Name: وفي الإنسان ، فيفو الأحيائي لقياس محددة من الأنسجة وسطاء Nociceptive التهابية (فيديو) | JoVE Journal
Uploaded: 2008-12-01T00:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 54 s
Description: تعلم تقنية الميكرودياليسيس لجمع السائل النسيجي من الجلد الملتهب في الإنسان. تُستخدم هذه الطريقة لقياس الوسطاء الكيميائية الحيوية المرتبطة بالألم والالتهابات.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

تحريض التهاب التجريبية : <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يشتمل على حروق من الدرجة الأولى في غير المدبوغة الجلد من الفخذ مع المعونة من معايرة ، ومصدر الأشعة فوق البنفسجية B (Saalmann Multitester SBB LT 499 ، Saalmann محدودة ، هيرفورد ، ألمانيا). ويتسبب في حروق الشمس قبل 24 ساعة من بدء التجربة microdialysis بتطبيق ثلاثة أضعاف كمية الضوء فوق البنفسجية اللازمة ليسبب احمرار الجلد المكشوف كاملة ، أو ثلاثة أضعاف الحد الأدنى من الجرعة الاحمراري (MED). يتم تحديد MED في كل مادة قبل بدء الدراسة. وأكد التسليم دقيقة من الطاقة مع الأشعة فوق البنفسجية مترا (12 RM ، الدكتور Grobel الالكترونية للأشعة فوق البنفسجية محدودة ، Ettlingen ، ألمانيا). </li></ol> التنسيب القسطرة وجمع العينة : <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعد منطقة التدريج مع قفازات معقمة ، 1 حامل إبرة معقمة ، 1cc حقنة غيض luer مع قياس 23 (G) الإبرة ، المحاقن مع إبرة 1cc 30G ، 1 ٪ ليدوكائين ، ومسحات الكحول ، 2X2 منصات شاش معقم ، والقسطرات microdialysis المرفقة في واحدة نهاية لإبرة 23G 4cm (غسيل الكلى عن طريق الجلد ، الاحتفالات ، ألمانيا) ، و 1.5 مل من أنابيب جمع Microcent (E &amp; K العلمية ، وسانتا كلارا ، كاليفورنيا.) مع 4μl مثبط البروتياز حل لكل عينة 100μl على الجليد الجاف. يتم حل مثبط البروتياز في تعليمات الشركة المصنعة باستخدام أقراص البروتيني كوكتيل المانع (روش تشخيص ، شركة محدودة ، مانهايم ، ألمانيا). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعداد 1 ٪ حل الزلال البشري في حل الجرس lactated واستدراجه الى حقنة 1cc غيض luer ، والتأكد من وجود فقاعات الهواء NO المتبقية في المحاقن. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحميل المحاقن مع 1 ٪ الإنسان حل رينغر الألبومين المخصب اكتات في المهد (microdialysis متعددة حقنة الرف ، جهاز هارفارد ، ناتيك الجنوبية ، MA) التي شنت على مضخة الدقة ضخ عالية (مضخة 22 ، هارفارد جهاز ، جنوب ناتيك ، MA ). تأكد من أن شريط للمضخة التسريب القيادة الحقنة على اتصال كامل مع المكبس من المحاقن. تعيين معدل ضخ بعد التأكد من أنه تم إدخال حقنة القطر بدقة في المضخة. معدلات ضخ تستخدم عادة تتراوح ما بين 2 إلى 4μl/min. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحديد المنطقة التي تخطط لجمع من عينتك. عندما أخذ عينات من المنطقة عن وملتهبة مصطنع ، مثل حروق الشمس وصفها أعلاه ، على إدراج خطة القسطرة على حافة حروق الشمس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تنظيف منطقة صغيرة على حواف المقابل من الآفة ، أو الموقع الذي تنوي جمع من عينتك ، مع الكحول. وسوف يتم تنظيف هذه المناطق الإدراج المقصودة ونقاط الخروج عن القسطرة. ضخ ما يكفي فقط ليدوكائين داخل cutaneously (بدليل تبييض الجلد على حقن) في هذه المواقع لخلق فقاعة صغيرة جدا (الحد الأقصى من 2mm و). وينبغي حقن كمية محدودة من هذا