Name: ampliPHOX الكشف اللونية على ميكروأري الحمض النووي لمكافحة الأنفلونزا (فيديو) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-06-09T12:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 32 s
Description: اكتشف تقنية ampliPHOX للكشف اللوني على المصفوفات الدقيقة للحمض النووي لمكافحة الأنفلونزا. تستخدم هذه الطريقة البلمرة الضوئية لتكوين بقع بوليمرية مرئية بسرعة، مما يوفر بديلاً فعالاً من حيث التكلفة للكشف بالفلورية.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

InDevR يقر المعاهد الوطنية للصحة / NIAID U01AI070276 وR43AI077112 لتمويل هذا العمل.

1. التضخيم باستخدام عينة RT - PCR <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخراج الحمض النووي الريبي الفيروسي من المواد الطبية أو الفيروسية. عزل الفيروسات باستخدام MinElute Qiagen كيت سبين بالاشتراك مع الآلية حمض النووي QIAcube منصة استخراج يتم تنفيذ عمليات الاستخراج على 200 عينة ميكرولتر مع حجم شطف النهائي من 60 ميكرولتر. مقتطفات المحل في -70 درجة مئوية أو أقل لاستخدامها لاحقا. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في منطقة خالية من القالب ، وإعداد مزيج الرئيسي RT - PCR على الجليد وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة. لدمج البيوتين خلال RT - PCR ، واستخدام خليط dNTP biotinylated بدلا من الصانع الموردة dNTP المزيج. تكلفة استخدام خليط dNTP biotinylated أقل من 1 دولار أمريكي / مقايسة. ويمكن أيضا طرق بديلة لإدماج البيوتين ، مثل استخدام التمهيدي biotinylated استخدامها. إضافة التمهيدي يمزج بتركيزات النهائي من 1.0 ميكرومتر لأنفلونزا A ، B 1.0 ميكرومتر لأنفلونزا ، و 0.14 ميكرومتر للرقابة الداخلية. الانفلونزا مجموعة التمهيدي تضخيم الجزء الجينات مصفوفة (1032 NT المنتج) وباء انفلونزا التمهيدي تعيين تضخيم شريحة الجين غير الهيكلية (811 NT المنتج). كل مجموعة التمهيدي FluChip التمهيدي يحتوي على واحد مع مجموعة 5 'فسفوريل لتسهيل توليد واحدة من الحمض النووي الذين تقطعت بهم السبل عن طريق الهضم الأنزيمي مع نوكلياز خارجية امدا التالية PCR. ينجم عن ذلك المنتج الذين تقطعت بهم السبل واحد يتطلب مرات التهجين أقصر بكثير من ما يعادل ضعف الذين تقطعت بهم السبل ، ويقصر كثيرا من الوقت الفحص الشامل. مزيج معدة سلفا لهذه المشارع وكذلك التحكم في قالب الحمض النووي الريبي الداخلية المتوفرة من InDevR إلى الباحثين المهتمين على أساس محدود. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> دوامة لفترة وجيزة وتوزيع 18 ميكرولتر من مزيج الرئيسي في أنابيب PCR رقيقة الجدران. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أنابيب نقل على الجليد إلى منطقة مناسبة للعمل بالإضافة إلى ذلك القالب ، قالب وإضافة 2 ميكرولتر لكل أنبوب التفاعل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أنابيب نقل PCR لcycler الحرارية ، وتشغيل ملف الحرارية التالية : النسخ العكسي عند 50 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة ، وتعطيل انزيم / التنشيط عند 95 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة ، و 40 دورات PCR من 95 درجة مئوية لمدة 30 ثانية ، 55 درجة C ل30S ، و 72 درجة مئوية لمدة 1 دقيقة ، والتمديد النهائي في 72 درجة مئوية لمدة 10 دقيقة. </li></ol> 2. تهجين RT - PCR المنتجات لميكروأرس منخفض الكثافة <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> من أجل توليد الحمض النووي الذين تقطعت بهم السبل واحد لتهجين FluChip ، تحضير الخليط الهضم الأنزيمي من خلال الجمع بين 1.0 نوكلياز خارجية انزيم امدا ميكرولتر ، 2.2 ميكرولتر من رد فعل العازلة المصاحبة لها ، و 0.8 ميكرولتر من nuclease خالية من المياه. هذه المبالغ هي لعينة واحدة ، ولكن يمكن تحجيمها لمجرد العدد الكلي للعينات ليتم هضمها. إزالة عينات من cycler الحرارية وإضافة 4 ميكرولتر من الخليط على استعداد لفعل كل لهضم حبلا فسفرته للمنتج PCR. عودة إلى عينات cycler الحرارية وبرنامج cycler الحرارية إلى 37 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة تليها 95 درجة مئوية لمدة 10 دقيقة لإتمام عملية الهضم الأنزيمي والخطوات تجزئة الحرارة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تطبع ميكروأرس الأنفلونزا المخصصة المستخدمة على الشرائح الزجاجية ألدهيد functionalized من قبل شركة ميكروأرس] التطبيقية (تيمبي ، من الألف إلى الياء). يتم الجمع بين 5' - الأمينية التقاط تسلسل إنهاء وجود مخزن مؤقت الأمثل اكتشاف وطباعتها في التركيز النهائي من 20 ميكرومتر (باستثناء تسلسل السيطرة الإيجابية التي قد بالإضافة إلى تعديل 3' البيوتين ، ورصدت عند تركيز النهائي من 500 نانومتر) . ويستخدم الاتصال غير اكتشاف الأسلوب ، مع بقعة قطرها 300 ميكرون الأمثل للمركز والى ارض الملعب وسط 700 ميكرون. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة ميكروأرس من مربع التخزين والتهجين تطبيق الآبار تستخدم مرة واحدة في جميع أنحاء ميكروأرس عن طريق إزالة الطبقة الواقية وضغط بشدة حول محيط جيدا. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الشرائح في مكان بن لغسل تحتوي على 110 مل من المياه النقية لغسل ما قبل 5 دقائق التهجين باستخدام شاكر المداري في 60-90 دورة في الدقيقة. تجفيف مجموعة عن طريق لمس الأنسجة ممسحة بلطف إلى حافة البئر ، والسماح للمياه لتكون الأشرار بعيدا. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 22 الجمع بين ميكرولتر من الاحتياطي تهجين 2X مع كل من المنتجات ssDNA مجزأة ، والماصة 40 ميكرولتر الحلول التهجين في آبار ميكروأري. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> السماح لهجن الشرائح في غرفة مغلقة الرطوبة لمدة 60 دقيقة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة الشرائح من الغرفة الرطوبة ، وشطف لفترة وجيزة مع المصفوفات اغسل الاحتياطي D في زجاجة شطف قبل ان يضع في رف الشريحة. عادة ما يكون حجم الاحتياطي شطف الغسيل D هو 2 مل لكل صفيف. مكان الرف الشريحة التي تحتوي على الشرائح في غسل بن العازلة التي تحتوي على 110 ألف لتر اغسل بن شاكر مكان على مدار الساعة 60-90 دورة في الدقيقة لمدة 1 دقيقة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة شريحة من رفوف مخزن غسل ، وشطف لفترة وجيزة مع اغسل الاحتياطي D ، نقل الشريحة إلى رف بن تحتوي اغسل B الاحتياطي ، ويهز في 60-90 دورة في الدقيقة لمدة 5 دقائق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جافة بلطف الصفيف على كل شريحة ، ومكان الشرائح المجففة في الغرفة الرطوبة في التحضير للخطوات ampliPHOX الكشف اللونية. </li></ol> 3. ampliPHOX : وسم المنتجات المهجنة ورقائق المعايرة مع ampliTAG <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ضم ميكرولتر من 10 ampliTAG و 20 ميكرولتر من العازلة ampliTAG 2X ، و 10 ميكرو لتر من المياه النقية لكل مجموعة بحيث تتم معالجتها. يمكن تحجيم حجم كاشف ببساطة عن مجموع عدد من العينات. تأكد من أن يعد ما يكفي من خليط وضع العلامات على حساب لجميع المصفوفات والمصفوفات عينة المعايرة اللازمة. عدد رقائق المعايرة اللازمة يعتمد على ما إذا كنت إجراء المعايرة الكامل (عن أداة جديدة أو كثيرا جديدة من الكواشف) ، أو مجرد أداة الاختيار. لمعايرة كامل ، ينبغي أن يكون المسمى رقائق المعايرة 3 ، وكاشف للفحص ، ينبغي أن يكون المسمى مجرد رقاقة المعايرة واحد. يرجى ملاحظة أن قبل أن يتم تسمية صفائف المعايرة ، فإنها ينبغي أن تمر عبر هذه الخطوة ما قبل الغسيل التهجين التي تم وصفها سابقا للمصفوفات الأنفلونزا. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نقل 40 ميكرولتر مزيج التسمية على كل مجموعة وتسمح العلامات رد فعل على المضي قدما في غرفة مغلقة الرطوبة لمدة 5 دقائق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> شطف على الفور مع غسل صفائف الاحتياطي D في زجاجة شطف قبل وضع الشرائح في حامل الشرائح. نقل إلى رف بن تحتوي على 110 مل من اغسل الاحتياطي C ، ويهز في 60-90 دورة في الدقيقة لمدة 5 دقائق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تستخدم بن لغسل الثانية المملوءة الماء النقي ، نفذ ثلاث مرات متتالية الانخفاضات المياه قصيرة لإزالة بقايا الملح. تجفيف صفائف عن طريق لمس الأنسجة ممسحة بلطف إلى حافة الآبار. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> هي الآن بشكل صحيح مع ميكروأرس المسمى ampliTAG ، ويمكن تنفيذ ما تبقى من إجراءات الكشف ampliPHOX. وينبغي الانتهاء من التصوير وتنشيط ضوئي صفائف المسمى في غضون 24 ساعة ، ويمكن تخزين صفائف إضافية في خانة الشريحة الظلام حتى الاستخدام. </li></ol> 4. ampliPHOX : المعايرة ، تضخيم الإشارات ، والتصوير <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بدوره ampliPHOX على القارئ وضمان ampliVIEW البرنامج هو على استعداد لتنشيط ضوئي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحديد الوقت الأمثل تنشيط ضوئي باستخدام رقائق المعايرة. بالإضافة إلى مقدمة موجزة الذي يلي ، كما هو مبين في هذا الإجراء بالتفصيل في دليل التشغيل ampliPHOX. رقائق معايرة تحتوي على سلسلة من التخفيفات لمراقبة تسلسل biotinylated التي تستخدم لتحسين حساسية الفحص ، وذلك بهدف تحقيق أقصى قدر من عدد من الصفوف من الشريحة المعايرة التي تنتج إشارة إيجابية على النحو الذي يحدده البرنامج. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة ampliPHY من 4 درجات مئوية ، والسماح لتسخين إلى درجة حرارة الغرفة ، ودوامة لفترة وجيزة إلى المزيج. 3 الماصة ميكرولتر من محسن ampliPHY في قارورة ampliPHY ، ودوامة جيدا لمدة 10 ثانية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نقل 40 بالتساوي ميكرولتر من محلول ampliPHY في ميكروأري تحتوي جيدا ampliTAG المسمى مجموعة ، وضمان عدم وجود فقاعات. إغلاق فيال ampliPHY بين كل طلب. إدراج الشريحة ميكروأري في خليج تنشيط ضوئي للقارئ ampliPHOX. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> لمعايرة مجموعة الأولى ، استخدام الوقت تنشيط ضوئي الافتراضية في مربع "تايم" على لوحة lefthand من البرنامج ، وانقر على الأخضر "ابدأ" الزر لبدء تنشيط ضوئي. عند الانتهاء ، إزالة مجموعة وشطف مع الماء النقي لإزالة ampliPHY الزائدة. وينبغي تشكيل البوليمر واضحة على بعض البقع تكون الآن مرئية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> السماح للبقع البوليمر لتجف لمدة 2 دقيقة ، ثم توزيع قطرتين من ampliRED على الصفيف والسماح للتلوين والمضي قدما لمدة 2 دقيقة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> المقبل ، وشطف ميكروأري بسرعة مع المياه النقية والجافة يمسح بمنديل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إدراج ميكروأري في خليج التصوير من القارئ ampliPHOX ، وانقر على زر 'التقاط صورة جديدة" في التبويب التصوير. التقط مرة واحدة ، وضبط المحاصيل وحفظ الصورة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في التبويب تحليل ، حدد قناع المعايرة وتشيب على زر "الموضع تلقائي" لبدء التحليل. يقوم البرنامج تلقائيا إنتاج "تسجيل ملخص" تظهر النتائج كميا. بناء على هذه النتائج ، يتم ضبط الوقت تنشيط ضوئي بنسبة 10 ثانية لمجموعة المعايرة الثانية ، ويتم تكرار هذا الإجراء. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مرة واحدة وقد تم تحديد الوقت الأمثل تنشيط ضوئي ، يمكن معالجة المصفوفات باستخدام العينة نفسها ، وتضخيم إشارة بروتوكول التصوير المستخدمة للمصفوفات المعايرة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مرة يتم التقاط صورة للمصفوفات العينة ، يمكن للقناع للتخطيط الخاص مجموعة معينة مثل الأنفلونزا تخطيط مجموعة وصفها هنا يمكن created.The ampliVIEW البرمجيات هي قادرة على أداء الآلي تحليل الصور وتوليد النتائج الأنفلونزا التصنيف الفرعي لكل عينة. </li></ol> 5. ممثل النتائج : <img src="/files/ftp_upload/2682/2682fig1.jpg" alt="الشكل 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="الشكل 1"> الشكل 1. توضيح تخطيطي لطريقة الكشف ampliPHOX اللونية. (A) هو تهجين الحمض النووي المستهدف Biotinylated إلى كل بقعة في الصفيف ، و (ب) المسمى مع ampliTAG. (C) ثم يضاف ampliPHY الحل ، و (D) تعرضها للضوء لتشكيل البوليمر البقع مرئية. (E) والملون لاحقا البقع البوليمر شكلت مع صبغة غير سامة لتحسين التباين. ontent "&gt; <img src="/files/ftp_upload/2682/2682fig2.jpg" alt="الشكل 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="الشكل 2"> الشكل 2 : (أ) منخفض الكثافة ميكروأري الأنفلونزا التخطيط. متواليات 1-7 و 10-13 أنفلونزا الهدف ألف ، ومتواليات 8 و 9 باء الانفلونزا هدف (B) ampliPHOX و (ج) من الصور مضان H1N1 رواية 2009 ('انفلونزا الخنازير') عينة تبين نمط الكشف عن نفسه من قبل كل من الأساليب. <img src="/files/ftp_upload/2682/2682fig3.jpg" alt="الشكل 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="الشكل 3"> الشكل 3. من اليسار إلى اليمين ، وصور للممثلة ampliPHOX H3N2 A ، الأنفلونزا البشرية المنشأ H1N1 ، H1N1 2009 رواية (الخنازير المنشأ) ، وعينة سلبية. جميع أنواع فرعية 3 تظهر أنماط متميزة بصريا على صفيف. إشعار في السلبية التي ينظر اليها فقط MS2 السيطرة الداخلية ، مما يدل على التضخيم RT - PCR لم الكبت.

