Name: إعداد الأوتار ذيل فأر النشاط الحيوي للدراسات وMechanobiological (فيديو) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-07-30T17:30:00.000+00:00
Duration: 15 min 12 s
Description: تعلم إعداد أوتار ذيل الفئران للدراسات البيوميكانيكية والميكانيكية الحيوية. يوضح هذا الفيديو طرق استخراج الأنسجة وقياس المساحة العرضية وتحميلها في غرفة المفاعل الحيوي.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

وقد أيد هذا المقال من قبل # 299280 NSERC غرانت ، كما IRSST على منحة لالوالد زاي وFRSQ كما طالب بمنح البحوث الجامعية لسانسسير م. نشكر Yoan يميو - Laneville لأداء التلاعب سجلت على شريط فيديو.

<ol><li>Bennett, M. B., Ker, R., Dimery, N., Alexander, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+properties+of+various+mammalian+tendons%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Zool.+Lond%22%5BJournal%5D)">Mechanical properties of various mammalian tendons.</a> J. Zool. Lond. A209, 537-548 (1986).</li>
<li>Dupuis, D. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22D%C3%A9shydratation+de+matrices+collag%C3%A9niques+reconstruites+in+vitro%3A+effets+sur+les+propri%C3%A9t%C3%A9s+m%C3%A9caniques+et+histologiques+%5B%5D%22">Déshydratation de matrices collagéniques reconstruites in vitro: effets sur les propriétés mécaniques et histologiques [dissertation]</a>. , Québec, Université Laval. Québec. 114-114 (1981).</li>
<li>Haut, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Age-dependent+influence+of+strain+rate+on+the+tensile+failure+of+rat+tail+tendon%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Age-dependent influence of strain rate on the tensile failure of rat tail tendon.</a> Journal of Biomechanical Engineering. 105, 296-299 (1983).</li>
<li>Huppé, N., Lessard, J. -L., Langelier, E. A Bioreactor Design for the Mechanobiological Study of Soft Tissue Damage and Repair in Conditions that Provide the Best Approximation of Actual Use. 31st Canadian Medical and Biological Engineering Conference, 2008 Jun 11-12, Montreal, Canada, , Canadian Medical and Biological Engineering Society. (1985).</li>
<li>Langelier, E., Dupuis, D., Guillot, M., Goulet, F. &amp, Rancourt, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cross-sectional+profiles+and+volume+reconstructions+of+soft+tissues+using+laser+beam+measurements%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomech+Eng%22%5BJournal%5D)">Cross-sectional profiles and volume reconstructions of soft tissues using laser beam measurements.</a> J Biomech Eng. 126, 796-802 (2004).</li>
<li>Lee, T. Q., Woo, S. L. -Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+method+for+determining+cross-sectional+shape+and+area+of+soft+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomech+Eng%22%5BJournal%5D)">A new method for determining cross-sectional shape and area of soft tissues.</a> J Biomech Eng. 110, 110-114 (1988).</li>
<li>Parent, G., Cyr, M., Cousineau-Pelletier, P., Desbiens-Blais, F. &amp, Langelier, E. Current Techniques for the Evaluation of Cross-Sectional Area in Rat Tail Tendons Generate Significant Errors. 31st Canadian Medical and Biological Engineering Conference, 2008 Jun 11-12, Montreal, Canada, , Canadian Medical and Biological Engineering Society. (1985).</li>
</ol>

الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

من خلال تطبيق هذه الإجراءات التجريبية ، يمكننا إجراء مجموعة واسعة من الدراسات في المختبر على هذا النوع من الأنسجة. وعلى سبيل المثال ، أجريت دراسة على تنكس النسيج بها تطبيق التحفيز تحت لRTTs لمدة عشرة أيام. كل يوم ، وقمنا بتقييم الخصائص الميكانيكية في الأنسجة غير مدمرة الاسترخاء اختبارات الإجهاد. في النهاية ، كنا قادرين على مراقبة RTT اختلاف الضغط وبالتالي تحليل تطور الخصائص الميكانيكية. <img src="/files/f...