القبيل داخل جلدي يدوكائين في نقاط الدخول والخروج من القسطرة microdialysis لا يغير من نتائج الاختبار الأحيائي ولكن لا تجعل من الإدراج القسطرة بشكل ملحوظ أقل إيلاما لمواضيع الدراسة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام تقنيات العقيم ، إدراج القسطرة microdialysis مع المعونة من 23G إبرة تعلق على طول منطقة الجلد استكشافها. عمق الإدراج في واجهة بين جلدي وتحت الجلد. يمكن التحقق من الإدراج في عمق كاف بصريا. كما يتم نقل الإبرة والقسطرة إلى الأمام ينبغي أن تعلق الإبرة تسبب قليلا حتى للطي من الجلد فضلا عن بعض تبييض البشرة. لا ينبغي أن يحدث نزيف. إذا كان النزيف يحدث هذا يدل على أن تقع الإبرة أعمق مما هو مقصود وعمق الإدراج يجب أن يكون المعدل. مرة واحدة وقد تم دفع الإبرة في نقطة الخروج من الجلد ، مع تدفق القسطرة 1 ٪ الألبومين حل رينغر المخصب اكتات حتى تشاهد قطرات على طول القسطرة. يتم ذلك عن طريق إدراج بعناية نهاية إبرة حقنة (23G إبرة) في نهاية البعيدة للقسطرة microdialysis ، وحقن ببطء الحل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد التنظيف القسطرة برفق على الإبرة لتغذية المرفقة قسطرة من خلال الجلد. مطلوب التعامل مع طيف لأن القسطرة صغيرة القطر ، وبالتالي الهشة. سحب القسطرة حتى يتم مترابطة تماما من خلال الجلد ، أي قاعدة من أنابيب البلاستيك أكبر تضمين نهاية البعيدة للقسطرة تلامس الجلد عند نقطة الدخول. كما ذكر أعلاه ، تذكر لعدم وجود نزيف في نهاية الإجراء يؤكد الأمثل التنسيب القسطرة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نعلق نهاية البعيدة للقسطرة لغيض من إبرة المحقنة 23G من الراحة في الرف للمضخة الحقن في الوريد. مطلوب الحذر لتجنب ثقب الإبرة من خلال الجدار من القسطرة ، والتي تتسبب في تسرب محتمل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قطع الإبرة قبالة نهاية القريبة من القسطرة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ¼ بوصة باستخدام الشريط الوردي ، ونعلق على استعداد 1.5ml أنبوب جمع Microcent في الجلد بالقرب من موقع خروج القسطرة. مكان غيض من القسطرة في أنبوب للسماح للجمع مجموعة من microdialysate. بدء تشغيل مضخة نضح في ص سلفاأكلت والتحقق من أن حجم تسليمها بشكل متقطع وجمعت المباراة. في حالة وحدات التخزين لا تصل المباراة ، والتسرب من الجلد موقع دخول ينبغي استبعاد (أحيانا يمكن أن تحل عن طريق سحب جزء من القسطرة مضمن بواسطة أنابيب بلاستيكية أكثر إحكاما على الجلد موقع دخول). بدلا من ذلك ، قد تحتاج إلى قسطرة استبداله إذا سلمت وجمعت كميات لا تصل المباراة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بمجرد اكتمال أخذ العينات ، يتم وضع العينات في الثلج الجاف حتى في تخزين -80 درجة مئوية. </li></ol>

<ol><li>Angst, M. S., Clark, J. D., Carvalho, B., Tingle, M., Schmelz, M., Yeomans, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytokine+profile+in+human+skin+in+response+to+experimental+inflammation%2C+noxious+stimulation+and+administration+of+a+COX-inhibitor%3A+A+microdialysis+study%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Cytokine profile in human skin in response to experimental inflammation, noxious stimulation and administration of a COX-inhibitor: A microdialysis study.</a> Pain. 139, 15-27 (2008).</li>
</ol>

ليس لدى المؤلفين أي تضارب في المصالح للإفصاح عنه.