<ol><li>Kumar, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Widely+Used+Diagnostics+%22DNA-Microarray%22-A+Review%5BTitle%5D)+AND+%22Amer+J+Inf+Dis%22%5BJournal%5D)">The Widely Used Diagnostics "DNA-Microarray"-A Review.</a> Amer J Inf Dis. 5, 207-218 (2009).</li>
<li>Miller, M. B., Tang, Y. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Basic+Concepts+of+Microarrays+and+Potential+Applications+in+Clinical+Microbiology%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Microbiol+Rev%22%5BJournal%5D)">Basic Concepts of Microarrays and Potential Applications in Clinical Microbiology.</a> Clin Microbiol Rev. 22, 611-633 (2009).</li>
<li>Mikhailovich, V., Gryadunov, D., Kolchinsky, A., Makarov, A. A., Zasedatelev, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+microarrays+in+the+clinic%3A+infectious+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22BioEssays%22%5BJournal%5D)">DNA microarrays in the clinic: infectious diseases.</a> BioEssays. 30, 673-682 (2008).</li>
<li>Call, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Challenges+and+opportunities+for+pathogen+detection+using+DNA+microarrays%5BTitle%5D)+AND+%22Crit+Rev+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Challenges and opportunities for pathogen detection using DNA microarrays.</a> Crit Rev Microbiol. 31, 91-99 (2005).</li>
<li>Raoult, D., Fournier, P. E., Drancourt, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((What+does+the+future+hold+for+clinical+microbiology%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Microbiol%22%5BJournal%5D)">What does the future hold for clinical microbiology.</a> Nat Rev Microbiol. 2, 151-159 (2004).</li>
<li>Dawson, E. D., Rowlen, K. L. MChip: A Single Gene Diagnostic for Influenza A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDawson%2C+ED+%22Influenza%3A+Molecular+Virology%22">Influenza: Molecular Virology</a>. Wang, Q., Tao, Y. J. , Caister Academic Press. Norfolk, UK. (2010).</li>
<li>Gall, A., Hoffman, B., Harder, T., Grund, C., Ehricht, R., Beer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+hemagglutinin+subtyping+and+pathotyping+of+avian+influenza+viruses+by+a+DNA+microarray%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol+Meth%22%5BJournal%5D)">Rapid hemagglutinin subtyping and pathotyping of avian influenza viruses by a DNA microarray.</a> J Virol Meth. 160, 200-205 (2009).</li>
<li>Townsend, M. B., Dawson, E. D., Mehlmann, M., Smagala, J. A., Dankbar, D. M., Moore, C. L., Smith, C. B., Cox, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FluChip%3A+Experimental+evaluation+of+a+diagnostic+influenza+microarray%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Microbiol%22%5BJournal%5D)">FluChip: Experimental evaluation of a diagnostic influenza microarray.</a> J Clin Microbiol. 44, 2863-2871 (2006).</li>
<li>Wang, Z., Daum, L. T., Vora, G. J., Metzgar, D., Walter, E. A., Canas, L. C., Malanosky, A. P., Lin, B., Stenger, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identifying+influenza+viruses+with+resequencing+arrays%5BTitle%5D)+AND+%22Emerg+Inf+Dis%22%5BJournal%5D)">Identifying influenza viruses with resequencing arrays.</a> Emerg Inf Dis. 12, 638-646 (2006).</li>
<li>Kessler, N., Ferraris, O., Palmer, K., Marsh, W., Steel, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+the+DNA+Flow-Thru+Chip%2C+a+three-dimensional+biochip%2C+for+typing+and+subtyping+of+influenza+viruses%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Use of the DNA Flow-Thru Chip, a three-dimensional biochip, for typing and subtyping of influenza viruses.</a> J Clin Microbiol. 42, 2173-2185 (2004).</li>
<li>Kuck, L. R., Taylor, A. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photopolymerization+as+an+innovative+detection+technique+for+low-density+microarrays%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechniques%22%5BJournal%5D)">Photopolymerization as an innovative detection technique for low-density microarrays.</a> Biotechniques. 45, 179-186 (2008).</li>
<li>Avens, H. J., Bowman, C. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+fluorescent+polymerization-based+signal+amplification+for+sensitive+and+non-enzymatic+biodetection+in+antibody+arrays%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomat%22%5BJournal%5D)">Development of fluorescent polymerization-based signal amplification for sensitive and non-enzymatic biodetection in antibody arrays.</a> Acta Biomat. 6, 83-89 (2010).</li>
<li>Sikes, H. D., Jenison, R., Bowman, C. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antigen+detection+using+polymerization-based+amplification%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">Antigen detection using polymerization-based amplification.</a> Lab on a Chip. 9, 653-656 (2008).</li>
</ol>

