$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
ابدأ بفأر مخدر تم تشعيعه مسبقا لقمع الجهاز المناعي المضيف.
الحصول على الخلايا الجذعية المكونة للدم من فأر متبرع مختلف وراثيا لتقليد زرع الخلايا الجذعية الخيفية.
قم بإزالة الخلايا التائية المانحة باستخدام الخرز المغناطيسي.
حقن هذا التعليق المستنفد من الخلايا التائية في الفضاء خلف بصيلة الماوس المتلقي.
تدخل الخلايا المزروعة إلى مجرى الدم ، وتهاجر إلى أوعية نخاع العظام ، وتستخدم جزيئات الالتصاق لدخول المكان المناسب ، مما يؤدي إلى تكوين الدم.
حقن الخلايا الليمفاوية التائية الطحالية من فأر متبرع خيفي في الفضاء الخلفي للمتلقي للحث على التفاعل المناعي المتبادل.
تهاجر هذه الخلايا التائية النشطة إلى أنسجة مختلفة.
ترتبط مستقبلات سطح الخلية التائية بمستضدات الخلايا المتلقية ، وتتعرف عليها على أنها غريبة.
يؤدي هذا إلى سلسلة من أحداث الإشارات داخل الخلايا الليمفاوية التائية ، مما يؤدي إلى تنشيطها.
تؤدي
الخلايا التائية المنشطة إلى سلسلة التهابية تتميز بتجنيد خلايا مناعية إضافية تتلف بشكل جماعي الأنسجة المضيفة ، مما يؤدي إلى تطور مرض الكسب غير المشروع مقابل المضيف.
بعد يوم واحد من تشعيع الجسم الكلي للفئران المتلقية BALB / c ، ضع CD45.1 / Ly5.1 B6. ماوس مانح SJL في وضع الانبطاح على غمد عمل نظيف ، واستخدم طرفا منحنيا ومسننا بطول 13 سم من ملقط Semken لرفع الفراء عند كعب أخيل واحد.
باستخدام مقص ناعم مقوى بطول 8.5 سم بأطراف مستقيمة ، قم بشق الجلد بين الملقط وكعب واحد ، وإطالة الشق بشكل قحمي لتسهيل إزالة الجلد والفراء من الأطراف الخلفية. عندما تتم إزالة الجلد من الأطراف الخلفية ، قم بقطع كل مفصل في الورك والكاحل والركبة.
قم بتخزين الفخذ والساق من كل طرف خلفي في طبق بتري واحد مقاس 92 ملم مملوء ب PBS على الثلج ، وقم بإزالة أكبر قدر ممكن من العضلات بعناية من كل عظم ، ونقل كل عظم الفخذ والساق النظيفين إلى أنبوب سعة 50 مليلتر من وسط RPMI 1640 المعقم على الثلج الرطب.
لعزل نخاع العظم ، انقل عظمة واحدة في كل مرة إلى طبق بتري جديد مقاس 92 ملم مليء بوسط RPMI 1640 الطازج ، واستخدم مشرطا لقطع نهايات كل عظم. بعد ذلك ، استخدم حقنة سعة 1 مليلتر مزودة بإبرة قياس 26 لشطف العظام بمليلتر واحد من الوسط الطازج في كل مرة في أنبوب تجميع سعة 50 مليلتر يحتوي على خمسة ملليلتر من المتوسط.
عندما يتم مسح جميع العظام ، قم بسحب قطع نخاع العظم المتفتتة برفق لأعلى ولأسفل عدة مرات لتوليد معلق أحادي الخلية. قبل تصفية الخلايا من خلال مصفاة خلية شبكية بحجم 40 ميكرومتر في أنبوب تجميع جديد سعة 50 مليلتر ، قم بتقطيع الخلايا عن طريق الطرد المركزي ، وأعد تعليق الخلايا في خمسة ملليلتر من محلول تحلل البوتاسيوم بكلوريد الأمونيوم لمدة ثلاث دقائق في درجة حرارة الغرفة. في نهاية الحضانة ، أوقف التفاعل باستخدام 10 ملليلتر من PBS وقم بالطرد المركزي للخلايا مرة أخرى.
أعد تعليق الحبيبات في ملليلترين من PBS الطازج للعد ، واترك جانبا 6 × 106 خلايا لتحليل مقياس التدفق الخلوي. بعد ذلك ، استخدم مجموعة تنقية الخلايا المتوفرة تجاريا لاستنفاد الخلايا التائية الإيجابية CD90.2 مغناطيسيا من تعليق نخاع العظم أحادي الخلية وفقا لتعليمات الشركة المصنعة ، وخصص حصة 1 × 106 خلية من الشطف المستنفد للخلايا التائية لتحليل مقياس التدفق الخلوي لنقاء الخلية وتكوينها قبل وبعد الانفصال.
بعد ذلك ، استخدم حقنة سعة مليلتر واحد مزودة بإبرة قياس 30 لحقن خلايا نخاع العظم المستنفدة من الخلايا 5 × 105 T و 100 ميكرولتر من PBS عن طريق الوريد في المساحة الخلفية للجيوب الأنفية الوريدية لكل متلقي مشع.
في اليوم التالي ، ضع طحالا تم حصاده من متبرع على مصفاة شبكية 40 ميكرومتر في أنبوب تجميع سعة 50 مليلتر ، واستخدم مكبس حقنة للضغط على أنسجة الطحال عبر المصفاة في الأنبوب. اغسل المصفاة والمكبس باستخدام PBS لجمع كل خلايا الطحال ، وحبيبات الخلايا عن طريق الطرد المركزي ، بعد تحلل خلايا الدم الحمراء كما هو موضح. أعد تعليق خلايا الدم البيضاء للعد ، واترك جانبا 6 × 106 خلايا لتحليل مقياس التدفق الخلوي.
للحصول على عزل كامل للخلايا التائية الإيجابية CD3 عن خلايا الطحال الكلية ، استخدم مجموعة تنقية الخلايا المتاحة تجاريا وفقا لتعليمات الشركة المصنعة ، وخصص حصة 1 × 106 CD3 إيجابية للخلية التائية من جزء الخلية الموجب لتحليل التدفق الخلوي لنقاء الخلية وتكوينها ، قبل وبعد الانفصال. بعد ذلك ، قم بحقن 7 × 105 خلايا تائية إيجابية CD3 النشطة و 100 ميكرولتر من PBS عن طريق الوريد في المساحة الخلفية لكل فأر متلقي للحث على GvHD.