الجمع بين استخدام تقنيات متعددة microdialysis والتكنولوجيا المناعية هو قيمة في الوقت الحقيقي ، داخل الجسم الحي الأحيائي الإنسان توفير نظرة ثاقبة الأحداث البيوكيميائية في الأنسجة من الاهتمام. جنبا إلى جنب مع التجارب السلوكية مثل اختبارات الألم ، والأسلوب يسمح دراسة التفاعلات الكيميائية الحيوية المعقدة وساطة الألم والالتهابات. طريقة واعدة ل1) تحديد المؤشرات الحيوية أنسجة معينة وساطة الألم والالتهاب ، 2) توفير البصيرة الآلي في علم الأمراض من ظروف الألم والالتهاب المزمن مع أمراض الأنسجة الطرفية ، و 3) است...

<table><tbody><tr><td>قسطرة الديلزة الدقيقة</td><td>أداة</td><td>Dermal Dialysis</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>المضخة 22</td><td>أداة</td><td>Harvard Apparatus</td><td>552219</td><td></td></tr><tr><td>جهاز Saalmann Multitester SBB LT 400</td><td>أداة</td><td>Saalmann GmbH</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>مقياس الإشعاع RM-12 IP-65</td><td>أداة</td><td>Dr. Grobel UV Elektronik GmbH</td><td>82120000/81112100</td><td></td></tr><tr><td>مثبط البروتيناس الشامل</td><td>كاشف</td><td>Roche Group</td><td>11836145001</td><td></td></tr><tr><td>أنبوب طرد مركزي دقيق</td><td>أداة</td><td>E&amp;amp;K Scientific</td><td>380150-X</td><td></td></tr><tr><td>ألبومين 5%</td><td>كاشف</td><td>ZLB Behring</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>رينجر لاكتات</td><td>كاشف</td><td>Hospira Inc.</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Xylocaine-MPF</td><td>أخرى</td><td>AstraZeneca</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>سرنجة 1mL</td><td>أداة</td><td>BD Biosciences</td><td>309602</td><td></td></tr></tbody></table>

وفي الإنسان ، فيفو الأحيائي لقياس محددة من الأنسجة وسطاء nociceptive التهابية

Human In-Vivo Bioassay for the Tissue-Specific Measurement of Nociceptive and Inflammatory Mediators

ويمكن استخدام هذا الاختبار الأحيائي في الجسم الحي ، لدراسة الإنسان ومتطوعين من البشر المرضى. يتم جمع عينات من مواقع النسيج ذات الصلة مثل الجلد عن طريق القسطرة microdialysis إدراج جو معقم و مطهر (غسيل الكلى عن طريق الجلد ، الاحتفالات ، ألمانيا). يتضح من هذا المثال هو جمع السائل الخلالي من الجلد ملتهبة تجريبيا في متطوعين من البشر. ويمكن الجمع بين جمع العينات مع اختبارات تجريبية أخرى. على سبيل المثال ، وتقييم المواد الكيميائية الحيوية في وقت واحد من الافراج محليا والحساسية الذاتية للمحفزات مؤلمة في الجلد ملتهبة تجريبيا يتيح الحرجة البيوكيميائية السلوكي تصل إلى تحديد المؤشرات الحيوية من الألم والالتهابات. مقايسة المعروضة في الكائن البشري يعيشون يسمح البصيرة الآلي في عمليات محددة الأنسجة الكامنة وراء الألم و / أو الالتهابات. هو أيضا طريقة مناسبة تماما لدراسة فعالية التدخلات القائمة أو الرواية -- مثل المخدرات المرشحين جديدة -- تستهدف معالجة أوضاع مؤلمة و / أو التهابات. هذه المادة سوف تقدم وصفا مفصلا عن استخدام تقنيات microdialysis لجمع السائل الخلالي من آفة الجلد ملتهبة تجريبيا من الموضوعات دراسة الإنسان. عادة ما تتم معالجة عينات السائل الخلالي بمساعدة من مجموعة متعددة المناعية حبة السماح يعاير تصل إلى 100 analytes في عينات صغيرة في الحجم ونحو 50 microliters.

