$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
خذ خلايا الطحال المستنفدة لخلايا الدم الحمراء في مخزن مؤقت يحتوي على صبغة فلورية حساسة للكالسيوم في الخلية ، Indo-1 AM.
تشق الإستيرازات داخل الخلايا Indo-1 AM إلى Indo-1 غير منفذ للغشاء ، والذي يرتبط بأيونات الكالسيوم ، مما يؤدي إلى تغيير إشارة Indo-1 المضان من الأزرق إلى البنفسجي.
إدخال الأجسام المضادة الخاصة بالمستضد المترافق بالفلوروفور والتي ترتبط على وجه التحديد بالمستضدات المعنية على الخلايا.
باستخدام قياس التدفق الخلوي ، حدد الخلايا البائية المسماة بالفلوروفور وقم بقياس نسبة التألق الهندي -1 البنفسجي إلى الأزرق.
الآن ، عالج الخلايا بالجسيمات الشحمية المستضدية التي تتكون من شظايا IgM Fab المترافقة مع طبقات ثنائية الجسيمات الشحمية.
ترتبط مستقبلات الخلايا البائية بالمستضدات المقترنة بالجسيمات الشحمية ، مما يؤدي إلى تنشيط كينازات التيروزين السيتوبلازمية المرتبطة بها وتحفيز تنشيط فوسفوليباز-سي جاما -2.
يشق الفوسفوليباز-ج المنشط الغشاء فوسفوليبيد ، فوسفاتيديلينوسيتول 4،5-ثنائي الفوسفات ، مما يولد رسل ثان ، بما في ذلك الإينوزيتول 1،4،5- ثلاثي الفوسفات ، أو IP3.
يرتبط IP3 بقنوات الكالسيوم ذات البوابات IP3 على الشبكة الإندوبلازمية ، مما يؤدي إلى إطلاق أيونات الكالسيوم في السيتوبلازم.
تربط أيونات الكالسيوم هذه جزيئات Indo-1 غير المرتبطة ، مما يزيد من التألق البنفسجي.
تؤكد
نسبة التألق البنفسجي إلى الأزرق من Indo-1 في الخلايا البائية المسماة تنشيطها الناجح بواسطة الجسيمات الشحمية المستضدية.
لمراقبة استجابة الخلايا البائية لتنشيط الجسيمات الشحمية المستضدية ، قم بتعليق 1.5 × 107 من خلايا الطحال في المخزن المؤقت لتحميل تدفق الكالسيوم ، وأضف 1.5 ميكرومولار Indo-1 إلى الخلايا ، مع عكس المحلول في الأنبوب عدة مرات للخلط. بعد حضانة حمام مائي لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية محمية من الضوء ، أضف 5 أضعاف حجم المخزن المؤقت لتحميل تدفق الكالسيوم ، وقم بالطرد المركزي للخلايا التي تحمل علامة Indo-1.
بالنسبة لبوابات الخلايا البائية ، قم بتلطيخ الخلايا ذات الأجسام المضادة المضادة ل CD5 ومضادة ل B220 في 0.5 مل من المخزن المؤقت للتحميل عند 4 درجات مئوية لمدة 20 دقيقة محمية من الضوء. في نهاية الحضانة ، اغسل الخلايا في عازلة تحميل تدفق الكالسيوم الطازجة ، وأعد تعليق الحبيبات عند 1 إلى 2 × 107 خلايا لكل مليلتر من تدفق الكالسيوم الطازج الذي يعمل بمخزن مؤقت للتخزين على الجليد المحمي من الضوء ، حتى التحليل.
بعد ذلك ، أضف 0.5 مل من الخلايا إلى أنبوب البوليسترين المستدير القاع سعة 5 ملليلتر ، وقم بتسخين الخلايا إلى 37 درجة مئوية في حمام مائي. بعد 3 إلى 5 دقائق ، انقل الأنبوب إلى غرفة مغلفة بالماء بدرجة حرارة 37 درجة مئوية متصلة بحمام مائي معاد تدويره ، وقم بتشغيل الأنبوب في سترة الماء على مقياس التدفق الخلوي.
بعد جمع 5,000 إلى 10,000 حدث في الثانية ، اسمح للخلايا بالاستقرار لمدة 15 إلى 30 ثانية ، وأعد بدء الحصول على البيانات ، وجمع البيانات لمدة 10 ثوان على الأقل لإنشاء قراءة للخلفية. عند علامة 10 ثوان ، قم بإزالة الأنبوب بسرعة من مقياس التدفق الخلوي ، وأضف التركيز التجريبي المناسب للجسيمات الشحمية المستضدية. بعد ذلك ، قم بتدوير الخلايا ، واقرأ الأنبوب الموجود على مقياس الخلايا لمدة 3 إلى 5 دقائق إضافية.