سبتمبر 15, 2009
يصف هذا البروتوكول استخدام microinjection وعالية الدقة في التصوير ذبابة الفاكهة السوداء البطن الجنين المخلوي لدراسة الانقسام.
يبدأ هذا الإجراء بجمع الأجنة على أطباق عصير العنب الطازج من 30 إلى 60 دقيقة. بعد إزالة اللوحة من قفص البحيرة ، التقط الأجنة بفرشاة مبللة وضعها على شريط لاصق مزدوج. قم بلف جنين واحد برفق فوق الشريط باستخدام نصف ملاقط حتى ينفتح الكوريون.
التقط الجنين وضعه برفق على الغطاء. انزلق فوق طبقة من الغراء الهيت. كرر هذا حتى يكون لديك ما يكفي من الأجنة.
بعد الجفاف ، تكون الأجنة جاهزة للحقن. مرحبا ، أنا إنغريد بروس موشر من مختبر الدكتور جوناثان سكالي في قسم البيولوجيا الجزيئية والخلوية بجامعة كاليفورنيا ديفيس. سنعرض لك اليوم إجراء لحقن ذبابة الفاكهة الأجنة المخلوية بالحقن الدقيق.
نستخدم هذا الإجراء لدراسة دور المحركات الدقيقة والمحركات القائمة على التاجي في الانقسام. على سبيل المثال ، نقوم بحقن الأجسام المضادة الدقيقة أو مثبطات أخرى لبروتينات انقسامية معينة. من خلال تحليل تأثير المثبط على الانقسام ، يمكننا تحديد وظيفة البروتينات المستهدفة.
لذلك دعونا نبدأ. لبدء الاستعدادات قبل يومين إلى ثلاثة أيام من التجربة ، قم بإعداد القفص عن طريق قطع فتحتين صغيرتين بحجم سنتيمتر واحد مربع على جانبي زجاجة بلاستيكية. املأ الثقوب بقطعة قطنية ، مما يسمح بتدفق الهواء.
اضغط على الذباب في الزجاجة ثم قم بتغطيتها بطبق عصير العنب. مع الخميرة ، احتفظ بقفص الساق في درجة حرارة الغرفة ، وسوف يضع الذباب البيض لمدة تصل إلى 10 أيام قبل يوم واحد على الأقل من التجربة. اسحب الإبر للحقن واحتفظ بها عند أربع درجات مئوية.
في يوم التجربة ، قم بإعداد وتحميل الإبر. أولا ، أخرج التوبولين الملصق من الفريزر وضعه على الثلج لمدة خمس إلى 15 دقيقة. بعد ذلك ، قم بتخفيفه باستخدام المخزن المؤقت GPEM ثم قم بطرده لمدة 10 إلى 15 دقيقة عند 13،000 دورة في الدقيقة أربع درجات مئوية.
أخيرا ، قم بتحميل ميكرولتر إلى اثنين من الميكرولتر في الإبرة واحتفظ بها عند أربع درجات مئوية. لمنع البلمرة الناجمة عن درجة الحرارة في الإبرة. قبل إعداد قسيمة الغطاء ، قم بعمل غراء سباعي عن طريق تسجيل شريط لاصق مزدوج ووضعه في زجاجة سعة 100 مل.
أضف حوالي 50 مل من الهبتان ، وأغلق الزجاجة وهزها لعدة أيام. قبل تحضير الأجنة ، قم بعمل غرفة تجفيف يتم وضع الأجنة فيها قبل الحقن. للقيام بذلك ، ضع جزءا واحدا من طبق 35 ملم داخل طبق بتري 100 ملم لعمل طاولة تضيف مجففا ، صحيحا ، وهو عبارة عن كبريتات الكالسيوم اللامائية حوله بحيث لا يكون ارتفاع المجفف أعلى من الطاولة والغطاء.
لبدء تحضير الأجنة ، أولا ، قم بجمعها من قفص البحيرة عن طريق تغيير طبق عصير العنب بالخميرة كل ساعة ، يجب تصوير الأجنة بعد حوالي ساعتين من بدء الجمع. لتحضير زلة الغطاء ، ضعها على جانب واحد من المجهر ، وحرك الزوايا الأربع ولصقها لأسفل حتى لا تتحرك. باستخدام قضيب قطني مائل ، ضع طبقة واحدة من غراء السباعي في خط على زلة الغطاء.
يجب ألا يكون الغراء لزجا ويجب أن يجف في بضع ثوان. إذا كانت سميكة جدا ، أضف المزيد من الهبتان. أخيرا ، ضع قطعة من الشريط اللاصق المزدوج على الشريحة بجوار الغطاء.
انزلق بفرشاة مبللة. التقط الأجنة بعناية من طبق عصير العنب وضعها على الشريط اللاصق المزدوج على الشريحة. بعد ذلك ، استخدم نصف الملقط لدحرجة الأجنة فوق الشريط اللاصق المزدوج حتى ينفتح الكوريون.