وتقدم تقنية لجمع داخل الجسم الحي من عينات السائل الخلالي من المواقع ذات الصلة الأنسجة (الجلد هنا ، ملتهبة تجريبيا) لقياس المواد الكيميائية الحيوية وساطة الألم والالتهابات.

وفي الإنسان ، فيفو الأحيائي لقياس محددة من الأنسجة وسطاء Nociceptive التهابية

يمكن استخدام هذا المقايسة الحيوية البشرية داخل الجسم (in-vivo) لدراسة المتطوعين والمرضى من البشر. تُجمع العينات من مواقع الأنسجة ذات الصلة، مثل الجلد، عن طريق ...

يبدأ هذا الفيديو بعد مرور 24 ساعة من استحثاث حروق الشمس التجريبية على فخذ المريض باستخدام مصدر ضوء UV مُعايَر. وبعد تطبيق التخدير الموضعي، يتم إدخال قسطرة الديلزة الدقيقة بين الشقوق والطبقة تحت الجلد، ثم يتم سحبها عبر الجلد. وتُوصل حقنة تروية بالطرف القريب من القسطرة، حيث سيؤدي تفعيل مضخة التروية إلى إحداث تدفق وجمع للمحلل الدقيق.بعد الجمع، يمكن تخزين العينات في درجة حرارة 80- درجة مئوية حتى يحين موعد تحليل الوسائط الالتهابية والنociceptive. مرحباً، أنا مارتن أنجست من قسم التخدير في جامعة ستانفورد. وأنا مارثا تينغل، ممرضة أبحاث أقدم ومديرة مختبر الألم البشري، الذي أسسه الدكتور أنجست عام 1995 هنا في جامعة ستانفورد.سنعرض لكم اليوم إجراءً لوضع قساطر الديلزة المجهرية (Microdialysis) في الجلد الملتهب تجريبياً لدى المشاركين البشريين في الدراسة، وذلك لجمع السائل الخلالي. نستخدم هذه التقنية في مختبرنا لدراسة الإفراز النوعي للأنسجة للمواد الكيميائية الحيوية الضرورية للتوسط في الألم والالتهاب. لذا، لنبدأ الآن.يعد حرق الشمس الاصطناعي أحد نماذج التهاب الجلد التجريبية. يتم تحفيز حرق شمس من الدرجة الأولى باستخدام مصدر أشعة فوق بنفسجية B مُعاير. ويتم ضمان التوصيل الدقيق للطاقة باستخدام مقياس الأشعة فوق البنفسجية.يتم تحفيز حروق الشمس عادةً عن طريق تطبيق ضعفي أو ثلاثة أضعاف كمية أشعة UVB اللازمة للتسبب في الاحمرار. قبل جمع العينات، قم بتجهيز منطقة تحضير تحتوي على قفازات معقمة، وحامل إبر معقم، ومحاقن Luer tip سعة 1 cc مع إبر عيار 23 وعيار 30. ستحتاج أيضاً إلى قساطر الديلزة الدقيقة (microdialysis catheters) المتصلة من أحد طرفيها بإبرة عيار 23 بطول 4 سم. يتم جمع العينات في أنابيب جمع مجهرية سعة 1.5 مل تحتوي على 4 µL من محلول مثبط البروتياز لكل 100 µL من العينة. يتم تحضير محلول مثبط البروتياز وفقاً لتعليمات الشركة المصنعة باستخدام أقراص كوكتيل مثبط البروتياز. قم بتحضير محلول ألبومين بشري بتركيز 1% في محلول رينجر اللاكتات، واسحبه إلى محقنة Luer tip سعة 1 cc، مع التأكد من عدم وجود فقاعات هواء متبقية في المحقنة. ضع المحقنة التي تحتوي على محلول رينجر اللاكتات المخصب بالألبومين البشري بنسبة 1% في الحامل المثبت على مضخة تسريب عالية الدقة. يمكن تحميل عدة محاقن للحصول على عينات من السائل الخلالي من مواقع مختلفة في آن واحد.تأكد من أن قضيب مضخة التسريب التي تحرك المحقنة في حالة تلامس تام مع مكبس المحقنة. اضبط معدل الضخ بعد التأكد من إدخال قطر المحقنة بدقة في المضخة. تتراوح معدلات التسريب الشائعة الاستخدام بين 2 إلى 4 µL في الدقيقة.أنت الآن مستعد لوضع القسطرة قبل البدء في عملية التركيب. يجب تحديد المنطقة التي ستُجمع منها العينات عند أخذ العينات من منطقة ملتهبة مستحدثة اصطناعيًا، مثل حرق الشمس المستحث تجريبيًا. خطط لإدخال القسطرة عند حافة منطقة حرق الشمس.