير المورفولوجية المذكورة أدناه. حدد المستعمرات "المثالية" بناءً على السمات المورفولوجية التالية: (1) تحديد الحدود: ابحث عن حافة حادة وملساء ودائرية تفصل المستعمرة بوضوح عن خلايا السائل السلوي المحيطة؛ (2) الكثافة الخلوية: تأكد من أن الخلايا داخل المستعمرة صغيرة ومترابطة بإحكام، وتمتلك نسبة عالية من النواة إلى السيتوبلازم مع وجود نويات بارزة؛ (3) الانكسارية: تظهر المستعمرات عالية الجودة ساطعة وعالية الانكسارية تحت مجهر تباين الطور؛ (4) التسطح: يجب أن تنمو المستعمرة كطبقة مسطحة ثنائية الأبعاد بدلاً من أن تكون "كتلة" ثلاثية الأبعاد. غالبًا ما تظهر المستعمرات المعاد برمجهـا جزئيًا في وقت أبكر من مستعمرات iPSC الحقيقية، وتميل إلى أن تكون أكبر وأكثر سمكاً وثلاثية الأبعاد. ستتمايز هذه المستعمرات تلقائيًا عند التقاطها ونقلها. لا تقم بالتقاط المستعمرات التي تظهر بها "فجوات"، أو حواف مشرشرة، أو علامات تمايز مركزي.

  1. الالتقاط الميكانيكي ونقل مستعمرات iPSC
    1. قم بتحضير طبق 24-well مغطى بـ Matrigel مع إضافة 0.5 mL لكل بئر من وسط E8 المدعم بـ 10 μM من Y-27632. يُحفظ عند 37 °C حتى وقت الاستخدام.
    2. ضع طبق الزرع تحت مجهر ستيريو داخل كابينة سلامة بيولوجية من الفئة الثانية (Class II). قم بتعقيم عدسة مجهر الستيريو والمنصة باستخدام إيثانول 70% قبل تقريب الطبق من مجال الرؤية.
    3. حدد المستعمرات التي تظهر مورفولوجيا صحيحة (مسطحة، مدمجة، وذات حواف واضحة).
    4. باستخدام رأس ماصة معقم سعة 10 μL ممسوك بزاوية ضحلة (حوالي 30° من المستوى الأفقي)، قم بخدش محيط المستعمرة المختارة برفق لتحديد حدودها. قم بتقطيع المستعمرة إلى حوالي 3 شظايا عن طريق إجراء شقوق متوازية عبر قطرها. استخدم رأس الماصة نفسه لكشط ورفع شظايا المستعمرة برفق من الركيزة، وانقل الشظايا إلى بئر واحد من طبق 24-well المُحضّر.
    5. كرر الخطوات لكل مستعمرة، مع وضع الشظايا في آبار منفصلة.
    6. ضع طبق 24-well في الحاضنة. اترك الطبق دون تحريك لمدة 24 h للسماح بالتصاق الشظايا.
    7. بدءاً من اليوم الثاني بعد الالتقاط، استبدل الوسط يومياً بوسط E8 بدون Y-27632.
    8. عندما تتمدد المستعمرات الملتقطة لتصل إلى درجة تلاقي (confluence) تتراوح بين 70–80% (عادةً خلال 3–6 أيام)، قم بإجراء عملية الممر (passage) باستخدام Accutase.
  2. تمرير وتوسيع خطوط iPSC المستقرة
    1. قم بشفط الوسط من البئر الذي يحتوي على iPSC. أضف Accutase لتغطية الطبقة الأحادية. يتم التحضين في درجة حرارة الغرفة لمدة 2–6 min. راقب حواف المستعمرة تحت المجهر؛ حيث يجب أن تبدأ الخلايا في الانفصال، وتظهر فجوات بين الخلايا.
    2. قم بشفط محلول Accutase تماماً. أضف 1 mL من وسط E8 + 10 μM Y-27632. قم بنقل الوسط برفق بالماصة عبر سطح المستعمرة من 5–8 مرات باستخدام ماصة P1000 لتفكيك المستعمرات إلى تكتلات صغيرة مكونة من 2–8 خلايا.
      ملاحظة: تجنب التفكيك المفرط لخلايا iPSCs، لأن ذلك يقلل من فرص البقاء بشكل كبير. الهدف هو الحصول على تكتلات صغيرة متجانسة، وليس معلقاً من الخلايا المفردة.
    3. انقل التكتلات مع 1 mL من وسط E8 + 10 μM Y-27632 بالتساوي إلى طبق 12-well مغطى حديثاً بـ matrigel. ضع الطبق في الحاضنة.
    4. غير الوسط يومياً باستخدام وسط E8 (بدون Y-27632 بعد اليوم الأول).
    5. استمر في عملية التمرير كل 3–4 أيام بنسبة تقسيم من 1:2 إلى 1:5، اعتماداً على درجة التلاقي.
    6. قم بزراعة خطوط iPSC لمدة 10 تمريرات (passages) كحد أدنى قبل التطبيقات اللاحقة لضمان التخلص المستقر من الإبيسوم (episomal clearance).

