Name: الحبل الشوكي الكهربية (فيديو) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-01-18T16:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 59 s
Description: تعلم تقنية استئصال الصفيحة البطنية لعزل الحبل الشوكي في فئران حديثة الولادة. يوضح هذا الأسلوب كيفية تثبيت الحبل الشوكي بالأقطاب الكهربائية لتسجيل النشاط العصبي بدقة.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

صامويل فاف وهو أستاذ في مختبرات التعبير الجيني في معهد سالك للدراسات البيولوجية ومحقق في معهد هوارد هيوز الطبي. وأيد هذا العمل من قبل كريستوفر ودانا ريف مؤسسة. قدم جو Belcovson ، Schnoeker كينت ومايك سوليفان في الموارد الوسائط المتعددة في معهد سولك المساعدة في التصوير والتحرير.

1. إعداد الاصطناعي السائل النخاعي (aCSF) 1. نحن نستعد لأول مرة 2L بمخزون 10X من دون aCSF المغنيسيوم أو الكالسيوم. الكواشف المدرجة في millimolar. الأرقام تشير إلى كتالوج سيغما / الدريتش. <table border="1" cellpadding="0" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td colspan="4"> 2 ليتر aCSF 10X (بدون المغنيسيوم أو الكالسيوم) </td></tr><tr><td> الكاشف </td><td> ملي </td><td> g/2L </td><td> فهرس </td></tr><tr><td> بوكل </td><td> 40 </td><td> 5.96 </td><td> P - 9333 </td></tr><tr><td> كلوريد الصوديوم </td><td> 1280 </td><td> 149.61 </td><td> S - 7653 </td></tr><tr><td> NaHCO 3 </td><td> 210 </td><td> 35.28 </td><td> S - 6297 </td></tr><tr><td> ناه 2 ص 4 </td><td> 5 </td><td> 1.38 </td><td> S - 9638 </td></tr><tr><td> جلوكوز </td><td> 300 </td><td> 108.12 </td><td> D - 9434 </td></tr><tr><td colspan="4"> إضافة الماء المقطر ل2L </td></tr></tbody></table> سوف نقوم أيضا بإعداد حلول 1M من MgSO 4 و CaCl 2 في 50mL المياه للسماح بإجراء تعديلات في molarity من التجربة والتجربة لضمان الكالسيوم يبقى في الحل. <table border="1" cellpadding="0" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td colspan="4"> 1M الكالسيوم والمغنيسيوم مخزون </td></tr><tr><td> الكاشف </td><td> M </td><td> g/50mL </td><td> فهرس </td></tr><tr><td> CaCl 2 </td><td> 1 </td><td> 7.35 </td><td> C - 5080 </td></tr><tr><td> MgSO 4 </td><td> 1 </td><td> 12.33 </td><td> M - 5921 </td></tr></tbody></table> يجب أن يكون الحل aCSF بالغاز مع كربوجين (95 ٪ / O2 CO2 5 ٪) لخفض درجة الحموضة قبل إضافة الكالسيوم أو الكالسيوم سوف يعجل. <table border="1" cellpadding="0" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td colspan="2"> 1 ليتر aCSF </td></tr><tr><td> الكاشف </td><td> حجم </td></tr><tr><td> 10X aCSF </td><td> 100ML </td></tr><tr><td> 1M CaCl 2 </td><td> 1 مل (تشريح) 2mL (تسجيل) </td></tr><tr><td> 1M MgSO 4 </td><td> 1 مل </td></tr><tr><td colspan="2"> إضافة ~ 800 مل من الماء المقطر ، والغاز مع كربوجين لمدة 2 دقيقة قبل ان يضيف الكالسيوم </td></tr><tr><td colspan="2"> إضافة الماء المقطر ل1L. </td></tr></tbody></table> يجب شطف مضخات وأنابيب وأطباق تشريح قبل وبعد الاستخدام. تشريح بينما تشريح ، ينبغي 1MM الكالسيوم aCSF بالغاز باستمرار مع كربوجين. ويمكن تحويله إلى aCSF من زجاجة إلى طبق تشريح وضخها من الطبق تشريح لزجاجة أو إرسالها إلى