قم بتنظيف منطقة صغيرة عند الحواف المتقابلة للآفة أو الموقع C الذي تنوي جمع عينتك منه باستخدام مسحات كحولية، حيث ستكون هذه المناطق المنظفة هي نقاط الإدخال والخروج المحددة للقثطرة. باستخدام حقنة سعة 1 cc وإبرة قياس 30 gauge، احقن 1% Lidocaine، وبمجرد ظهور علامات تبييض الجلد عند الحقن، احقن كمية كافية فقط من الـ lidocaine في هذه المواقع لتكوين فقاعة صغيرة جداً بحد أقصى يبلغ 2 mm. إن حقن كمية صغيرة من الـ lidocaine عند نقطتي دخول وخروج قثطرة الديلزة الدقيقة يجعل إدخال القثطرة أقل إيلاماً للأشخاص، ولكن لا ينبغي أن يؤثر ذلك على نتائج المقايسة الحيوية، مع اتباع التقنيات المعقمة.أدخل قساطر الديلزة الدقيقة بمساعدة الإبرة المرفقة مقاس 23 gauge على طول منطقة الجلد المراد استكشافها. يكون عمق الإدخال عند الواجهة بين الجلد والأنسجة تحت الجلد. يمكن التحقق من الاختراق الكافي بصرياً أثناء تحريك الإبرة والقسطرة المتصلة بها للأمام.يجب أن تتسبب الإبرة في طي الجلد قليلاً إلى الأعلى بالإضافة إلى حدوث شحوب في الجلد. لا ينبغي أن يحدث نزيف؛ وفي حال حدوث نزيف، فهذا يعني أن الإبرة تقع في مستوى أعمق من المطلوب، ويجب حينئذٍ تعديل عمق الإدخال.بمجرد دفع الإبرة عبر نقطة الخروج من الجلد، اسحب الإبرة برفق لتمرير القسطرة المتصلة بها عبر الجلد. يُعد التعامل برفق أمراً بالغ الأهمية لأن القسطرات ذات قطر صغير وهشة للغاية. اسحب القسطرة حتى يتم تمريرها بالكامل عبر الجلد وصولاً إلى قاعدة الأنبوب البلاستيكي الأكبر.يجب أن يلامس الطرف البعيد للقسطرة المدمجة الجلد عند نقطة الدخول. ومرة أخرى، يجب ألا يحدث نزيف أو يحدث نزيف طفيف، مما يشير إلى وضع القسطرة بشكل صحيح. لبدء عملية جمع العينات، قم أولاً بغسل القساطر بمحلول رينجرز لاكتات معزز بـ 1%albumin.يتم ذلك عن طريق إدخال حقنة ذات إبرة مقاس 23 gauge بعناية في الطرف القاصي من قسطرة الديلزة الدقيقة وحقن المحلول ببطء. قم بشطف القسطرة حتى تظهر قطيرات على طول القسطرة وكذلك عند طرفها. بعد شطف القسطرة، قم بتوصيل الطرف القاصي للقسطرة بطرف الإبرة مقاس 23 gauge للحقنة الموجودة في حامل مضخة التسريب.تجنب ثقب الإبرة عبر جدار القسطرة، مما قد يتسبب في حدوث تسرب، وذلك باستخدام شريط وردي مقاس ربع بوصة. قم بتثبيت أنبوب تجميع ميكرو سنتريفوغ سعة 1.5 milliliter المُجهز على الجلد بالقرب من جانب خروج القسطرة. ضع طرف القسطرة داخل أنبوب التجميع للسماح بجمع المُنحل الميكروي (micro lysate).شغّل مضخة التروية بالمعدل المحدد مسبقاً، وتحقق بشكل متقطع من تطابق الحجم المُوصل مع الحجم المجمّع في حال عدم تطابقهما. تحقق مما إذا كان هناك تسريب من موقع دخول الجلد. يمكن في بعض الأحيان معالجة تسريبات موقع الدخول عن طريق سحب جزء القسطرة المدمج في الأنابيب البلاستيكية بإحكام أكبر فوق موقع دخول الجلد.وبدلاً من ذلك، قد يلزم استبدال القسطرة في حال تم إدخالها وجمعها. لا تتطابق الأحجام بمجرد اكتمال عملية أخذ العينات. تُوضع العينات على الثلج الجاف حتى يتم تخزينها عند درجة حرارة -80 °C.لقد عرضنا لكم للتو كيفية جمع السائل الخلالي من الجلد الملتهب تجريبياً باستخدام قساطر الديلزة الدقيقة. نحن الآن مستعدون لتحليل العينات التي تم الحصول عليها باستخدام المقايسات المناعية للبحث عن المؤشرات الحيوية الكيميائية للألم والالتهاب. عند إجراء هذا الإجراء، من المهم التعامل مع القساطر بحذر شديد، وإدخال القساطر ببطء مع تجنب شد الأنابيب، وقد يكون من المفيد تشحيم القساطر قبل الإدخال بكمية قليلة من المحلول المعقم الذي قمتم بتحضيره لمرحلة التسريب في الدراسة.هذا كل شيء. شكراً للمشاهدة ونتمنى لكم التوفيق في تجاربكم.