5. توصيف خطوط الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات ذات الصيغة الصبغية غير المتوازنة (aneuploid iPSC lines)

ملاحظة: قم بإجراء اختبارات التحقق التالية على خطوط iPSC المستقرة (الممر 10 أو ما بعده) لتأكيد تعدد القدرات، وسلامة النمط النووي، وخلو الخلايا من الناقل الإبيسومي.

  1. تأكيد تعبير مؤشرات تعدد القدرات.
    1. تحقق من تعبير مؤشرات تعدد القدرات الأساسية باستخدام صبغ المناعة الفلورية، أو قياس التدفق الخلوي، أو كليهما. وتتلخص ملفات المؤشرات المتوقعة في جدول 3.
      ملاحظة: على الرغم من أن صبغ التألق المناعي يوفر تأكيداً أولياً لتعدد القدرات، إلا أنه يُوصى بإجراء تفاعل البوليميراز المتسلسل الكمي في الوقت الحقيقي (RT-qPCR) وتسلسل الحمض النووي الريبي (RNA-seq) لإجراء تقييم أوسع للتعبير الجيني المرتبط بتعدد القدرات، بما في ذلك LIN28A وDPPA4 وKLF4.
  2. تحليل النمط النووي بواسطة التلوين بالنطاقات G
    ​تنبيه هام: يمكن أن تؤدي عملية إعادة البرمجة إلى إنقاذ التثلث الصبغي (trisomy rescue) في مجموعة فرعية من المستنسخات. لذا، يجب فحص مستنسخات متعددة (5-10 لكل سلالة أبوية) لتحديد المشتقات التي حافظت على اختلال الصيغة الصبغية (aneuploid) وتلك التي تم إنقاذها لتصبح سوية الصيغة الصبغية (euploid).
    1. يُجمع الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات (iPSCs) عند الممر 10-15 وبنسبة تلاقي تتراوح بين 70% و80%.
    2. أضف 0.1 μg/mL كولسيميد (colcemid) إلى وسط المزرعة. تُحضن في 37 °C لمدة تتراوح بين 2 و4 ساعات لإيقاف الخلايا في الطور الاستوائي.
      ملاحظة: يُعد الكولسيميد (Colcemid) سماً ميتوزياً (منعشلاً). يجب التعامل معه باستخدام القفازات داخل كابينة السلامة البيولوجية. تخلص من النفايات التي تحتوي على الكولسيميد كمواد خطرة.
    3. قم بفصل الخلايا للحصول على معلق من الخلايا المفردة باستخدام Accutase أو ما يعادله. ثم قم بالطرد المركزي عند 300 × جرام لمدة 5 دقائق.
    4. أعد تعليق الراسب في 5 مل من محلول منخفض التوتر (0.075 مولار من كلوريد البوتاسيوم) تم تسخينه مسبقاً. قم بالتحضين عند 37 °C لمدة 15-20 دقيقة.
    5. أضف 1 مل من المثبت المُحضّر حديثاً (ميثانول: حمض الأسيتيك، بنسبة حجمية 3: 1) إلى الأنبوب مع الخلط برفق. ثم قم بالطرد المركزي عند 300 × ج لمدة 10 دقائق.
    6. قم بشفط السائل الطافي. أضف 5 مل من مادة مثبتة جديدة. اخلط بلطف واحضن لمدة 10 دقائق. قم بالطرد المركزي مرة أخرى.
    7. كرر خطوة التثبيت (الخطوة 6) مرة أخرى ليصبح إجمالي عدد مرات التثبيت 3 مرات.
    8. بعد عملية الطرد المركزي النهائية، أعد تعليق الراسب في 0.5-1 مل من مُثبّت حديث لتحقيق كثافة خلوية مناسبة.
    9. ضع قطرتين إلى ثلاث قطرات من معلق الخلايا على شرائح زجاجية نظيفة ومبللة من ارتفاع 30 سم تقريبًا، ثم اتركها لتجف في الهواء.
    10. تُخبز الشرائح عند 80 °C لمدة ساعتين أو 65 °C تترك طوال الليل لتعتيق الكروموسومات.
    11. إجراء التلوين بنطاقات جي (G-banding): تُعالج الشرائح بمحلول تربسين بتركيز 0.025% لمدة تتراوح بين 30 إلى 60 ثانية، ثم تُشطف، وتُصبغ بمحلول جيمزا بتركيز 5% لمدة تتراوح بين دقيقة واحدة إلى 5 دقائق.
    12. قم بتحليل ما لا يقل عن 20 طوراً استوائياً (metaphases) موزعة جيداً لكل مستنسخ تحت مجهر غمر زيتي بمجال مضيء (عدسة 100× الهدف).
    13. وثّق النمط النووي باستخدام تسميات ISCN (على سبيل المثال: 47,XX,+21 لمتلازمة تثلث الصبغي 21 لدى الإناث؛ 45,X لمتلازمة تيرنر).