النفايات. نستخدم الاستومر (Sylgard ، داو كورننغ) طبق المغلفة لإجراء تشريح. غير مقطوعة الرأس بسرعة الماوس الوليد مع مقص حاد ، والمصنوعة من شق طريق المقص الصدر والبطن البطني. ومن ثم ينتزع منه الحيوان. يتم شطف الماوس مع aCSF ينتزع منه. ثم يعلق هو الحيوان إلى الطبق مع دبابيس تشريح الحشرات من خلال إدراج الأمامية وعند قاعدة الذيل. تتم إزالة العمود الفقري عن طريق إجراء الثقب البطني. يقام في العمود الفقري مع ملقط صغير ويتم إدراج شفرة واحدة من مقص صغير الظهرية فورا إلى العمود الفقري العظمي. هو قطع الصفيحة على جانب واحد ثم الآخر بلطف بينما رفع العمود الفقري عظمي. ويتم هذا خارج عن طول العمود الفقري. تتم إزالة الحبل الشوكي عن طريق قطع على طول جانبي العمود الفقري لقطع جذور العصب الشوكي والسحايا المحيطة قطع الحبل الشوكي. قطعنا على الجانبين الأيسر والأيمن ، ثم قص علينا السحايا تعلق على الجانب الظهري في النخاع الشوكي لاطلاق سراحه. ويعلق ثم سلك معزول إلى الطبق بالقرب من مدخل aCSF جيدة لإعطاء الأوكسجين إذا تشريح الحيوانات إضافية. ثم يتم نقل النخاع الشوكي لعزل طبق تسجيل باستخدام ملعقة صغيرة أو الملعقة. نحن هنا يروي إعداد مع الاوكسيجين aCSF 2mm والكالسيوم. وعلقت الحبل الشوكي إلى الطبق الاستومر micromanipulators المغلفة وتستخدم لنقل خارج الخلية ، شفط الجذر كله أقطاب بالقرب من الجذور. عند طرف القطب هو قرب نهاية الجذر الحر ، يتم تطبيق الشفط اللطيف لرسم الجذرية في القطب الشفط. ويمكن تكرار هذه العملية لتسجيل جذور عدة في وقت واحد. <img src="/files/ftp_upload/1660/1660fig1.jpg" alt="الشكل 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="الشكل 1"> الشكل 1. قطع الرأس ونزع الأحشاء ألف. بسرعة بقطع رأس الفأر مع مقص حاد. ويمكن تحقيق مساهمات أكبر أو أقل من جذع الدماغ اعتمادا على خفض مستوى. باء مكان واحد شفرة المقص في افتتاح التجويف الصدري إنشاؤها بواسطة قطع الرأس. فتح الصدر والبطن بطني الى قاعدة الذيل. إزالة الأحشاء وشطف مع aCSF. <img src="/files/ftp_upload/1660/1660fig2.jpg" alt="الشكل 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="الشكل 2"> الشكل 2. إزالة ألف عمود. الشوكي إدراج شفرة المقص الأيسر للفي المسافة بين العمود الفقري والنخاع الشوكي للحق وقطع الحبل الشوكي من خلال زرع عظام البطني للنخاع. ثم أدخل شفرة المقص الأيمن من في المسافة بين العمود الفقري والنخاع الشوكي الى اليسار من الحبل الشوكي وقطع. باء كرر هذه العملية مع تطبيق الجر لطيف إلى العمود الفقري. الحرص على عدم ثقب في النخاع الشوكي من خلال عقد مقص بزاوية منخفضة. <img src="/files/ftp_upload/1660/1660fig3.jpg" alt="الشكل 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="الشكل 3"> الشكل 3. إزالة الحبل الشوكي ألف. إدراج شفرة المقص الأيسر للفي الفضاء بين النخاع الشوكي والعظام إلى اليمين من الحبل الشوكي والجذور من خلال قطع الحبل الشوكي والسحايا زرع الوحشي للنخاع. ثم أدخل شفرة المقص الأيمن من في الفضاء بين النخاع الشوكي والعظام وإلى اليسار من الحبل الشوكي والجذور من خلال قطع الحبل الشوكي والسحايا زرع الوحشي للنخاع. باء وأخيرا ، ورفع الحبل بلطف منقاري وقطع الحبل السري الذي يربط بين السحايا الظهرية للصفيحة. مرة أخرى اتخاذ الحرص على عدم ثقب في النخاع الشوكي من خلال عقد مقص بزاوية منخفضة. لا تقطع جذور قريبة جدا من النخاع الشوكي.