human-vivo-bioassay-for-tissue-specific-measurement-nociceptive

Research

JoVE Journal

Biology

علم الأحياء

وهناك تقنية لجمع وقياس وسطاء الجروح الجراحية البيوكيميائية في نقطة زمنية محددة.

جمع وقياس وسطاء Nociceptive والتهاب في الجروح الجراحية

وتظهر خوارزميات تقييم عتبات الألم والحرارة الملتهبة في الجلد الميكانيكية تجريبيا من الموضوعات دراسة الإنسان. اختبار الألم نموذجين دراسة مستقلة من قبل تجهيز nociceptive الرئيسيتين السكان الألياف العصبية الطرفية يحيل الألم ، أي غير مياليني ألياف C و A - الصغيرة مياليني دلتا الألياف.

تحديد حرارة والميكانيكية عتبة الألم في الجلد ملتهبة من الموضوعات البشرية

يوضح هذا الفيديو القياس الكمي للوسطاء الالتهابيين أثناء الإصابة عن طريق احتضان الخلايا المناعية المشتقة من أنسجة الرئة البشرية بالمستدمية النزلية. يستخدم قياس التدفق الخلوي لقياس مضان السيتوكين في الخلايا الليمفاوية المصنفة ، ويرتبط بإنتاج السيتوكينات المؤيدة للالتهابات استجابة للعدوى البكتيرية.

القياس الكمي للوسطاء الالتهابيين في الخلايا المشتقة من الأنسجة البشرية المصابة

من أجل دراسة التغيرات من الألياف العصبية داخل البشرة مسبب (IENFs) في اعتلال الأعصاب المؤلم (PN)، قمنا بتطوير البروتوكولات التي يمكن أن تفحص مباشرة التغيرات المورفولوجية ثلاثي الأبعاد لوحظ في IENFs مسبب. تحليل ثلاثي الأبعاد للIENFs لديه القدرة على تقييم التغيرات المورفولوجية للIENF في PN.