كل من المؤلفين هم من موظفي InDevR ، وشركة كيان للربح. InDevR هو تسويق هذه التكنولوجيا ampliPHOX الموصوفة هنا.

كشف اللونية ampliPHOX التكنولوجيا المقدمة هنا هي سريعة ، رخيصة بديلة للكشف لون واحد مضان لانخفاض الكثافة ميكروأري التطبيقات. أظهرت تخطيطي في الشكل 1 ، ويستند على مبدأ الكشف عن استخدام تسمية photoinitiator (1B). في وجود حل مونومر المحتوية على (1C) ، والتعرض للضوء يسبب photoinitiator (ampliTAG) ليثير رد فعل البلمرة فقط في المناطق المسماة (1D). على الرغم من تظاهر هنا على مجموعة الحمض النووي لتحديد هوية الأنفلونزا والتصنيف الفرعي ، ويمكن تمديد هذه التكنولوجيا للكشف عن...

<table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><th> كاشف / المعدات </th><th> الصانع </th><th> كتالوج # </th><th> تعليقات </th></tr><tr><td> Qiagen سبين الفيروسات MinElute كيت </td><td> Qiagen </td><td> 57704 </td><td> شطف واحد 60 ميكرولتر </td></tr><tr><td> QIAcube </td><td> Qiagen </td><td> 9001292 </td><td> اختياري </td></tr><tr><td> ABI 9800 Cycler السريع الحرارية </td><td> تطبيق النظم البيولوجية </td><td> 4441166 </td><td></td></tr><tr><td> Qiagen OneStep RT - PCR طقم </td><td> Qiagen </td><td> 210210 </td><td> لا تستخدم عدة dNTPs </td></tr><tr><td> 2X الاحتياطي الإكتشاف </td><td> شركة InDevR </td><td> MI - 5007 </td><td></td></tr><tr><td> Biotinylated dNTP ميكس </td><td> شركة InDevR </td><td> MI - 5009 </td><td></td></tr><tr><td> امدا نوكلياز خارجية </td><td> التكنولوجيات الحيوية Epicentre </td><td> LE032K </td><td> 2500 U ، 10U/μl </td></tr><tr><td> FluChip التمهيدي مزيج </td><td> InDevR </td><td> N / A </td><td> لم يتوفر حتى الآن للبيع </td></tr><tr><td> شاكر المداري </td><td> Madell التكنولوجيا </td><td> ZD - 9556 - A </td><td></td></tr><tr><td> سلال غسيل </td><td> شركة InDevR </td><td> MI - 4002 </td><td></td></tr><tr><td> غسل الرفوف </td><td> شركة InDevR </td><td> MI - 4003 </td><td></td></tr><tr><td> 2X تهجين العازلة </td><td> شركة InDevR </td><td> MI - 5004 </td><td></td></tr><tr><td> المعايرة شيبس </td><td> شركة InDevR </td><td> AP - 5006 </td><td></td></tr><tr><td> غسل المخازن ميلادي </td><td> شركة InDevR </td><td> MI - 5005 </td><td></td></tr><tr><td> ampliRED </td><td> شركة InDevR </td><td> AP - 5004 </td><td></td></tr><tr><td> ampliTAG </td><td> شركة InDevR </td><td> AP - 5001 </td><td></td></tr><tr><td> 2X ampliTAG العازلة </td><td> شركة InDevR </td><td> AP - 5002 </td><td></td></tr><tr><td> ampliPHY ، ampliPHY محسن </td><td> شركة InDevR </td><td> AP - 5003 </td><td></td></tr></tbody></table>