      ​ملاحظة: يكشف التنميط النووي بنطاقات جي (G-banded karyotyping) عن التشوهات الكروموسومية الكبرى، ولكن دقته محدودة. لذا، يُوصى بإجراء فحوصات تكميلية، مثل تحليل تباين عدد النسخ (CNV)، أو تسلسل الإكسوم الكامل (WES)، أو تسلسل الجينوم الكامل (WGS)، لتحديد التغيرات الجينية دون المجهرية وتأكيد السلامة الجينومية للخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات (iPSC).
  3. التحقق من خلو العينات من الناقل الإيبيسومي باستخدام تفاعل البوليميراز المتسلسل (PCR).
    ​ملاحظة: تؤكد هذه الخطوة فقدان جميع البلازميدات خارج الصبغية من خط الخلايا الجذعية المحفزة متعددة القدرات (iPSC) عن طريق تضخيم التسلسلات الخاصة بالناقل باستخدام تفاعل البوليميراز المتسلسل (PCR).
    1. استخلاص الحمض النووي الريبوزي منقوص الأكسجين الجينومي (genomic DNA) من الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات (iPSCs) (الممر ≥ 10) ومن خلايا AFCs الضابطة غير المنقولة جينياً، باستخدام طقم استخلاص قياسي يعتمد على الأعمدة.
    2. قم بإعداد 25 μL تفاعل PCR. أجرِ تفاعل PCR باستخدام أزواج البادئات Orip/GAPDH تحت ظروف الدورات (94 °C لمدة دقيقتين؛ تليها 35 دورة من 94 °C لمدة 30 ثانية، 55 °C لمدة 30 ثانية، و 72 °C لمدة 30 ثانية؛ والامتداد النهائي عند 72 °C (لمدة 5 دقائق). يجب تضمين ضابط موجب (قالب بلازميدي) وضابط سالب (حمض نووي جينومي من خلايا غير منقولة جينيًا) في كل عملية تفاعل بوليميراز متسلسل (PCR).
    3. يتم فصل نواتج تفاعل البوليميراز المتسلسل (PCR) باستخدام هلام أغاروز بتركيز 2% مع استخدام سلم الحمض النووي (DNA ladder) المناسب.
    4. تفسير النتائج: لا تُظهر خطوط الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات (iPSC) التي خلت من الإبيسومات أي حزم تضخيم عند 444 زوجاً قاعدياً (bp). يجب أن يُظهر الضابط الموجب حزماً بالحجم المتوقع، بينما يجب ألا يُظهر الضابط السالب أي حزم.
  4. الكشف عن الميكوبلازما بواسطة تفاعل البوليميراز المتسلسل (PCR)
    1. اجمع من 0.5 إلى 1 مل من طافي المزرعة بعد فترة حضانة لا تقل عن 24 ساعة من مزارع الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات (iPSC) قبل استبدال الوسط، ثم قم بإجراء الطرد المركزي بسرعة 12,000. × ج لمدة 5 دقائق لإزالة الحطام الخلوي.
    2. استخدم الرائق المصفى كقالب لتفاعل البوليميراز المتسلسل (PCR) باستخدام طقم الكشف عن الميكوبلازما (PCR Mycoplasma Detection Kit)، وذلك باتباع تعليمات الشركة المصنعة.
    3. افصل نواتج تفاعل البوليميراز المتسلسل (PCR) باستخدام الرحلان الكهربائي لهلام الأغاروز بتركيز 2%. ولا تنتقل إلى التجارب اللاحقة إلا بعد التأكد من خلو مستنبتات الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات (iPSC) من الميكوبلازما.
      ​ملاحظة: إذا لم يتم الحصول على خلايا AFCs الأبوية من بنك حيوي معتمد مع توثيق التعقيم واختبار الميكوبلازما، فإن إجراء فحص روتيني للميكوبلازما قبل إعادة البرمجة يوصى به بشدة كخطوة أولية لضبط الجودة.
  5. اختبار إمكانية التمايز إلى ثلاثة سلالات (اختياري)
    1. تأكيد في المختبر قدرة التمايز باستخدام إما التمايز الموجه لثلاث سلالات أو تكوين الأجسام الجنينية (EB)، يليه تحليل للمؤشرات النوعية لطبقات الإنتاش. وبدلاً من ذلك، يتم إجراء في الجسم الحي تكوين الورم المسخي في الفئران ناقصة المناعة للتحقق من تعدد القدرات وفق المعيار الذهبي.
      ملاحظة: للاطلاع على بروتوكولات مقايسة الورم المسخي أو التمايز الموجه التفصيلية، يرجى الرجوع إلى إجراءات التشغيل القياسية المنشورة.24يُوصى بإجراء هذه المقاييس، ولكن يمكن الاستغناء عنها إذا كانت... في المختبر يتم توفير بيانات تحليل المؤشرات والتمايز الوظيفي.