التصوير ثلاثي الأبعاد من مسبب الألياف العصبية داخل البشرة في خزعات الجلد البشري

نحن تصف طريقة التصوير غير الغازية للتمييز مراحل التهابات. تسليم النظامية من كسيماترين يكشف مجالات التهاب حاد تعتمد على النشاط MPO في العدلات. في المقابل، حقن lucigenin يسمح التصور من التهاب مزمن تعتمد على النشاط Phox في الضامة.

في الجسم الحي أسلوب التصوير لتميز الالتهاب الحاد والمزمن

عادة ما يتم فحص مستويات جزيء إشارات الخلية الالتهابية أكسيد النيتريك (NO) باستخدام كاشف جريس. في هذا البروتوكول ، أنشأنا اختبار Griess المعدل باستخدام أنسجة دماغ ذبابة الفاكهة الحية من أجل الكشف عن إفراز NO بطريقة بسيطة وقابلة للقياس الكمي وقابلة للتكرار بدرجة كبيرة.

الفحص الكمي الجديد للأنسجة الكاملة لمستويات أكسيد النيتريك في ذبابة الفاكهة استجابة الالتهاب العصبي

وصفنا بروتوكول لدراسة تطور فرط التألم الناجم عن المواد الأفيونية والتسامح في الفئران. استنادا إلى قياس الاستجابات مسبب للألم الحرارية والميكانيكية للحيوانات السذاجة والمعالجة المورفين، فإنه يسمح لقياس الزيادة في حساسية الألم (فرط التألم) وانخفاض في تسكين (التسامح) المرتبطة بإدارة الأفيونية المزمن.

تقييم المورفين التي يسببها هبرلجسا ومسكن التسامح في الفئران عن طريق الحرارية والميكانيكية مسبب للألم طرائق

هذه الورقة يفسر تطبيق التصوير الفلورسنت باستخدام مسبار التصوير الضوئي أكتيفاتابل لتصور النشاط في الجسم الحي من ميتالوبروتيناسس المصفوفة الرئيسية في اثنين من نماذج تجريبية مختلفة من الالتهاب.

غير الغازية<em&gt; في فيفو</em&gt; الإسفار التصوير البصري من مب النشاط التهابات باستخدام عامل التصوير الفلورسنت أكتيفاتابل

تحدث التغيرات المورفولوجية في الخلايا الليفية المتجاوبة المناعية بعد التنشيط وتعزيز التعديلات في التوظيف الخلوي. استخدام التصوير بفوتونين بالاقتران مع بروتين خاص بالفيبلاف 1 (FSP1) من الفوتونات وراثياً؛ tdTomato floxed-stop-floxed (TB/TB) خط الماوس والأخضر الفلورسنت الموسومة lipopolysaccharide-FITC، يمكننا أن نوضح استيعاب محددة للغاية من lipopolysaccharide في الخلايا الليفية الجلدية والتغيرات المورفولوجية في الجسم الحي.

في فيفو اثنين من اللون 2-الفوتون التصوير من الخلايا المراسل الموسومة وراثيا في الجلد

يوصف بروتوكول قياسي لدراسة النشاط المضاد للأورام والسمية المرتبطة ب IL-1α في نموذج فأر متزامن من HNSCC.

تقييم النشاط المضاد للأورام في الجسم الحي للجسيمات النانوية Polyanhydride IL-1α

يصف البروتوكول كيفية قياس فرط الألم في الركبة في الفئران. نعرض أمثلة في نماذج الفئران لآلام الركبة الحادة وكذلك في نماذج هشاشة العظام (OA).

تقييم فرط الألم في الركبة في الفئران باستخدام قياس تطبيق الضغط

تعلم تقنية الميكرودياليسيس لجمع السائل النسيجي من الجلد الملتهب في الإنسان. تُستخدم هذه الطريقة لقياس الوسطاء الكيميائية الحيوية المرتبطة بالألم والالتهابات.

وفي الإنسان ، فيفو الأحيائي لقياس محددة من الأنسجة وسطاء Nociceptive التهابية

استكشف المزيد من الفيديوهات