ampliphox الكشف اللونية على ميكروأري الحمض النووي لمكافحة الأنفلونزا

ampliPHOX Colorimetric Detection on a DNA Microarray for Influenza

ظهرت ميكروأرس الحمض النووي كأداة قوية للكشف عن العوامل المسببة للأمراض. 1-5 وعلى سبيل المثال ، أثبتت العديد من الأمثلة على القدرة على نوع وسلالة فيروس الانفلونزا. 6-11 تحديد وتصنيف الفرعي لأنفلونزا على ميكروأرس الحمض النووي وتطبيقاتها في القطاعين العام الصحة وعيادة للكشف المبكر والتدخل السريع ، والتقليل من تأثير وباء الأنفلونزا. مضان التقليدية في الوقت الراهن الكشف ميكروأري الأكثر استخداما الأسلوب. لكن ، وكما استخدموا تكنولوجيا متطورة تقدم نحو الاستخدام السريري (1) ، واستبدال الأجهزة غالية مع انخفاض تكلفة تكنولوجيا الكشف واظهار خصائص الأداء مماثلة لمضان جعل المقايسات ميكروأري أكثر جاذبية وفعالة من حيث التكلفة. المقصود من الكشف اللونية ampliPHOX التكنولوجيا لتطبيقات البحوث ، ووضع حد للكشف داخل احدة من حيث الحجم من 11 مضان التقليدية ، مع الميزة الرئيسية التي يجري تقريبي عشرة أضعاف تكلفة أقل مقارنة صك الماسحات الضوئية اللازمة لميكروأري مبائر ميكروأري مضان الكشف. ميزة أخرى هي من الحجم الصغير الصك الذي يسمح لقابلية ومرونة ، على عكس مضان الصكوك التقليدية. لأن التكنولوجيا البلمرة ليست كما الخطية بطبيعتها كما كشف مضان ، ومع ذلك ، هو الأنسب لانخفاض الكثافة ميكروأري التطبيقات التي المطلوب هو نعم / لا جواب عن وجود تسلسل معين ، مثل الكشف عن صفائف الممرض. في الوقت الحاضر كثافة بقعة أقصى متوافقة مع الكشف ampliPHOX هو ~ 1800 البقع / الصفيف. بسبب محدودية كثافة البقعة ، ميكروأرس العالي الكثافة ليست مناسبة للكشف عن ampliPHOX. هنا ، نقدم ampliPHOX تكنولوجيا الكشف اللونية كوسيلة لتضخيم إشارة على ميكروأري منخفض الكثافة وضعت لكشف وتشخيص فيروسات الأنفلونزا (FluChip). على الرغم من أن هذا البروتوكول يستخدم FluChip (أ ميكروأري الحمض النووي) ، وتطبيق واحد محدد للكشف ampliPHOX ، أي دمج ميكروأري الهدف biotinylated يمكن الكشف عن وصفت بطريقة مماثلة. تصميم وميكروأري biotinylation هدف ليتم القبض هي من مسؤولية المستخدم. مرة واحدة وقد تم القبض على الهدف biotinylated على الصفيف ، يمكن إجراء الكشف عن طريق وضع علامات ampliPHOX لأول مرة مع مجموعة المتقارن streptavidin التسمية (ampliTAG). عند التعرض للضوء باستخدام أداة قارئ ampliPHOX ، البلمرة حل مونومر (ampliPHY) يحدث فقط في المناطق التي تحتوي على ampliTAG المسمى الأهداف. ويمكن تشكيل البوليمر الملون في وقت لاحق مع حل غير سامة لتحسين النقيض البصرية ، تليها التصوير والتحليل باستخدام مجموعة من البرامج البسيطة (ampliVIEW). ويمكن إجراء فحص كامل من FluChip الامم المتحدة واستخراج عينة لينتج حوالي 6 ساعات ، ويمكن الانتهاء من الخطوات المذكورة أعلاه الكشف ampliPHOX في حوالي 30 دقيقة.

وتقدم تكنولوجيا الكشف ampliPHOX اللونية كبديل غير مكلف للكشف عن ميكروأرس مضان. استنادا بلمرة ضوئية المنشأ ، ampliPHOX تنتج البقع البوليمر الصلبة مرئية للعين المجردة في دقائق معدودة. ثم يتم تصوير النتائج وتفسيرها تلقائيا مع حزمة برامج بسيطة لكنها قوية.

ampliPHOX الكشف اللونية على ميكروأري الحمض النووي لمكافحة الأنفلونزا

برزت المصفوفات الدقيقة للحمض النووي (DNA microarrays) كأداة قوية للكشف عن المسببات المرضية.1-5 فعلى سبيل المثال، هناك العديد من النماذج التي تثبت القدرة على تحديد النوع والنمط الفرعي لفيروس الإنفلونزا...