<ol><li>Myers, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cholinergic+input+is+required+during+embryonic+development+to+mediate+proper+assembly+of+spinal+locomotor+circuits%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Cholinergic input is required during embryonic development to mediate proper assembly of spinal locomotor circuits.</a> Neuron. 46, 37-49 (2005).</li>
<li>Goulding, M., Pfaff, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+circuits+that+generate+simple+rhythmic+behaviors+in+vertebrates%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Development of circuits that generate simple rhythmic behaviors in vertebrates.</a> Curr Opin Neurobiol. 15 (1), 14-20 (2005).</li>
<li>Gallarda, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Segregation+of+axial+motor+and+sensory+pathways+via+heterotypic+trans-axonal+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Segregation of axial motor and sensory pathways via heterotypic trans-axonal signaling.</a> Science. 320, (2008).</li>
<li>Gosgnach, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((V1+spinal+neurons+regulate+the+speed+of+vertebrate+locomotor+outputs%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">V1 spinal neurons regulate the speed of vertebrate locomotor outputs.</a> Nature. 440 (7081), 215-219 (2006).</li>
<li>Lanuza, G. M., Gosgnach, S., Pierani, A., Jessell, T. M., Goulding, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+identification+of+spinal+interneurons+that+coordinate+left-right+locomotor+activity+necessary+for+walking+movements%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Genetic identification of spinal interneurons that coordinate left-right locomotor activity necessary for walking movements.</a> Neuron. 42 (3), 375-386 (2004).</li>
<li>Jiang, Z., Carlin, K. P., Brownstone, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+in+vitro+functionally+mature+mouse+spinal+cord+preparation+for+the+study+of+spinal+motor+networks%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">An in vitro functionally mature mouse spinal cord preparation for the study of spinal motor networks.</a> Brain Res. 816 (2), 493-499 (1999).</li>
<li>Ziskind-Conhaim, L., Gao, B. X., Hinckley, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ethanol+dual+modulatory+actions+on+spontaneous+postsynaptic+currents+in+spinal+motoneurons%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Ethanol dual modulatory actions on spontaneous postsynaptic currents in spinal motoneurons.</a> J Neurophysiol. 89 (2), 806-813 (2003).</li>
<li>Tabak, J., Rinzel, J., O'Donovan, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+activity-dependent+network+depression+in+the+expression+and+self-regulation+of+spontaneous+activity+in+the+developing+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The role of activity-dependent network depression in the expression and self-regulation of spontaneous activity in the developing spinal cord.</a> J Neurosci. 21 (22), 8966-8978 (2001).</li>
<li>Chub, N., Mentis, G. Z., O'Donovan, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chloride-sensitive+MEQ+fluorescence+in+chick+embryo+motoneurons+following+manipulations+of+chloride+and+during+spontaneous+network+activity%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Chloride-sensitive MEQ fluorescence in chick embryo motoneurons following manipulations of chloride and during spontaneous network activity.</a> J Neurophysiol. 95 (1), 323-330 (2006).</li>
</ol>

رعاية الحيوان<br /&gt;<br /أجريت&gt; التجارب على الحيوانات وفقا للمبادئ التوجيهية واللوائح التي وضعها معهد سولك للدراسات البيولوجية AIACUC.

المعزولة الحبل الشوكي الولدان يوفر طريقة الانقياد لدراسة الجهاز العصبي development1 النظام ، 2. داخل النخاع الشوكي القطني من القوارض حديثي الولادة ، يمكن أن الدوائر المركزية لتوليد نمط إنتاج تنقل الوهمية في وجود العصبية. هذا تحرك الوهمية يتكون من الزيادات في النشاط الإيقاعي ، رشقات نارية ، التي يتم إنتاجها في 0،2-0،5 هرتز. ويتم تنظيم هذه رشقات نارية لإنتاج التناوب بين اليمين واليسار على طول الحبل التناوب والمثنية الباسطة - (L2 المماثل بالنسبة إلى L5). وقد أظهرت العديد من الطفرات ا...