<table><tbody><tr><td>D-PBS </td><td>كاشف</td><td>Wisent Inc.</td><td>311-410-CL</td><td>محلول ملحي</td></tr><tr><td>Glucose </td><td>كاشف</td><td>Wisent Inc.</td><td>609-037-EL</td><td>محلول ملحي&lt;br/&gt;1g/L</td></tr><tr><td>Antibiotics-antimycotics </td><td>كاشف</td><td>Invitrogen</td><td>15240-062</td><td>محلول ملحي&lt;br/&gt;1%</td></tr><tr><td>DMEM</td><td>كاشف</td><td>Invitrogen</td><td>12800-017</td><td>محلول زراعة</td></tr><tr><td>Sodium Bicarbonate</td><td>كاشف</td><td>Wisent Inc.</td><td>600-105-CG</td><td>محلول زراعة&lt;br/&gt;3.7g/L</td></tr><tr><td>FBS</td><td>كاشف</td><td>Wisent Inc.</td><td>090150</td><td>محلول زراعة&lt;br/&gt;10%</td></tr><tr><td>Antibiotics-antimycotics</td><td>كاشف</td><td>Invitrogen</td><td>15240-062</td><td>محلول زراعة&lt;br/&gt;1%</td></tr><tr><td>Optic Micrometer</td><td>أداة</td><td>صنع خاص</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Manipulation plate</td><td>أداة</td><td>صنع خاص</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bioreactor chamber</td><td>أداة</td><td>صنع خاص</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

إعداد الأوتار ذيل فأر النشاط الحيوي للدراسات وmechanobiological

Preparation of Rat Tail Tendons for Biomechanical and Mechanobiological Studies

الأوتار ذيل فأر (RTTs) هي نموذج مشترك البيولوجية المستخدمة في الدراسات التجريبية في المختبر في مجال علم وظائف الأعضاء ووتر tendinopathy. العمل مع تلك الأنسجة يشكل تحديا لأنها هشة للغاية ، وحتى الآن لم يكن هناك بروتوكول مفصلة بدقة عن عزلتهم. مواجهة هذه التحديات ، قمنا بتطوير الأساليب والأدوات اللازمة لتسهيل التلاعب والسيطرة RTTs الأنسجة الجدوى ، والعقم والنزاهة. توضح هذه المقالة الإجراءات التجريبية التي استخدمت في إعداد دراسات عن RTTs النشاط الحيوي وmechanobiological. وينقسم عملنا إلى أربع خطوات رئيسية : الاستخراج ، مستعرضة قياس المجال ، والشطف والتحميل في غرفة مفاعل حيوي. في كل خطوة ، وتعرض جميع الاجراءات والمواد والتلاعب في التفاصيل بحيث يمكن أن تتكرر بسهولة. وعلاوة على ذلك ، تعرض أدوات محددة وضعت : لوحة التلاعب المستخدمة لعزل RTTs ، وهو ميكرومتر البصري إلى موقف الأنسجة خلال قياس مساحة المقطع العرضي ، ونظام رسو إرفاق RTTs على مفاعل حيوي. أخيرا ، نحن تصف النتائج التي تم الحصول عليها بعد عدة اختبارات للتحقق من وسائلنا. جدوى ، والعقم والنزاهة التقييمات تثبت أن إجراءات صارمة بما فيه الكفاية لدينا هي للتلاعب من الأنسجة الهشة مثل الأوتار ذيل الفئران.

توضح هذه المقالة الإجراءات التجريبية التي استخدمت في إعداد الأوتار ذيل فأر النشاط الحيوي للدراسات وmechanobiological. وأظهرت العديد من الميزات من الخطوات الرئيسية في إعداد وبداية مع الاستخراج ، مستعرضة قياس المجال ، والشطف والتحميل في غرفة مفاعل حيوي.

إعداد الأوتار ذيل فأر النشاط الحيوي للدراسات وMechanobiological

تعد أوتار ذيل الجرذ (RTTs) نموذجاً بيولوجياً شائعاً يُستخدم في الدراسات التجريبية المختبرية في مجالات فيزيولوجيا الأوتار واعتلال الأوتار. إن العمل...