الهدف العام من التجربة التالية هو استخدام طريقة جديدة وسريعة لتضخيم الإشارة للكشف عن الأنواع الفرعية للفيروسات المسببة للإنفلونزا وتوصيفها على شريحة الإنفلونزا، وهي منصة مصفوفة مجهرية منخفضة الكثافة. ويتم تحقيق ذلك من خلال دمج DTPs المبيوتينة واستخدام بادئات ذات نهاية فوسفورية في الطرف 5 لـ تضخيم قطعة جين المصفوفة وقطعة الجين غير التركيبي من مستخلصات RNA الخاصة بالإنفلونزا. ويتبع تفاعل PCR عملية هضم إنزيمي وتجزئة لإنتاج ناتج فيروسي مبيوتين ومضخم قصير أحادي السلسلة، والذي يتم تهجينه بعد ذلك مع المصفوفة.تستخدم طريقة الكشف بواسطة الثعلب (Fox detection) البلمرة الضوئية لإنماء بقع بوليمرية كبيرة حيث يحدث التهجين، وتُستخدم أنماط التهجين التفاضلية للكشف عن الأنواع الفرعية للفيروسات المسببة للإنفلونزا. وتكمن الميزة الرئيسية لهذه التقنية مقارنة بالطرق الحالية مثل الكشف الفلوري القياسي في أنها غير مكلفة نسبيًا وتوفر نتيجة سريعة مرئية بالعين المجردة بحساسية تحليلية مماثلة للفلورة. ورغم ذلك، يمكن لهذه الطريقة أن توفر رؤية متعمقة في توصيف فيروسات الإنفلونزا باستخدام شريحة الإنفلونزا (flu chip) لأنها طريقة كشف شاملة.يمكن تطبيق Ampl Fox أيضاً على مجموعة واسعة من الأنظمة الأخرى، مثل مصفوفات دقيقة أخرى منخفضة الكثافة قائمة على الحمض النووي DNA والبروتينات. ومن الناحية النظرية، يجب أن يكون من الممكن اكتشاف أي منتج مرتبط بالبيوتين باستخدام amox. ستقوم بتوضيح الإجراء أمبر تايلور، وهي باحثة مشاركة، وكيفن مولتون، وهو مساعد باحث هنا في Endeavor، واللذان كانا محورين في تطوير جهاز Fox وكيمياء الكشف على مدار السنوات القليلة الماضية.استخلص الـ RNA الفيروسي من 200 µL من العزلة الفيروسية باستخدام طقم استخلاص الـ RNA الفيروسي ووفقاً لبروتوكول الشركة المصنعة. قم باستعادة 60 µL من الحجم النهائي وخزن المستخلصات عند درجة حرارة -70 °C أو أقل للاستخدام اللاحق. بعد ذلك، قم بتحضير المزيج الرئيسي لـ R-T-P-C-R على الثلج وفقاً لبروتوكول الشركة المصنعة.باستخدام خليط من الـ DNTP المرقمنة بالبيوتين (BIOTINYLATED DNTP)، أضف خليط بادئات رقاقة الإنفلونزا، الذي يحتوي على التركيزات الموضحة، إلى الخليط الرئيسي. يجب أن يحتوي بادئ واحد من كل مجموعة على مجموعة فوسفات في الطرف الخماسي (five prime phosphol group) لتسهيل الهضم الإنزيمي. تنتج مجموعة بادئات الإنفلونزا أ (flu a) ناتجاً بطول 1032 زوجاً قاعدياً، بينما تنتج مجموعة بادئات الإنفلونزا ب (flu B) ناتجاً بطول 811 زوجاً قاعدياً.قم برج المزيج الرئيسي (master mix) سريعاً باستخدام جهاز الرج (vortex) ووزع 18 µL منه في أنابيب PCR ذات جدران رقيقة. بعد ذلك، أضف 2 µL من قالب RNA إلى كل أنبوب تفاعل. انقل أنابيب PCR إلى جهاز الدورات الحرارية (thermal cycler) واستخدم برنامج دورات حرارية بدرجة حرارة تلدين (annealing temperature) مناسبة.يظهر هنا ملف التدوير المستخدم في هذا المقايسة. قم بتحضير مزيج الهضم الإنزيمي عن طريق دمج 2.2 µL من منظم تفاعل الإنزيم، و0.8 µL من الماء الخالي من النوكلياز و1.0 µL من إنزيم lambda exonuclease لكل تفاعل PCR. أخرج العينات من الدورة الحرارية وأضف أربعة µL إلى كل أنبوب PCR.أعد العينات إلى الجهاز الدوري الحراري وبرمجه كما هو موضح على 37 °C لمدة 15 دقيقة، تليها 95 °C لمدة 10 دقائق. بعد ذلك، ضع آبار تهجين أحادية الاستخدام حول المصفوفات الدقيقة المراد تهجينها. ثم اغسل الشرائح في 110 mL من الماء المنقى باستخدام هزاز مداري لمدة خمس دقائق.جفف الشرائح بلمس حافة البئر برفق باستخدام منديل ورقي. اخلط 22 µL من محلول تهجين منظم (two x hybridization buffer) مع كل منتج من منتجات DNA أحادي السلسلة المجزأ خلطاً سريعاً، ثم انقل 40 µL بواسطة الماصة إلى آبار المصفوفة الدقيقة. اترك الشرائح لتتهجن لمدة ساعة واحدة في غرفة رطوبة؛ وبعد التهجين، أخرج الشرائح من غرفة الرطوبة واغسل كل شريحة سريعاً باستخدام 2 mL من محلول غسيل D. ضع الشرائح في حامل الشرائح.بعد ذلك، أضف 110 milliliters من محاليل الغسيل المنظمة A و B إلى حاويات منفصلة باستخدام هزاز مداري. اغسل حامل الشرائح في المحلول المنظم A بسرعة تتراوح من 60 إلى 90 RPM، وهي السرعة المستخدمة في جميع عمليات الغسيل اللاحقة، وذلك لمدة دقيقة واحدة. ثم أخرج حامل الشرائح من محلول الغسيل A واشطفه سريعاً بمحلول الغسيل D. انقل حامل الشرائح إلى محلول الغسيل B واغسله على الهزاز المداري لمدة خمس دقائق.