6. اشتقاق والتحقق من المستنسخات أحادية الخلية

ملاحظة: لضمان أن كل خط من الخلايا الجذعية المحفزة متعددة القدرات (iPSC) ينشأ من خلية واحدة، يُوصى باتباع عملية تحقق نسيلية مكونة من مرحلتين. فبعد الالتقاط الميكانيكي والتوسيع، يُوصى بإجراء استزراع ثانٍ لنسيلة خلية واحدة بعد تأكيد النمط النووي. ويُعد التحقق من أن كل خط iPSC ينشأ من خلية واحدة متطلباً أساسياً لتوليد خلايا iPSC؛ إذ يضمن ذلك إزالة الفسيفسائية الجسدية الأبوية ويؤكد أن بصمة اختلال الصيغة الصبغية التشخيصية موحدة عبر المجتمع الخلوي بأكمله.

  1. استزراع الخلايا المفردة
    1. قم بتفكيك وإعادة تعليق مستعمرات iPSC المؤكدة النمط النووي في معلق من الخلايا المفردة باستخدام Accutase لمدة 2–6 min عند 37 °C.
    2. استخدم وسط E8 المكمل بـ 10 µM Y-27632 لزيادة فرص بقاء الخلايا المفردة المعزولة. قم بترسيب الخلايا المفردة باستخدام إحدى الطرق التالية:
      1. التخفيف المحدود: خفف المعلق إلى تركيز يتراوح بين 0.5–1 خلية لكل 100 µL. استزرع 100 µL في كل بئر من طبق 96-well مغطى بـ Matrigel.
      2. فرز الخلايا المنشط بالفلورة (FACS): قم بفرز الخلايا الحية المفردة مباشرة في آبار طبق 96-well المغطى بـ Matrigel.
  2. التحقق من أحادية النسيلة والتوسيع
    1. الفحص الأولي: بعد 24–48 h من الاستزراع، استخدم مجهر تباين الطور عالي الدقة لفحص كل بئر. حدد فقط الآبار التي تحتوي على حدث التصاق واحد ومحدد بوضوح. استبعد الآبار التي تحتوي على تجمعات متعددة أو لا تحتوي على خلايا.
    2. نمو المستعمرة: حافظ على الخلايا المفردة المحددة في وسط E8 بدون مثبط ROCK بعد أول 24 h.
    3. التوسيع المتسلسل: بمجرد أن تصل المستعمرة المشتقة من خلية مفردة إلى درجة تلاقي 70%، قم بتوسيع الخلايا بالتتابع من طبق 96-well إلى تنسيقات 24-well، ثم 12-well، وأخيراً 6-well.
      ملاحظة: بالنسبة لأبحاث العلاج الخلوي، غالباً ما تكون الأدلة الفوتوغرافية لمرحلة الخلية المفردة (اليوم 0 أو اليوم 1) مطلوبة كجزء من شهادة التحليل لإثبات حالة النقاء السلالي لخطوط iPSC.
      تم تلخيص الأسباب المحتملة لفشل إعادة البرمجة، وتكوين المستعمرات دون المستوى الأمثل، والتحديات أثناء إنشاء مستنسخات iPSC مع الحلول العملية في Table 4.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

