$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
خذ أنابيب مقياس الخلايا التي تحتوي على خليط تلطيخ يشتمل على أجسام مضادة أحادية النسيلة مصنفة بالفلورسنت معلقة في مخزن مؤقت للتحفيز.
أضف تركيزات متناقصة من مسببات الحساسية الاختبارية إلى عدة أنابيب. أضف الأجسام المضادة ل IgE إلى أنبوب واحد لتكون بمثابة عنصر تحكم إيجابي بوساطة IgE ، وأضف عازلة إلى أنبوب آخر للتحكم السلبي.
ماصة الدم المحيطي البشري في الأنابيب. حضن.
إذا كان الفرد حساسا لمسببات الحساسية الاختبارية ، فإن هذا التعرض يتسبب في ارتباط مسببات الحساسية بالأجسام المضادة IgE الخاصة بمسببات الحساسية المرتبطة بمستقبلات Fc على سطح القاعدة.
مسببات الحساسية متشابكة لمستقبلات IgE المرتبطة ب IgE ، مما يتسبب في تنشيط القاعدة.
تخضع الخلايا القاعدية لتحلل ، وتطلق حبيبات داخل الخلايا تحتوي على وسطاء التهابيين ، مع تنظيم جزيئات CD63 و CD203c.
ترتبط الأجسام المضادة أحادية النسيلة ذات العلامات الفلورية ب CD63 و CD203c و CCR3 على الخلايا القاعدية ، على التوالي.
اخفض درجة الحرارة لوقف تحلل القاعدة.
أضف عازلة لتحلل كريات الدم الحمراء وإصلاح الخلايا.
باستخدام مقياس التدفق الخلوي ، حدد الخلايا القاعدية من مجموعات الخلايا الليمفاوية.
باستخدام CD63 كعلامة تنشيط ، قم بتحليل تنشيط القاعدية عند تقليل تركيزات مسببات الحساسية.
ابدأ بجمع الدم المحيطي في أنابيب هيبارين سعة 9 ملليلتر ، وضع العينات في دوار للحفاظ عليها في درجة حرارة الغرفة حتى تكون مطلوبة للبروتوكول التجريبي.
قم بتسمية أنبوبين من أنبوب مقياس الخلوي سعة 5 ملليلتر لكل منهما للتحكم السلبي والتحكم الإيجابي. أيضا ، قم بتسمية أنبوب واحد لكل من مسببات الحساسية أو تركيزات الأدوية المختلفة التي يتم اختبارها. بعد ذلك ، ضع الأنابيب في رف بحيث تتناسب الأنابيب تماما دون الانزلاق.
للحصول على أول عنصر تحكم إيجابي ، قم بإعداد محلول 4 ميكرومولار من N-Formylmethionyl-leucyl-phenylalanine ، أو fMLP ، في 0.05٪ PBST لتأكيد جودة الخلايا القاعدية. بالنسبة للتحكم الإيجابي الثاني ، قم بإعداد محلول 0.05 ملليغرام لكل مليلتر مضاد ل IgE باستخدام PBST. قم بإعداد مزيج التلوين عن طريق إضافة 1 ميكرولتر لكل من الأجسام المضادة CCR3-APC و CD203c-PE و CD63-FITC لكل 20 ميكرولتر من المخزن المؤقت للتحفيز. ثم أضف 23 ميكرولترا من مزيج التلوين هذا إلى كل أنبوب.
أضف 100 ميكرولتر من PBST إلى أنابيب التحكم السلبية ، وأضف 100 ميكرولتر من fMLP إلى أحد أنابيب التحكم الإيجابية ، وأضف 100 ميكرولتر من مضاد IgE إلى الآخر. أضف إلى بقية الأنابيب 100 ميكرولتر من مسببات الحساسية أو تركيزات الأدوية المختلفة ، واحتضن عند 37 درجة مئوية لمدة 10 دقائق. بعد الحضانة ، أضف 100 ميكرولتر من الدم إلى كل أنبوب برفق لتجنب انحلال الدم. بعد ذلك ، قم بدوامة الأنابيب برفق واحتضانها لمدة 25 دقيقة عند 37 درجة مئوية في الحمام الحراري مع تحريك متوسط.
احتفظ بالأنابيب عند 4 درجات مئوية لمدة خمس دقائق على الأقل لإيقاف التحلل. أضف إلى كل أنبوب 2 مل من محلول التحلل لتحلل كريات الدم الحمراء. دوامة كل أنبوب ، ثم احتضان الأنابيب لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة. جهاز الطرد المركزي للأنابيب عند 300 × جم عند 4 درجات مئوية لمدة 5 دقائق. بعد ذلك ، اقلب الرف في الحوض لصب المادة الطافية بينما تبقى الخلايا في قاع الأنابيب. أضف 3 ملليلتر من PBST إلى كل أنبوب لغسل الخلايا ، وقم بتدوير الأنابيب. قم بإجراء جولة ثانية من الطرد المركزي باستخدام نفس مجموعة المعلمات وصب المادة الطافية عن طريق قلب الحامل في الحوض. بعد ذلك ، احتفظ بالعينات عند 4 درجات مئوية ، محمية من الضوء حتى قياس التدفق الخلوي.
قم بتوصيل مقياس التدفق الخلوي ببرنامج الكمبيوتر وانتظر حتى يصبح مقياس النسيج الخلوي جاهزا. قم بتحميل إعدادات القالب والأداة كما هو موضح في المخطوطة النصية. ابدأ عملية الحصول على العينة.
لتحديد الخلايا القاعدية المنشطة ، أولا ، احصل على الخلايا الليمفاوية من مخطط التشتت الجانبي - مبعثر أمامي. ثم احصل على الخلايا القاعدية من مجموعة الخلايا الليمفاوية كخلايا إيجابية CD203c CCR3 ، واحصل على ما لا يقل عن 500 قاعدية لكل أنبوب. اضبط عتبة CD63 السابية على حوالي 2.5٪ باستخدام أنابيب التحكم السلبية ، وقم بتحليل العينات.