بعد الغسيل، جفف المصفوفات الموجودة على كل شريحة برفق باستخدام منديل ورقي، ثم ضع الشرائح المجففة في غرفة الرطوبة. وتحضيراً لخطوات كشف الفوكس (fox) اللونية، اخلط 10 µL من amplitude و 20 µL من 2x amplitude buffer و 10 µL من الماء المقطر لكل مصفوفة سيتم معالجتها، ثم انقل 40 µL من خليط الوسم إلى كل مصفوفة واترك تفاعل الوسم يستمر في غرفة رطوبة مغلقة لمدة خمس دقائق. وأثناء عملية التهجين، قم بتحضير 110 mL من محلول الغسل C في وعاء. وبعد انتهاء عملية الوسم، اشطف كل مصفوفة فوراً باستخدام محلول الغسل D. ضع كل شريحة في حامل الشرائح واغسلها باستخدام محلول الغسل C على الهزاز المداري لمدة خمس دقائق، وبعد الغسل بمحلول C، اغمر حامل الشرائح لفترة وجيزة ثلاث مرات في وعاء يحتوي على ماء مقطر.لإزالة رواسب الملح، قم بتجفيف المصفوفات كما تم توضيحه سابقاً. تُحفظ المصفوفات في صندوق شرائح معتم حتى يتم التنشيط الضوئي والتصوير، واللذين يجب إتمامهما في غضون 24 ساعة. بعد ذلك، قم بتشغيل قارئ Amli Fox وتأكد من أن برنامج Amli view جاهز للتنشيط الضوئي قبل الكشف عن عينة المصفوفة.أولاً، حدد الوقت الأمثل للتنشيط الضوئي لجميع العينات باتباع إجراء معايرة قصير. عند الاستخدام اليومي، قم بتدفئة محلول Amplify حتى درجة حرارة الغرفة ورجّه سريعاً باستخدام جهاز المرج (vortex) للمزج، ثم اسحب ثلاث ميكرولتر (3 µL) من مُعزز Amplify وأضفها إلى أنبوبة Amplify ورجّها جيداً. قم بتوزيع 40 ميكرولتر (40 µL) من محلول Amplify بالتساوي على شريحة واحدة فقط في كل مرة لمدة 10 ثوانٍ، مع التأكد من عدم وجود فقاعات.أدخل شريحة المصفوفة الدقيقة في حجرة التنشيط الضوئي بجهاز Amplify Reader. ابدأ عملية التنشيط الضوئي باختيار "start" في برنامج PL view باستخدام وقت التنشيط الضوئي الذي تم تحديده في عملية المعايرة. بمجرد الانتهاء، اشطف المصفوفة الدقيقة بـ 2 mL من الماء المقطر لإزالة الزائد من بوليمر amplify clear؛ لقد حدث الآن تكوين البوليمر في البقاع التي تحتوي على DNA المستهدف، ولكن يمكن رؤيته بشكل أفضل.بعد التلوين، اترك بقع البوليمر لتجف لمدة دقيقتين. ثم وزع قطرتين من صبغة amply red على المصفوفة واترك عملية التلوين تستمر لمدة دقيقتين. بعد التلوين، اشطف الشريحة بسرعة بالماء المنقى وجففها كما هو موضح سابقاً، ثم أدخل الشريحة في حجرة التصوير بجهاز القارئ Amli Fox لالتقاط صورة باستخدام برنامج amli لمعالجة النتائج. تُظهر الصورة الموجودة على اليسار الكشف عن عينة H one N one المستجدة لعام 2009 بواسطة Amli Fox.بينما تستخدم الصورة الموجودة على اليمين الفلورة التقليدية الناتجة عن ماسح مصفوفات مجهرية فلوري بؤري، يمكن رؤية نفس نمط الكشف العام بسهولة لكلا الطريقتين. ومع ذلك، فإن نتيجة Amli fox مرئية بالعين المجردة. تُظهر هذه الصور نتائج شرائح الفلورة من أصل بشري، H3N2 من أصل بشري، H1N1 من أصل خنزيري، H1N1، ومصفوفة ثعلب سلبية تفتقر إلى إنفلونزا يمكن اكتشافها.تنتج التسلسلات A اثنين وثلاثة المحددة باللون الأزرق إشارة لجميع أنواع الإنفلونزا الموضحة، ولكن التسلسلات المحددة باللون الأحمر في أسفل اليمين تنتج إشارة فقط لعينة H1N1 ذات الأصل الخنزيري. وتظهر العينة السلبية إشارة في تسلسل تحكم داخلي محدد باللون الأخضر، مما يشير إلى عدم وجود تثبيط أو فشل في تفاعل RT-PCR.بمجرد إتقان العملية، يمكن تنفيذ الخطوات بأكملها، بدءاً من استخراج العينة من القارورة ووصولاً إلى الكشف عن amox وتفسير النتيجة النهائية، في غضون ست ساعات تقريباً. ويمكن إتمام جزء الكشف عن Ampl Fox من الإجراء، بما في ذلك معايرة الجهاز، في غضون 30 دقيقة تقريباً باتباع هذا الإجراء. كما يمكن إجراء طرق أخرى، مثل تسلسل الجينوم الجزئي أو الكامل، للإجابة على أسئلة إضافية.صُمم هذا المقايسة للإنفلونزا لتكون بمثابة فحص أولي، لا سيما للعينات التي تظهر نمط تهجين فريد. ونظراً لأن الكشف هو مقايسة عامة، فإننا نأمل أن يجد الباحثون تطبيقات جديدة ومثيرة للاهتمام للمصفوفات الدقيقة منخفضة الكثافة والتي يمكن أن يضيف الكشف فيها قيمة مضافة.