التطور المورفولوجي أثناء إعادة البرمجة

أظهرت خلايا السائل السلوي الأولية مورفولوجيات غير متجانسة، شملت خلايا من النوع E وخلايا من النوع F (الشكل 1A). يجب تكثير خلايا النوع F واستخدامها في عملية إعادة البرمجة. عقب عملية التثقيب الكهربائي لخلايا AFCs باستخدام بلازميدات Epi5 الإبيسومية، يُلاحظ تتابع مميز من التغيرات المورفولوجية. في اليوم 0، تظهر خلايا AFCs مورفولوجيا نموذجية مغزلية الشكل تشبه الخلايا الليفية. وبحلول اليوم 3-5، تظهر أولى الأدلة المورفولوجية على إعادة...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

يصف هذا البروتوكول طريقة غير اندماجية وخالية من الخلايا المغذية لتوليد خلايا جذعية مستحثة متعددة القدرات (iPSCs) بشرية ذات عدد كروموسومات غير طبيعي (aneuploid) من خلايا السائل السلوي باستخدام بلازميدات فوق كروموسومية يتم إيصالها عبر التثقيب الكهربائي. تحدد عدة خطوات حاسمة نجاح عملية إعادة البرمجة؛ أولاً، تعد جودة مجموعة خلايا السائل السلوي (AFC) الأولية أمراً بالغ الأهمية. ففي مختبرات الوراثيات الخلوية السريرية، يتم عادةً تكثير خلايا السائل السلوي في أوساط تهدف إلى تسريع تكاثر الخلايا لتحليل النمط النووي قب...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

يصرح المؤلفون بعدم وجود أي تضارب في المصالح المالية. تم إنشاء الرسم التوضيحي التخطيطي في الشكل 7A باستخدام أدوات مدعومة بالذكاء الاصطناعي، ثم تمت مراجعته وتعديله من قبل المؤلفين.