<table><tbody><tr><td>KCl</td><td></td><td>P-9333</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td></td><td>S-7653</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO&lt;sub&gt;3&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>S-6297</td><td></td></tr><tr><td>NaH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>S-9638</td><td></td></tr><tr><td>جلوكوز</td><td></td><td>D-9434</td><td></td></tr><tr><td>CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>C-5080</td><td></td></tr><tr><td>MgSO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>M-5921</td><td></td></tr><tr><td>مقص كبير</td><td>Fine Science Tools</td><td>14070-12</td><td></td></tr><tr><td>ملقط</td><td>Fine Science Tools</td><td>11050-10</td><td></td></tr><tr><td>مقص دقيق</td><td>Fine Science Tools</td><td>15000-10</td><td></td></tr><tr><td>دبابيس حشرات</td><td>Fine Science Tools</td><td>26002-10</td><td></td></tr><tr><td>Sylgard 184 (Dow-Corning)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>دورق قياسي سعة 1L</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>دورق قياسي سعة 100mL</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

الحبل الشوكي الكهربية

Spinal Cord Electrophysiology

الحبل الشوكي الماوس الولدان هو نموذج لدراسة وضع circuitries العصبي الحركي والحركة. نحن لشرح تشريح النخاع الشوكي وإعداد حمام تسجيل الاصطناعية المستخدمة في السائل النخاعي الدراسات الحركي. تشريح مرة واحدة ، يمكن أن يعلق الحبل الشوكي جذور الاعصاب الاماميه الى القطب التسجيل لتسجيل الإشارات الكهربية من الدوائر نمط توليد مركزية داخل الحبل القطني.

مظاهرة للعزلة من الحبل الشوكي لفأر الولدان الدراسات الكهربية.

يعد الحبل الشوكي للفأر حديث الولادة نموذجاً لدراسة تطور الدوائر العصبية والحركة الموضعية. ونحن نوضح في هذا البحث الحبل الشوكي...

حسناً. مرحباً، اسمي آلان ماير، وأنا مساعد باحث في مختبر faf في معهد سالك. سأوضح لكم اليوم كيفية إجراء عملية استئصال صفيحة فقارية بطنية لعزل الحبل الشوكي للفأر، كما سأوضح لكم كيفية توصيل الحبل الشوكي بقطب كهربائي. لتسجيل نشاطه العصبي، ستحتاج إلى تحضير محلولين للحبل الشوكي، أحدهما لعملية التشريح، والآخر لحمام التسجيل.سيكون الفرق الوحيد بين المحلولين هو تركيز كلوريد الكالسيوم. ستحتاج أولاً إلى تحضير محلول بتركيز 10 X-A-C-S-F، وهذا يتطلب الكواشف المدرجة أدناه.ابدأ بإضافة 100 milliliters من 10 X-A-C-S-F إلى دورق حجمي سعة لتر واحد. بعد ذلك، املأ الدورق بالماء، مع ترك مساحة كافية لتجنب الفيضان. عند تمرير الغاز، تكون المحاليل بتركيز غازي 5%CO2 و 95%O2.لخفض الرقم الهيدروجيني (pH) وأكسجة المحلول، أضف 1 mL من كبريتات المغنيسيوم بتركيز 1 M. بعد ذلك، أضف 1 mL من محلول كلوريد الكالسيوم بتركيز 1 M إلى محلول التشريح، وأضف 2 mL من كلوريد الكالسيوم بتركيز 1 M إلى محلول التسجيل. يمكن استخدام الفئران من عمر E 16.5 إلى P 4 في هذه التجارب.ابدأ بتشريح الفأر من خلال قطع الرأس بسرعة باستخدام مقص حاد. بعد ذلك، قم بالقص على طول الخط الناصفي البطني حتى تصل إلى الذيل. ثم استخدم الملقط لإفراغ أحشاء الفأر، واغسلها باستخدام محلول A CSF.استخدم سائل A CSF الذي يحتوي على كلوريد الكالسيوم بتركيز 1 ملي مولار لإجراء عملية التشريح. ضع الفأر في طبق التشريح وثبته بوضع دبابيس عند قوائمه الأربع ودبوس عند قاعدة الذيل. سيكون هدفنا في هذا الجزء هو عزل الحبل الشوكي عن طريق القص على طول الخط المنقط الأحمر، لفصل العمود الفقري عن الصفائح التي تغلف الحبل الشوكي.سيسمح لك ذلك بكشف النخاع الشوكي. بعد ذلك، تتبع الخط لقص السحايا والجذور الشوكية، لتحرير النخاع الشوكي. حدد موقع العمود الفقري واستخدم إحدى اليدين مع الملقط للإمساك بالعمود الفقري بإحكام، واليد الأخرى مع مقص صغير.لإزالة النخاع الشوكي، حافظ على مقص التشريح بزاوية منخفضة. ولتجنب ثقب النخاع بأطراف المقص، سنقوم الآن بتشريح النخاع الشوكي. مع اتباع الخط الأحمر، قم بقص السحايا والجذور الشوكية.لإزالة الحبل الشوكي، يمكنك القص على طول أي من جانبي الحبل ثم القص على طول الخط الناصف البطني. ومن المهم إبقاء المقص بزاوية منخفضة لتجنب ثقب الحبل الشوكي. كما يجب تجنب قص الجذور بالقرب الشديد من الحبل الشوكي.بعد ذلك، قم بنقل الحبل الشوكي إلى حمام التسجيل ووصّل الأقطاب الكهربائية بالجذور الشوكية. ضع القطب الكهربائي بالقرب من الجذر، ثم استخدم الشفط لسحب العصب برفق إلى داخل القطب.شكرًا لكم على المشاهدة، وآمل أن يكون هذا الفيديو مفيدًا في تجاربكم المستقبلية.