يحتوي الفيديو الذي ستشاهده الآن على الإجراءات التجريبية المستخدمة لعزل وتحضير وتر ذيل الجرذ لإجراء دراسات ميكانيكية حيوية وبيولوجية ميكانيكية. الغرض من هذا المقال هو استعراض الطرق والأدوات التي تم تطويرها وتحسينها من أجل الحفاظ على حيوية الأنسجة وعقامتها وسلامتها أثناء إجراء عملية التحضير. سنناقش عدة ميزات تتعلق بالخطوات الرئيسية للتحضير، بدءاً من عملية الاستخراج، تليها قياس مساحة المقطع العرضي، ثم الشطف، وأخيراً التحميل في غرفة المفاعل الحيوي.لنبدأ العمل. تعد عملية الاستخلاص الخطوة الأولى من التحضير وذلك من أجل الحفاظ على حيوية الخلايا. وتُجرى جميع عمليات المناولة في محلول seline بارد.بعد تخدير الجرذ، يتم استئصال الذيل وشطفه بـ 70% ethanol ونقله إلى طبق يحتوي على محلول خلوي ويُحفظ على الثلج. ولتسهيل استخراج الوتر، يجب إزالة الجلد، مع مراعاة أننا نعمل على الأوتار البطنية.نظرًا لأنها أصغر حجمًا وأسهل في التعامل معها باستخدام معداتنا، يتم إجراء شق طولي على طول الجانب الظهري للذيل. ثم يتم التحقق من التوجيه الصحيح للذيل من خلال ملاحظة التشريح عند الطرف القريب. وكما نرى، يظهر الجانب البطني عددًا أكبر من الأوتار، ويمكن التأكد من وجود وعاء دموي من خلال قطرات الدم التي يتم الحصول عليها.عند الضغط برفق على الذيل، يتم إجراء الشق. يبدأ الشق من الطرف القريب وباستخدام مقص جراحي. يجب توخي الحذر عند التعامل مع الذيل من خلال الإمساك بأطرافه.عند اكتمال الشق، يتم إزالة الجلد بدءاً أيضاً من الطرف القريب باستخدام الأصابع أو الملقط. ومرة أخرى، يجب توخي الحذر عند التعامل مع الذيل من خلال أطرافه. بعد ذلك، يتم شطف الذيل في المحلول لإزالة الشعر والدم.يُنقل specimen بعد ذلك إلى طبق يحتوي على محلول طازج ويُحفظ على الثلج. في هذه المرحلة، يقوم الباحث بتغيير القفازات لكشف الوتر. ثم يتم استئصال الطرف القاصي للذيل بحيث يكون أقصر بفقرتين إلى ثلاث فقرات.تظهر الفقرات كحزم مرئية بين حزم الأوتار، ويمكن الشعور بها أيضاً عند تمرير الأصابع على طول الذيل. يُظهر الفحص بالمجهر الضوئي لمقطع عرضي تم إجراؤه على طول الفقرة أن هناك ست مجموعات مختلفة من الأوتار، حيث يتصل الوتر من كل مجموعة منها بالفقرة، ونحن نستخدم الأنسجة البطنية فقط.يتم سحب أربعة أوتار عند كل قطع، اثنان من المجموعات السفلية واثنان من المجموعات الجانبية. ولإجراء عملية الاستئصال، يمكنك استخدام مقص جراحي لقطع القرص بين الفقرات ومشرط على لوح تقطيع للأنسجة الرخوة. في هذه المرحلة، يمكن تمييز الجانب البطني من خلال وجود أوتار أكبر حجماً.بمجرد التحقق من التوجيه، تُستخرج الأوتار برفق من الطرف القاصي باستخدام الملقط؛ وعندما لا يمكن فصل المزيد من الأنسجة، يتم استئصال الذيل عند الكتف الفقري كما هو موضح سابقاً. بعد الاستخراج، تُغمر الأنسجة فوراً في المحلول، ومن خلال الإمساك بالطرفين، يُنقل الوتر إلى لوحة مناولة تحتوي أيضاً على محلول الخلايا، ويُستخدم الشريط اللاصق عليها لتحديد الطرف الداني. يظهر التحليل المجهري لمقطع طولي مصبوغ بـ h and e أنه من خلال استخدام هذه الطريقة البسيطة والمتكررة، فإن نسيج الوتر المستخرج يتميز بشبكة كولاجين مصطفة جيداً ومتراصة بكثافة.