شكر وتقدير

تم دعم هذا العمل من خلال البرنامج الوطني الرئيسي للبحث والتطوير في الصين (منحة رقم 2022YFA0913300) والمشروع السريري الرئيسي لمستشفى جامعة بكين الثالث (منحة رقم BYSY2022054) الممنوحة لـ Jianying Guo.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
0.25% Trypsin-EDTAThermo Fisher (Gibco)25200056تفكيك الخلايا من أجل تمرير AFC
100bp Plus II DNA LadderTransGen BiotechBM321-01سلم DNA
مجمّد -80 CThermo FisherFDE60086fvتخزين عينات وDNA البلازميد لفترات طويلة
محلول Accutase لفصل الخلاياStemCell Technologies07920تفكيك لطيف لـ iPSC إلى تكتلات صغيرة
حمض الأسيتيك (جليدي)Sigma-Aldrich338826مكون مثبت للتنميط النووي (MeOH:AcOH 3:1)
أجاروزSigma-AldrichA9539الرحلان الكهربائي للهلام لنواتج PCR (2%)
وسط AmnioType-1VivaCell BIOSCIENCESC3620-0100وسط زراعة AFC أولي
عداد خلايا آلي / مقياس دمCountstarTC20عد الخلايا الحية باستبعاد صبغة التريبان الزرقاء
مجهر المجال المضيء (100x oil)ZeissAxiovert5تحليل انتشار الطور الاستوائي للتنميط النووي
جهاز طرد مركزي (دوار ذو سلال متأرجحة)Eppendorf5810Rترسيب الخلايا عند 300 x g
كابينة سلامة بيولوجية من الفئة الثانيةESCOAC2-4S8-CNمساحة عمل معقمة لجميع عمليات زراعة الخلايا
حضانة CO2 (مرطبة)There scientific3131الحفاظ على بيئة 37 C و5% CO2
كولسيميد (10 ug/mL)Capricorn scientificCOL-Hإيقاف الطور الاستوائي للتنميط النووي (0.1 ug/mL، لمدة 2-4 h)
وسط CryoStor CS10 لتجميد الخلاياSTEMCELL Technologies07959وسط تجميد الخلايا
DAPIMerck Millipor10236276001صبغ النواة
DMEM (جلوكوز مرتفع)Thermo Fisher (Gibco)11965092قاعدة لوسط زراعة الأرومات الليفية (FC)
DMEM/F-12Thermo Fisher (Gibco)11330032محلول تخفيف Matrigel (1:200)
DPBS بدون Ca2+/Mg2+Thermo Fisher (Gibco)14190250محلول غسيل
بلازميد إبيسومي (pCE-GFP)Addgene#41858ناقل إعادة برمجة غير متكامل (تحكم GFP)
بلازميد إبيسومي (pCXLE-hOCT3/4-shp53-F)Addgene#27077ناقل إعادة برمجة غير متكامل (OCT4 + shp53)
بلازميد إبيسومي (pCXLE-hSK)Addgene#27078ناقل إعادة برمجة غير متكامل (SOX2 + KLF4)
بلازميد إبيسومي (pCXLE-hUL)Addgene#27080ناقل إعادة برمجة غير متكامل (L-MYC + LIN28)
مصل جنين البقرHyCloneSH30071.03مكمل مصل لتوسيع AFC (وسط FC، بنسبة 15%)
مجهر فلوريLeicaSp8صبغ حي لـ TRA-1-60/81 وتصوير بالفلورة المناعية
نظام الرحلان الكهربائي للهلامBio-Rad164-5056تحليل هلام الأجاروز لنواتج PCR
جيلاتين (0.1%)Sigma-AldrichG1393طلاء وعاء الزراعة لالتصاق AFC
طقم استخراج DNA الجينوميTIANGEN4992199عزل DNA بجودة PCR من iPSCs
محلول صبغة جيمزاSigma-AldrichGS500صبغ G-banding للكروموسومات (5%)
GlutaMAX (100x)Thermo Fisher (Gibco)35050061مكمل لوسط FC