Research

JoVE Journal

Biology

علم الأحياء

مظاهرة للتصنيع واستخدام إلكترود شفط خارج الخلية المستخدمة لقياس التسجيلات الكهربية من الحبال القوارض الولدان...

الحبل الشوكي الكهربية ثانيا : خارج الخلية التصنيع الكهربائي شفط

يوضح الفيديو التجديد الوظيفي للوصلات النخاعية باستخدام مقايسة قائمة على مصفوفة متعددة الأقطاب الكهربائية (MEA). توضع شرائح الحبل الشوكي على منطقة الشرق الأوسط وأفريقيا ويسمح لها بالاندماج. يتم فصل الشرائح المنصهرة ميكانيكيا عن طريق إنشاء آفة ، مما يحفز الخلايا العصبية النخاعية على النمو فوق الآفة وربط الشرائح. يتم تقييم النشاط الكهربائي للشرائح لتحديد تجديد التوصيلات الوظيفية.

دراسة تجديد الوصلات الوظيفية بين شرائح الحبل الشوكي باستخدام مصفوفة متعددة الأقطاب الكهربائية

يعرض هذا الفيديو تسجيلات الفيزيولوجية الكهربية من الثقافات العضوية المشتركة لشرائح الحبل الشوكي ، تم التقاطها باستخدام مصفوفة متعددة الأقطاب الكهربائية أو جهاز MEA. تقوم هذه التسجيلات بتقييم تجديد الخلايا العصبية بين الشرائح. يؤكد النشاط الكهربائي المتزامن الذي لوحظ التجديد العصبي الناجح.

التسجيلات الفيزيولوجية الكهربية لتقييم التجديدات العصبية في شرائح الحبل الشوكي المزروعة المشتركة

GABAergic تثبيط قبل المشبكي هو آلية المثبطة قوية في الحبل الشوكي المهم للمحرك والتكامل الحسي في إشارة الشبكات الحبل الشوكي. ويمكن قياس الكامنة وارد الأولية الاستقطاب عن طريق تسجيل إمكانيات الجذر الظهري (الحزب الثورى الديمقراطى). نحن هنا يبرهن على وجود طريقة في الجسم الحي تسجيل DRP في الفئران.