التقط الجنين عن طريق لفه برفق فوق الكوريان حتى يلتصق بالملاقط وضعه على غراء السباعي على الغطاء. انزلق مع الجانب الطويل من الجنين الموازي للجانب الطويل من زلة الغطاء. ضع 10 إلى 20 جنينا في صف واحد.
قم بإزالة زلة الغطاء وضعها في حجرة التجفيف لمدة ثلاث إلى ثماني دقائق. يعتمد الوقت على الرطوبة المحلية والكمية المراد حقنها. بعد ذلك ، ضع زلة الغطاء على غرفة معدنية مع شحم مفرغ من الهواء.
أخيرا ، قم بتغطية الأجنة بزيت هالة الكربون لتجنب المزيد من الجفاف. الأجنة جاهزة الآن للحقن. أولا ، أوجد الأجنة تحت هدف 16 ×.
حرك الأجنة بعيدا وابحث عن الإبرة دون تحريك المستوى البؤري. قم بتوسيط الإبرة وحركها لأعلى دون تحريكها في اتجاه X أو Y. لفتح الإبرة ، ضع حافة زلة الغطاء في مجال الرؤية ، ولكن ليس حيث ستكون الإبرة.
وخفض الإبرة إلى نفس المستوى البؤري. حرك زلة الغطاء بحذر شديد حتى تصطدم بالإبرة وتفتحها برفق. حرك الإبرة لأعلى.
الآن اجعل الأجنة في العرض. اخفض الإبرة في الزيت ، وتأكد من الحصول على قطرات سائلة لطيفة من الإبرة. حرك الجنين بثبات إلى الإبرة ، وحقن قطرة في الجنين ، ثم حرك الجنين بعيدا.
بعد حقنجميع الأجنة ، تكون جاهزة للمراقبة على مجهر متحد البؤر بهدف 60 أو 100 ×. يجب أن يبدو الجنين الضابط مثل الجنين الموجود في هذا الفيلم. هذا جنين يعبر عن توبولين GFP و RFP هيستون تم تصويره بهدف 100 x على مجهر متحد البؤر للقرص الدوار.
الوقت الإجمالي المعروض هو ثماني دقائق. قطع المسافة من القطب إلى القطب قابلة للتكرار للغاية وهي مقياس موثوق به للنجاح في أجنة التحكم. يجب أن تبدو مثل تلك الموضحة هنا للدورات من 11 إلى 13.
يظهر في هذا الفيلم جنين تحكم آخر. هذا واحد يعبر عن KLP 61 FGFP ويتم حقنه ب r Domine tubulin. تم تصوير هذا أيضا بهدف 100 × على قرص دوار ، والوقت الإجمالي سبع دقائق.
تم الحصول على هذا الفيلم مباشرة بعد الحقن المجهري ، ويظهر التدرج في تركيز r دومين توبولين بوضوح في بداية الفيلم. يمكن استخدام هذه الأجنة لدراسة تثبيط Klp 61 F بعد الحقن المجهري للجسم المضاد Klp 61 F. يمكننا أن نرى فقدان Klp 61 FGFP من المغازل.
لقد أوضحنا لك للتو كيفية حقن الأجنة الجراحية ذبابة الفاكهة الدقيقة. عند القيام بهذا الإجراء ، من المهم أن تتذكر إجراء الضوابط ، وممارسة حقن المخزن المؤقت أو الروتين وحده ، والتأكد من استمرار الانقسام بشكل طبيعي من خلال الخلوي. بمجرد أن تكون جميع الحقن الخاصة بك موثوقة ولا تسبب ضررا ، يمكنك حقن مثبط ودراسة تأثير هذا التثبيط المعين.
هذا كل شيء. شكرا على المشاهدة ونتمنى لك السعادة في تجاربك.
اعرض النص الكامل واحصل على الوصول إلى آلاف الفيديوهات العلمية
يصف هذا البروتوكول استخدام حقن المجهري والتصوير عالي الدقة في جنين الدروسوفايلا الميلينوجاستر المتناسق لدراسة الانقسام الميتوزي. يتضمن الإجراء مناولة دقيقة للجنين لضمان نجاح التصوير والتحليل.
This protocol enables functional interrogation of mitotic proteins in a rapid, synchronous in vivo system, supporting target validation through phenotypic readouts of protein inhibition. The syncytial Drosophila embryo provides a disease-relevant system for mechanistic de-risking of mitotic targets, allowing assessment of protein function prior to lead identification. Quantitative imaging of spindle dynamics offers predictive confidence in target essentiality and pathway involvement.
The method fits within early discovery to validate mitotic targets before assay development and lead identification stages, leveraging in vivo functionality.