بعد المعالجة، وعندما تخضع الأنسجة لتحفيز ميكانيكي، فإننا نصف خصائصها الميكانيكية من خلال تحويل القوة الداخلية إلى إجهاد. لذلك، يجب علينا تقييم مساحة مقطعها العرضي. وللقيام بذلك، يتم إعادة بناء ملف تعريف العينة باستخدام مجهر ستيريو مجهز بكاميرا رقمية.تتم المحافظة على سلامة الأنسجة باستخدام هذه الطريقة نظراً لعدم تطبيق حمل الثلج أو الإجهاد عليها بشكل مباشر. وتقوم الكاميرا الرقمية بالتقاط صور لمسقط المستأجر عبر رؤية بزاوية 180 درجة. وضمن إطار مرجعي، تقوم خوارزمية المساعد البصري بتحديد مواقع الحواف العلوية والسفلية للعينة.بعد ذلك، تُستخدم خوارزمية بواسطة برنامج MATLAB لإجراء إعادة بناء المقطع العرضي. وقد صُمم ميكرومتر بصري للحفاظ على النسيج ضمن المنطقة البؤرية، حيث تكون الإسقاطات خارج هذه المنطقة غير واضحة، كما أن إعادة التركيز ستؤدي إلى إزاحة الإطار المرجعي المحلي.يشتمل الميكرومتر على حجرة قياس لمنع جفاف الأنسجة. ويضم نظامين لتحديد الموضع مع منصة دوارة تسمح بتدوير العينة، وجهازي تثبيت مصنوعين من أنابيب سيليكون مضغوطة مقابل ألوان العمود. أولاً، يتم ملء حجرة القياس بمحلول خلوي بارد حتى تغمر مداخل أنابيب السيليكون.بعد ذلك، يتم نقل رجل الفضاء إلى حجرة القياس باستخدام الملاقط من خلال الإمساك بأطرافه فقط. وباستخدام ماصة دقيقة الحجم، يتم سحب أطراف الأوتار عبر المقطع إلى داخل أنابيب السيليكون. ثم يتم إجراء عملية الشفط حتى يمتد الطرف إلى ما بعد ألوان العمود.بمجرد الانتهاء من كلا الجانبين، يتم إحكام ألوان العمود باستخدام مفتاح الرقبة لضغط الأنبوب. والآن بعد تثبيت الوتر، يتم تركيب الجهاز تحت مجهر ستيريو. ويمكن ملاحظة الوتر مباشرة من شاشة الكمبيوتر بتكبير قدره 105.لضمان الاتساق، يتم شد الوتر حتى تختفي الثنيات ولا تعد ملموسة، يليه تشويه إضافي بنسبة 0.4%. وبما أن العينة يتم تصويرها من الزاوية 0 إلى 170 درجة، فإن تحديد الموضع الأولي وضبط التركيز أمران ضروريان للحصول على صورة واضحة على كامل المحيط. وفي الواقع، يتم التقاط 18 صورة حيث يتم زيادة دوران العينة بمقدار 10 درجات بين كل مشهد والآخر.باستخدام هذه الطريقة، يمكن تقدير مساحة المقطع العرضي لوتر ذيل الجرذ دون إتلاف النسيج. وفي النهاية، يتم الحصول على إعادة بناء للمقطع العرضي بهامش خطأ يتراوح بين 0.5 إلى 2%. وبعد القياس، تُشطف الأنسجة لمنع التلوث الذي قد يكون حدث أثناء العمليات السابقة.توضع أطباق المناولة المعقمة التي تحتوي على محلول تثبيت طازج في الكابينة، بحيث يُستخدم أحدها لإجراء عملية الشطف بينما يستقبل الآخر الوتر الذي تم شطفه. يقوم الباحث بغسل قفازه بـ 70% ethanol قبل إدخال الوتر المستخلص في كابينة السلامة الحيوية. ومن خلال الإمساك بالأطراف فقط، يتم نقل الوتر بعناية من بئر إلى آخر.أخيراً، يتم نقله إلى لوح مناولة فردي يحتوي أيضاً على محلول خلوي معقم. وللتحقق من صحة البروتوكول، أجرينا اختبار الحيوية والعقم. أولاً، تم تقييم حيوية الخلايا باستخدام مجموعة اختبار السمية الخلوية للحيوية (live dead viability cytotoxicity kit) للخلايا الثديية.