مجهر تباين طور مقلوبZeissAxiovert5المراقبة اليومية للمزرعة ومورفولوجيا المستعمرات
خزان تخزين النيتروجين السائلThermo ScientificCY50985الحفظ بالتبريد للخلايا
مصفوفة الغشاء القاعدي MatrigelCorning354230طلاء وعاء الزراعة لالتصاق iPSC
ميثانول (لامائي)Sigma-Aldrich34860مكون مثبت للتنميط النووي (MeOH:AcOH 3:1)
جسم مضاد NANOG (أرنب)Abcamab109250الفلورة المناعية؛ علامة تعدد القدرات النووية
طقم Neon NxT للتثقيب الكهربائي (100 uL)Thermo Fisher (Invitrogen)N10025التثقيب الكهربائي؛ يحتوي على المحاليل المنظمة R وT وE ورؤوس 100 uL
نظام Neon NxT للتثقيب الكهربائيThermo Fisher (Invitrogen)NEON18Sإيصال البلازميدات الإبيسومية عبر التثقيب الكهربائي
أحماض أمينية غير أساسية (NEAA, 100x)Thermo Fisher (Gibco)11140050مكمل لوسط FC
جسم مضاد OCT4 (أرنب)AbclonalA7920الفلورة المناعية؛ علامة تعدد القدرات النووية
مزيج PCR رئيسي (عالي الدقة)TIANGEN4992920التحقق من التخلص من الإبيسوم عبر PCR
pCXWB-EBNA1Addgene#37624تعبير إبيسومي غير متكاثر لـ EBNA1
جسم مضاد PE anti-human TRA-1-81BioLegend330708صبغ تعدد القدرات
بنسلين-ستربتومايسين (100x)Thermo Fisher (Gibco)15140122مكمل مضاد حيوي (لا يُستخدم بعد التثقيب الكهربائي)
كاشف Phalloidin-iFluor 647Abcamab176759توسيم F-actin (خيوط الأكتين)
كلوريد البوتاسيوم (KCl)Sigma-AldrichP5405محلول منخفض التوتر للتنميط النووي (0.075 M)
نظام PCR في الوقت الحقيقيThermo Fisher ScientificQuantStudio3qPCR للتحقق من الجينات العلامة
بوتيرات الصوديوم (NaB)Sigma-AldrichB5887مثبط HDAC؛ 25-100 uM لتعزيز إعادة البرمجة
جسم مضاد SOX2 (فأر)R&D SystemsMAB2018الفلورة المناعية؛ علامة تعدد القدرات النووية
جسم مضاد SSEA-4BioLegend330408الفلورة المناعية؛ علامة تعدد القدرات على سطح الخلية
مجهر ستيريوNikonSMZ745التقاط المستعمرات ميكانيكياً تحت التكبير
TeSR-E8STEMCELL Technologies05990وسط صيانة iPSC خالي من الخلايا المغذية
جسم مضاد TRA-1-60Merck MilliporMAB4360صبغ تعدد القدرات
Trans DNA Marker IITransGen BiotechBM411-01سلم DNA
طقم TransDetect PCR للكشف عن المايكوبلازماTransGen BiotechFM311-01اختبار المايكوبلازما 
إنزيم TrypLE Select (1x)Thermo Fisher (Gibco)12563011تفكيك لطيف للخلايا لـ AFCs الملتصقة
تريبسين (0.025%)Sigma-AldrichT4799المعالجة المسبقة لـ G-banding للشرائح (30-60 s)
دورة حرارية VeritiPro ذات 96 بئراًThermo Fisher ScientificA48141PCR للتحقق من التخلص من الإبيسوم
حمام مائي (37 °C)Shanghai Zhixin Experimental Instrument Technology Co., Ltd.ZX-S22إذابة الأوساط والكواشف
Y-27632 Dihydrochloride (مثبط ROCK)Tocris1254يعزز بقاء iPSC بعد التفكيك (10 uM)