ampliphox-colorimetric-detection-on-a-dna-microarray-for-influenza

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

علم المناعة والعدوى

وVirochip هو ميكروأري عموم الفيروسية في وقت واحد تهدف إلى الكشف عن جميع الفيروسات المعروفة فضلا عن الفيروسات الجديدة على أساس التماثل تسلسل الحفظ. نحن هنا لشرح كيفية تشغيل مقايسة Virochip لتحليل العينات السريرية عن وجود الفيروسات المعروفة وغير المعروفة على حد سواء.

باستخدام الفحص ميكروأري عموم الفيروسي (Virochip) إلى الشاشة العينات السريرية لمسببات الأمراض الفيروسية

هذه الطريقة يصف استخدام الأشعة تحت الحمراء صبغ نظام التصوير القائم للكشف عن فيروس H1N1 في السائل قصيبية (بال) غسل من الفئران المصابة في حساسية عالية. لا يمكن أن يؤديها هذه المنهجية في 96 - أو 384 لوحة جيدا، يتطلب &lt;10 ميكرولتر من حجم المواد واختبار لديه القدرة على فحص متزامن من مسببات الأمراض متعددة.

الإنتاجية العالية لطريقة الكشف عن فيروس الإنفلونزا

في هذا الفيديو ، نوضح عملية الكشف عن الأنماط التماثلية للأجسام المضادة في عينات مصل بشرية متعددة باستخدام شريحة مصفوفة دقيقة مطبوعة بأنواع فرعية مستضدية من سلالات فيروس الأنفلونزا.

مقايسة المصفوفة الدقيقة للمستضد الفيروسي للكشف عن الأنماط التماثلية للأجسام المضادة في المصل ضد المستضد الفيروسي

يوضح الفيديو اختبارا لقياس فيروسات الأنفلونزا A و B. يستخدم هذا الاختبار تضخيم نوكلياز داخلي مع بادئات خاصة بالإنفلونزا والكشف عن الهدف باستخدام مجسات المنارة الجزيئية.

اختبار جزيئي لقياس فيروسات الأنفلونزا A و B

وقد تم تطوير رقاقة متكاملة بالحرارة ميكروفلويديك لاستخدامها بوصفها التشخيص الجزيئي. رقاقة يؤدي استخلاص الحمض النووي، الناسخ العكسي، وPCR. يتم وصف طرق لانتاج وتشغيل الشريحة.

ميكروفلويديك تصنيع المعالج وطريقة للكشف عن الأنفلونزا

وميكروأري التضخيم PCR التضخيم غير المتماثلة يجمع وميكروأري التهجين في غرفة واحدة، والذي يبسط إلى حد كبير سير العمل ميكروأري للمستخدم النهائي. تبسيط سير العمل ميكروأري هو خطوة أولى ضرورية لخلق التشخيص القائم على ميكروأري التي يمكن استخدامها بشكل روتيني في البيئات ذات الموارد أقل.

مما يدل على متعدد المخدرات مقاومة<em&gt; السل المتفطرة</em&gt; التضخيم ميكروأري

باستخدام استراتيجية المصفوفة الدقيقة المطبوعة للجليكان ، تم تصغير مقايسة الألواح التقليدية المكونة من 96 بئرا لتحليل شفق هيماجلوتينين فيروس الأنفلونزا A وخصوصيتها للمستقبلات المحتوية على حمض السياليك.

والمنمنمة غليكان ميكروأري الفحص لتقييم الطمع وخصوصية الأنفلونزا من الفيروسات Hemagglutinins

نحن تصف فحص سريع، استنادا الجزيئي الأنفلونزا A و B. الأنفلونزا فحص يكشف كل هدف خلال 15 دقيقة من خلال توظيف التضخيم متساوي مع الاشعال مخصصة للانفلونزا تليها الكشف عن الهدف مع تحقيقات منارة الجزيئية. الأنفلونزا A و B الفحص هو سهل الاستعمال ويتطلب الحد الأدنى من التدريب العملي على الوقت لتنفيذ.

سرعة الكشف الجزيئي والتمايز من فيروسات الأنفلونزا A و B

الحالي متعدد التشخيص للكشف عن زيكا، الشيكونغونيا، وفيروسات حمى الضنك تتطلب إعداد نماذج معقدة ومكلفة للأجهزة، وهي صعبة الاستخدام في البيئات قليلة الموارد. علينا إظهار تشخيص التي يستخدمها التضخيم متحاور مع تحقيقات منقولة حبلا محددة الهدف لكشف والتفريق بين هذه الفيروسات مع حساسية عالية وخصوصية.

متعدد التضخيم متحاور على أساس منهاج التشخيصية للكشف عن زكى وداء شيكونغونيا وحمى الضنك 1

نقدم بروتوكولًا لاستخدام مجموعة بروتين دقيقة تم إنشاؤها بواسطة طباعة مستضدات الأنفلونزا على الشرائح المغلفة بالنيتروسيلولوز لسبر المصل في نفس الوقت لعدة أنواع من الأجسام المضادة ضد أكثر من 250 مستضدًا من سلالات الفيروسات المختلفة، وبالتالي السماح بقياس اتساع الأجسام المضادة المصل عبر الأنواع الفرعية للفيروس.

استخدام مجموعة مستضد الأنفلونزا الدقيقة لقياس اتساع الأجسام المضادة للمصل عبر الأنواع الفرعية للفيروس

يظهر هنا بروتوكول لنهج التصوير الفلوري ، multiplex immunofluorescent cell-based detection of DNA ، RNA ، و protein (MICDDRP) ، وهي طريقة قادرة على التصور المتزامن لخلية واحدة من البروتين الفيروسي والأحماض النووية من أنواع مختلفة وتقطعت بهم السبل. يمكن تطبيق هذا النهج على مجموعة متنوعة من الأنظمة.

التصوير الفلوري متعدد الخلية أحادي الخلية لتصور الأحماض النووية الفيروسية والبروتينات ومراقبة فيروس نقص المناعة البشرية و HTLV و HBV و HCV وفيروس زيكا وعدوى الأنفلونزا

اكتشف تقنية ampliPHOX للكشف اللوني على المصفوفات الدقيقة للحمض النووي لمكافحة الأنفلونزا. تستخدم هذه الطريقة البلمرة الضوئية لتكوين بقع بوليمرية مرئية بسرعة، مما يوفر بديلاً فعالاً من حيث التكلفة للكشف بالفلورية.

ampliPHOX الكشف اللونية على ميكروأري الحمض النووي لمكافحة الأنفلونزا

استكشف المزيد من الفيديوهات