بعد استزراع لمدة 12 يومًا، تمت ملاحظة أغلبية عظمى من الخلايا الحية ذات الفلورة الخضراء، مما أكد نجاح إجراءات العزل في الحفاظ على الأنسجة الحية. ثم أُجريت فحوصات للتحقق من عدم تلوث المزارع المستخدمة؛ حيث تم صب الأوساط الغذائية على الآجار وحضنها لمدة 10 أيام، ولم يُلاحظ أي نمو بكتيري.تحققنا من تعقيم جميع عملياتنا. يستفيد نظام التثبيت المستخدم من مزايا تجفيف الأنسجة واستخدام الغراء للعينات الصغيرة مثل ذيل الجرذ والأوتار، حيث يتغلغل الغراء داخل النسيج. يتم تثبيت ذلك في جميع الوحدات الفرعية، بينما يعمل التجفيف على تعزيز الخواص الميكانيكية لتجنب حدوث أي تلوث إضافي.تُجرى جميع إجراءات التحميل داخل كابينة السلامة البيولوجية حيث تكون جميع الأدوات ومكونات الغرفة معقمة. ولإتمام عملية التحميل، يتم تثبيت غرفة المفاعل الحيوي على أداة تثبيت دقيقة. كما يتم ضبط ذراعين متحركين لاستقبال مثبتات الأوتار.يغلق غطاء الغرفة لمنع التلوث. أولاً، يتم وضع المراسِي على نهايات لوحة المناولة. يتم توسيط بكراتها مع المحور الطولي للأخدود وفوق الوتر.يتم بعد ذلك لف الوتر حول مرساة واحدة. تُدحرج المرساة بمقدار ثلاثة أرباع دورة تقريبًا بينما يظل جسم النسيج في المحلول. ومن خلال الإمساك بالطرف الحر، نضمن تثبيت النسيج بالمرساة.يتم بعد ذلك تكرار الإجراء نفسه للطرف الآخر. وبمجرد تثبيت كلا الجانبين، يتم لف أو فك المرابط بشكل متساوٍ حتى تصبح المسافة ستة سنتيمترات. وبين الطرفين، يتم وضع قطرتين بحجم 2.5 µL من ocreate على الجزء المجروح من الأوتار.يجب توخي الحذر عند إجراء عملية اللصق. ولتجنب وصول الغراء إلى المحلول الخلوي، يلزم الانتظار لمدة خمس دقائق على الأقل حتى يجف الغراء تماماً. وللتحقق من صحة البروتوكول الخاص بنا، أجرينا اختبارات للتأكد من تأثير الغراء وتجفيف نقطة التثبيت على حيوية الأنسجة.بعد مرور ساعتين، لاحظنا أن حالة الطرف لم تنتشر خارج النسيج. وفي الواقع، هناك حد لوني محدد بوضوح يميز الحدود بين الخلايا الميتة ذات الفلورة الحمراء الموجودة عند نقطة التثبيت وغالبية الخلايا الحية الخضراء في جسم النسيج. وفي هذه الأثناء، يتم ملء غرفة المفاعل الحيوي بوسط زرع جديد.بمجرد جفاف الجرح في جزء من الوتر، يتم إعادة ترطيبه باستخدام محلول الخلايا. ثم يتم نقل النسيج المثبت إلى الغرفة باستخدام ملقط. يتم إغلاق الغطاء لتجنب حدوث المزيد من التلوث.سيتم إزالة أداة تثبيت الموضع بمجرد تركيب الغرفة في المفاعل الحيوي. لقد استعرضنا للتو كيفية تحضير وتر ذيل الجرذ للدراسات الميكانيكية الحيوية والبيولوجية الميكانيكية. ومن خلال تطبيق هذه الإجراءات، يمكننا إجراء مجموعة واسعة من الدراسات المختبرية (in vitro) على هذه الأنسجة.على سبيل المثال، أُجريت دراسة حول تنكس الأنسجة عن طريق تطبيق التحفيز لمدة 10 أيام. وقمنا كل يوم بتقييم الأنسجة، والخصائص الميكانيكية، واختبار استرخاء الإجهاد غير التدميري. وفي النهاية، تمكنا من ملاحظة تباين الإجهاد.لقد قدمنا دليلاً على أن إجراءات العزل والتحضير الصارمة التي نتبعها تجعل من الممكن الحفاظ على حيوية الأنسجة وسلامتها. شكراً لمشاهدتكم ونتمنى لكم التوفيق في تجاربكم الخاصة.