قياس العمود الفقري قبل المشبكي في الفئران عن طريق تثبيط الظهرية جذر تسجيل المحتملة<em&gt; في فيفو</em

يقع محرك التنفس المركزي في جذع الدماغ. يتم تسجيل الإخراج الحركي التنفسي التلقائي من جذع الدماغ والحبل الشوكي المعزول عن طريق وضع قطب كهربائي على الجذر البطني الرابع. هذا النهج التجريبي ذو قيمة للتحقيقات الدوائية أو تقييم تحديات الجهاز التنفسي والتلاعب الجيني بالسلوك الحركي الإيقاعي.

الكهربية المعزولة على الاستعدادات الحبل الشوكي-جذع الدماغ من القوارض الوليد يسمح الشبكات العصبية التنفسية تسجيل الإخراج

هنا نقدم البروتوكول الذي يقوم على شرائح النخاع الشوكي مثقف على صفائف متعدد القطب لدراسة تجديد الوظيفي للاتصالات نخاعي مخصوص في المختبر.

التحقيق التجديد الوظيفي في الحبل الشوكي عضوي النمط المشارك الثقافات نمت على صفائف متعدد القطب

وتبين لنا كيفية تحضير شرائح مائلة من الحبل الشوكي في الفئران الشابة. هذا الإعداد يسمح لتحفيز الجذور البطنية.

لإعداد المائل الحبل الشوكي شرائح لبطني الجذر تحفيز

توضح هذه المخطوطة طرق التسجيلات الكهربية من الخلايا العصبية في العمود الفقري من الأجنة الزرد واليرقات. إعداد يحافظ على الخلايا العصبية في الموقع وغالبا ما ينطوي على الحد الأدنى تشريح. تسمح هذه الطرق لدراسة الكهربية من مجموعة متنوعة من الخلايا العصبية في العمود الفقري، من الأولي للاكتساب استثارة الكهربائية من خلال مراحل اليرقات في وقت مبكر.

الزرد<em&gt; في الموقع</em&gt; الحبل الشوكي التحضير للتسجيلات الكهربية من العمود الفقري الحسية والحركية العصبية

يتم تحديد الاستخدام المشترك لتكنولوجيا مصفوفة microelectrode والتحفيز الكيميائي الناجم عن 4-aminopyridine للتحقيق في نشاط مسبب للألم على مستوى الشبكة في القرن الظهري للحبل الشوكي.

تسجيل نشاط الشبكة في الدوائر الحساسة للألم في العمود الفقري باستخدام صفائف الأقطاب الدقيقة

يصف هذا البروتوكول طريقة تستخدم مشبك رقعة لدراسة الاستجابات الكهربائية للخلايا العصبية الحركية لتحفيز الحبل الشوكي (SCS) بدقة زمانية مكانية عالية ، والتي يمكن أن تساعد الباحثين على تحسين مهاراتهم في فصل الحبل الشوكي والحفاظ على صلاحية الخلية في وقت واحد.

التحضير خارج الجسم الحي لشريحة الحبل الشوكي لتسجيل المشبك التصحيحي للخلية الكاملة في الخلايا العصبية الحركية أثناء تحفيز الحبل الشوكي

نصف بروتوكولا للتسجيل خارج الخلية متعددة القنوات للعمود الفقري جنبا إلى جنب مع تسجيل وظائف القلب وتحليل الخلايا العصبية للقرن الظهري الشوكي المغلق بالقلب. توفر هذه الطريقة إطارا متزامنا زمنيا لدراسة آليات العمود الفقري الكامنة وراء التغيرات الوظيفية الصدرية الحشوية الناجمة عن الوخز بالإبر.

دراسة ملامح الترميز للتحفيز الجسدي على الاستجابات العصبية المقفلة بالقلب في القرن الظهري الشوكي للفئران

تعلم تقنية استئصال الصفيحة البطنية لعزل الحبل الشوكي في فئران حديثة الولادة. يوضح هذا الأسلوب كيفية تثبيت الحبل الشوكي بالأقطاب الكهربائية لتسجيل النشاط العصبي بدقة.

الحبل الشوكي الكهربية

استكشف المزيد من الفيديوهات