تلطيخ الإيوزين لعينات الأنسجة الرخوة: إجراء قائم على الإيوزين لتلطيخ الكلى الكاملة للفأر لتصور الهياكل المجهرية للأنسجة

0 مشاهدات3:14 د • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

بالنسبة للتلطيخ الخاص بالسيتوبلازم في البيئات الدقيقة للأنسجة الرخوة ، احصل على كلية فأر محصودة حديثا. عالجها بمحلول مثبت يحتوي على الفورمالديهايد وحمض الخليك الجليدي والميثانول. احتضان في درجات حرارة منخفضة.

يخترق الفورمالديهايد الخلايا ، ويربط البروتينات بالبروتينات والبروتينات بالأحماض النووية. يزيح الميثانول الماء من الأنسجة ويتخثر البروتينات. يسبب حمض الخليك التحمض داخل الخلايا وتورم الأنسجة ، وبالتالي يقاوم انكماش الأنسجة الناجم عن الميثانول.

يعمل

التثبيت على تعطيل الإنزيمات واستقرار مورفولوجيا الأنسجة للتلوين اللاحق. قم بإزالة المثبتات الزائدة باستخدام المخزن المؤقت. احتضان الأنسجة باستخدام اليوزين Y ، وهي صبغة حمضية.

يخترق الإيوسين الخلايا الثابتة ويدخل السيتوبلازم. تتسبب البيئة الحمضية للسيتوبلازم ، من معالجة حمض الخليك ، في أقصى قدر من البروتونات للمجموعات الأمينية للبروتينات السيتوبلازمية.

يتفاعل الإيوزين ، مع المجموعات الوظيفية سالبة الشحنة ، إلكتروستاتيكيا مع مجموعات البروتونات البروتونية ، مكونا مركبا مستقرا للصبغة البروتينية ، ويلطخ السيتوبلازم باللون الوردي عند التراكم. بعد الحضانة ، قم بتقطيع الكلى الملطخة إلى قطع صغيرة ، متبوعة بجفاف الأنسجة في زيادة تركيزات الإيثانول.

قم بتضمين أنسجة الكلى في شمع البارافين. احصل على أقسام رقيقة من الأنسجة باستخدام ميكروتوم. علاوة على ذلك ، أعد ترطيب الأقسام للتحليل المجهري.

تظهر نوى الخلايا غير الملوثة باللون الأبيض مقابل السيتوبلازم الملون باللون الوردي ، مما يتيح تصور الهياكل المجهرية للكلى مثل الأنابيب الملتوية القريبة ، والتي تشتمل على خلايا ظهارية ذات حدود فرشاة ، أو قنوات تجمع ، مبطنة بخلايا ظهارية مسطحة بدون حدود فرشاة.

ابدأ بتثبيت عينات الأنسجة الرخوة. املأ أنبوب طرد مركزي سعة 50 مليلتر بمحلول مثبت يحتوي على 9.5 مل من الفورمالديهايد 4٪ و 0.5 مل من حمض الخليك الجليدي. أضف عينة الأنسجة الرخوة إلى أنبوب الطرد المركزي ، وضعها في الثلاجة لمدة 24 إلى 72 ساعة.

بعد التبريد ، اغسل عينة الأنسجة الرخوة بمحلول DPBS لمدة 1 ساعة. بعد ذلك ، قم بتلطيخ العينة عن طريق وضعها في 2 مل من محلول تلطيخ الإيوزين Y ، واحتضانها على لوحة اهتزاز أفقية لمدة 24 ساعة.

في اليوم التالي ، أخرج عينة الأنسجة الرخوة بعناية من حاوية العينة وقم بإزالة عامل التلوين الزائد باستخدام مناديل السليلوز. ضعه في وعاء مخروطي فوق مرحلة بخار الإيثانول للتخزين والاستخدام الإضافي.

07:41

جامدة التضمين من الثابتة والملون، إجمالاً، مقياس الملليمتر العينات 3D خالية من قسم علم الأنسجة بالتصوير المقطعي الصغيرة المحسوبة

فيديوهات ذات صلة

0 مرات المشاهدة

07:06

استخدام التصوير المقطعي المحوسب للأشعة السينية الدقيقة مع إعداد حمض فوسفيوالتنغستن لتصور الأنسجة الليفية البشرية

فيديوهات ذات صلة

0 مرات المشاهدة

09:09

الليزر التقاط Microdissection من المناطق دون الإقليمية ديوموما للتوصيف المكاني والجزيئي للتغاير داخل الورم، Oncostreams، والغزو

فيديوهات ذات صلة

0 مرات المشاهدة

02:43

التصوير الفلوري لاستعمار البكتيريا في أنسجة كلى الفئران

فيديوهات ذات صلة

0 مرات المشاهدة

03:43

تقنية تلطيخ الأعضاء بالكامل للتصوير ثلاثي الأبعاد للكلى

فيديوهات ذات صلة

0 مرات المشاهدة

09:16

هيئة الثقافة والجامع جبل المناعي تلون ماوس وولف القنوات

فيديوهات ذات صلة

0 مرات المشاهدة

10:22

دراسة مورفولوجيا القلب مشخصين وغذائها في الماوس

فيديوهات ذات صلة

0 مرات المشاهدة

08:37

العزلة، وتثبيت، وتصوير الفلورة الغدد الكظرية الماوس

فيديوهات ذات صلة

0 مرات المشاهدة

06:18

التطهير البصري والتصوير من أنسجة الكلى المسماة بالمناعة

فيديوهات ذات صلة

0 مرات المشاهدة

07:01

التصوير ثلاثي الابعاد لعينات الانسجه الرخوة باستخدام طريقه تلطيخ محدده للاشعه السينية ونانوسكوبيك المقطعية المحوسبة

فيديوهات ذات صلة

0 مرات المشاهدة

آخر تحديث: 1 أغسطس 2026