preparation-rat-tail-tendons-for-biomechanical-mechanobiological

Research

JoVE Journal

Biology

علم الأحياء

هذا الفيديو يدل على إعداد الجراحية والإجراءات هناك حاجة لدراسة الاستجابات مقلص من الفئران الإنسي الساق إعداد...

إجراءات الجرذ<em&gt; في الموقع</em&gt; خصائص العضلات الهيكلية مقلص

وتستخدم Explants من المخ الأوسط نظام الدوبامين والمخطط في الكولاجين فحص مصفوفة...

تشريح والثقافة من الدوبامين والفأر Explants العقدة المخططة في ثلاثي الأبعاد فحوصات مصفوفة الكولاجين

نصف بروتوكول in vivo لقياس الانثناء الظهري للقدم بعد تحفيز العصب الشظوي وتقلص الحجرة الأمامية للطرف الخلفي للفئران. هذه القياسات هي أداة انتقالية لا غنى عنها لتقييم أمراض العضلات الهيكلية وأساليب هندسة الأنسجة لإصلاح العضلات وتجديدها.

تطبيقات<em&gt; في فيفو</em&gt; التجارب الفنية من الفئران قصبة الساق الأمامية لتقييم الأنسجة المهندسة وإصلاح العضلات والهيكل العظمي

ويصف هذا البروتوكول عملية التقييم لشفاء الأوتار في الفئران التي قد تم حقن البلازما الغنية متمكنة الصفائح الدموية (PRP) أو المحلول الملحي بعد إزالة جزء من وتر أخيل. يتم تقييم التقدم المحرز في شفاء الأربطة في العديد من النقاط الزمنية باستخدام أنواع مختلفة من التحليل.

آثار متمكنة من البلازما الغنية بالصفائح الدموية (PRP) على عملية الشفاء من الأوتار أخيل مقطعة للفئران: وصف منهجية

وتصف هذه الورقة في إعداد وتقييم الماغنيسيوم المستمدة من مصفوفة الخلايا الجذعية الوسيطة الحبل السري مع نموذج عيب وتر الرضفة ثنائية في الفئران. هذا النموذج كان مرتبطاً اعتلال مقبولة وكان وجدت للكشف عن الاختلافات بين الأوتار غير المعالجة والمعالجة، وبين المعالجتين اختبارها.

تقييم علاجات الخلايا الجذعية في نموذج إصابة وتر الرضفة ثنائية في الفئران

في هذه الورقة، نقدم بروتوكولا في المختبر وفي الموقع لإصلاح فجوة وتر تصل إلى 1.5 سم عن طريق ملئه بالكسب غير المشروع للكولاجين المهندس. تم تنفيذ ذلك عن طريق تطوير تقنية خياطة معدلة لأخذ الحمل الميكانيكي حتى ينضج الكسب غير المشروع في الأنسجة المضيفة.

تقنية خياطة تينورهافي جديدة مع الأنسجة المهندسة الكولاجين الكسب غير المشروع لإصلاح عيوب وتر كبير

يصف البروتوكول طرق اختبار نشاط الشد الفعالة والقابلة للتكرار لأوتار المريدين من خلال استخدام التركيبات المطبوعة ثلاثية الابعاد المخصصة المناسبة.

اختبار نشاط لأوتار المورين

يصف هذا البروتوكول تحضير الأنسجة العصبية الوركية الكاملة للفئران للتحفيز الكهروفسيولوجي خارج الجسم الحي وتسجيلها في حمام ملحي منظم بيئيا ومكون من مقصورتين.

تحضير العصب الوركي للفئران للفسيولوجيا العصبية خارج الجسم الحي

نقدم منصة تجريبية مخصصة وبروتوكول زراعة الأنسجة الذي يعيد إنشاء التغيير الغضروفي الليفي المدفوع بتأثير إدخال وتر العرقوب في نباتات الأطراف الخلفية للفأر مع بقاء الخلية المستدامة ، مما يوفر نموذجا مناسبا لاستكشاف البيولوجيا الميكانيكية لاصطدام الأوتار.

مورين هند نموذج زرع الأطراف لدراسة البيولوجيا الميكانيكية لاصطدام وتر العرقوب

هنا ، نقدم نظاما نموذجيا تجميعيا لتقليد الحديث الخلوي للوتر بين الأنسجة الأساسية للوتر الحامل وحجرة خارجية تحتوي على مجموعات الخلايا التي يتم تنشيطها بسبب المرض والإصابة. كحالة استخدام مهمة ، نوضح كيف يمكن نشر النظام لاستكشاف التنشيط المرتبط بالمرض للخلايا البطانية الخارجية.

تجميعات الأوتار الهندسية للتحقيق في الحديث الخلوي في المرض والإصلاح

تعلم إعداد أوتار ذيل الفئران للدراسات البيوميكانيكية والميكانيكية الحيوية. يوضح هذا الفيديو طرق استخراج الأنسجة وقياس المساحة العرضية وتحميلها في غرفة المفاعل الحيوي.

إعداد الأوتار ذيل فأر النشاط الحيوي للدراسات وMechanobiological

استكشف المزيد من الفيديوهات