المراجع

  1. Gurdon JB. The developmental capacity of nuclei taken from intestinal epithelium cells of feeding tadpoles. Development. 1962;10(4):622-640.
  2. Evans MJ, Kaufman MH. Establishment in culture of pluripotential cells from mouse embryos. Nature. 1981;292(5819):154-156.
  3. Martin GR. Isolation of a pluripotent cell line from early mouse embryos cultured in medium conditioned by teratocarcinoma stem cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 1981;78(12):7634-7638.
  4. Thomson JA, Itskovitz-Eldor J, Shapiro SS, Waknitz MA, Swiergiel J, et al. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 1998;282(5391):1145-1147.
  5. Takahashi K, Tanabe K, Ohnuki M, Narita M, Ichisaka T, et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 2007;131(5):861-872.
  6. Fusaki N, Ban H, Nishiyama A, Saeki K, Hasegawa M. Efficient induction of transgene-free human pluripotent stem cells using a vector based on Sendai virus, an RNA virus that does not integrate into the host genome. Proc Jpn Acad Ser B Phys Biol Sci. 2009;85(8):348-362.
  7. Warren L, Manos PD, Ahfeldt T, Loh YH, Li H, et al. Highly efficient reprogramming to pluripotency and directed differentiation of human cells with synthetic modified mRNA. Cell Stem Cell. 2010;7(5):618-630.
  8. Yu J, Hu K, Smuga-Otto K, Tian S, Stewart R, et al. Human induced pluripotent stem cells free of vector and transgene sequences. Science. 2009;324(5928):797-801.
  9. Hou P, Li Y, Zhang X, Liu C, Guan J, et al. Pluripotent stem cells induced from mouse somatic cells by small-molecule compounds. Science. 2013;341(6146):651-654.
  10. Guan J, Wang G, Wang J, Zhang Z, Fu Y, et al. Chemical reprogramming of human somatic cells to pluripotent stem cells. Nature. 2022;605(7909):325-331.
  11. Liuyang S, Wang G, Wang Y, He H, Lyu Y, et al. Highly efficient and rapid generation of human pluripotent stem cells by chemical reprogramming. Cell Stem Cell. 2023;30(4):450-459.e9.
  12. Wang Y, Peng F, Yang Z, Cheng L, Cao J, et al. A rapid chemical reprogramming system to generate human pluripotent stem cells. Nat Chem Biol. 2025;21(7):1030-1038.
  13. Li C, Zhou J, Shi G, Ma Y, Yang Y, et al. Pluripotency can be rapidly and efficiently induced in human amniotic fluid-derived cells. Hum Mol Genet. 2009;18(22):4340-4349.
  14. Slamecka J, Salimova L, McClellan S, van Kelle M, Kehl D, et al. Non-integrating episomal plasmid-based reprogramming of human amniotic fluid stem cells into induced pluripotent stem cells in chemically defined conditions. Cell Cycle. 2016;15(2):234-249.
  15. Li Q, Fan Y, Sun X, Yu Y. Generation of induced pluripotent stem cells from human amniotic fluid cells by reprogramming with two factors in feeder-free conditions. J Reprod Dev. 2013;59(1):72-77.
  16. Crosland BA, Hedges MA, Ryan KS, D'mello RJ, Mccarty OJT, Amniotic fluid: its role in fetal development and beyond. J Perinatol. 2025 Aug;45(8):1163-1170. doi: 10.1038/s41372-025-02313-1. Epub 2025 May 8. PMID: 40341778; PMCID: PMC12354197.
  17. Liu L, et al. Amniotic fluid stem cells in birth defects: integrated roles in disease modeling, prenatal diagnosis, and therapy. Stem Cell Rev Rep. 2026. doi:10.1007/s12015-026-11161-1.
  18. Antonucci I, Provenzano M, Rodrigues M, Pantalone A, Salini V, et al. Amniotic fluid stem cells: a novel source for modeling of human genetic diseases. Int J Mol Sci. 2016;17(4):607.
  19. Guillot PV. Induced pluripotent stem (iPS) cells from human fetal stem cells. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol. 2016;31:112-120. doi:10.1016/j.bpobgyn.2015.08.007.
  20. Lu HE, Yang YC, Chen SM, Su HL, Huang PC, et al. Modeling neurogenesis impairment in Down syndrome with induced pluripotent stem cells from trisomy 21 amniotic fluid cells. Exp Cell Res. 2013;319(4):498-505.
  21. Lee CC, et al. Establishment of a human trisomy 18 induced pluripotent stem cell line from amniotic fluid cells. Stem Cell Res. 2018;29:115-119.
  22. D'Aurora M, et al. Modeling Klinefelter syndrome using induced pluripotent stem cells reveals impaired germ cell differentiation. Front Cell Dev Biol. 2020;8:567454.
  23. Mali P, Chou BK, Yen J, Ye Z, Zou J, et al. Butyrate greatly enhances derivation of human induced pluripotent stem cells by promoting epigenetic remodeling and the expression of pluripotency-associated genes. Stem Cells. 2010;28(4):713-720.
  24. Guo J, Lee Q, Qiu H, Wei Y, Zhu X, et al. Patient-derived neural organoids reveal developmental impairments associated with a novel GJB1 mutation in X-linked Charcot-Marie-Tooth disease. Neurobiol Dis. 2026;220:107299.
  25. Nanbo A, Sugden A, Sugden B. The coupling of synthesis and partitioning of EBV's plasmid replicon is revealed in live cells. EMBO J. 2007;26(19):4252-4262.
  26. Chou BK, Mali P, Huang X, Ye Z, Dowey SN, et al. Efficient human iPS cell derivation by a non-integrating plasmid from blood cells with unique epigenetic and gene expression signatures. Cell Res. 2011;21(3):518-529.
  27. Okita K, Matsumura Y, Sato Y, Okada A, Morizane A, et al. A more efficient method to generate integration-free human iPS cells. Nat Methods. 2011;8(5):409-412.
  28. Cheng L, Wang Y, Yang Z, Cao J, Peng F, et al. p53 safeguards chemical reprogramming of human somatic cells toward pluripotency. Cell. 2026. doi:10.1016/j.cell.2026.03.038.
  29. Akutsu SN, Miyamoto T, Oba D, Tomioka K, Ochiai H, et al. iPSC reprogramming-mediated aneuploidy correction in autosomal trisomy syndromes. PLoS One. 2022;17(3):e0264965.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

خلايا جذعية بشرية مستحثة متعددة القدرات ذات اختلال في الصيغة الصبغيةمؤشرات تعدد القدراتالتحول من الميزنشيمي إلى الظهاريتحليل النمط النووي بنطاقات جيالتحقق من خلو الناقل بواسطة تفاعل البوليميراز المتسلسلإعادة برمجة خالية من الخلايا المغذيةنمذجة الأمراضبيولوجيا الكروموسومات

تم نشر هذه المقالة

الفيديو قريباً

تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.