JoVE Encyclopedia of Experiments
علم الأعصاب
0 مشاهدات • 3:40 د • April 28th, 2025
تأمين شريحة حصين الفأر العضوي في غرفة تجريبية.
تحتوي الشريحة على خلايا عصبية وخلايا نجمية منقولة تعبر عن مستشعر ATP مع بروتينات الفلورسنت المانحة والمتقبلة.
ضع الغرفة على مرحلة المجهر الفلوري وقم بتثبيتها باستخدام ACSF المؤكسج.
السماح للشريحة بالتكيف مع الظروف المخزنة مؤقتا.
باستخدام ضوء الإرسال ، ركز الشريحة وحدد مجال الاهتمام.
قم بالتبديل إلى وضع التألق وإثارة البروتين الفلوري المتبرع لبدء الانبعاث الفلوري.
عند ربط ATP، يخضع المستشعر لتغييرات توافقية، مما يتيح نقل الطاقة المستندة إلى التألق من المانح إلى المتقبل، الذي ينبعث منه التألق بطول موجي أطول.
استخدم مرآة ثنائية اللون ومرشحات ممر النطاق لعزل وفصل انبعاثات المانحين والمتقبلين.
حدد منطقة بدون مضان لطرح الخلفية. بعد ذلك ، حدد الخلايا المستهدفة وسجل تألقها بمرور الوقت.
احسب نسبة FRET لمراقبة مستويات ATP داخل الخلايا في الوقت الفعلي.
قم بإعداد ACSF التجريبي واحصل على درجة حموضة 7.4 عن طريق فقاعاته بنسبة 95٪ أكسجين و 5٪ ثاني أكسيد الكربون من خلال أنبوب مدخل متصل بإمداد الكربوجين لمدة 30 دقيقة على الأقل. حافظ على المحلول الملحي في فقاعات خلال التجربة بأكملها. ثم قم بتشغيل مصدر ضوء الفلورسنت في أحادي اللون.
انقل ثقافة الشرائح العضوية إلى الغرفة التجريبية. ضع شبكة فوق ثقافة الشريحة العضوية مع الإطار لأسفل ، دون لمس الثقافة ، والخيوط لأعلى ، ولمس الغشاء. ضع الغرفة على مرحلة المجهر وقم بتوصيلها بنظام التروية.
قم بتشغيل المضخة التمعجية بمعدل تدفق يتراوح من 1.5 إلى 2.5 مل في الدقيقة. تأكد من عدم وجود تسرب لنظام التروية. باستخدام ضوء الإرسال ، قم بتركيز الشريحة المستزرعة وتحديد المنطقة التي سيتم إجراء التجارب فيها.
قبل البدء في تجارب التصوير، انتظر 15 دقيقة على الأقل للسماح للشرائح بالتكيف مع الظروف المالحة. ثم قم بتشغيل الكاميرا وبرنامج التصوير. قم بإثارة البروتين الفلوري المتبرع عند 435 نانومتر. اضبط وقت التعريض الضوئي على ما بين 40 إلى 90 مللي ثانية.
بعد ذلك ، أدخل المرآة ثنائية اللون والمرشحات في وحدة مقسم الحزمة. قم بتقسيم انبعاث التألق عند 500 نانومتر باستخدام مقسم صورة الانبعاث ، واستخدم مرشحات ممر النطاق عند 482 زائد أو ناقص 16 و 542 زائد أو ناقص 13.5 نانومتر لعزل مضان المتبرع والمستقبل.
حدد منطقة اهتمام خالية من التألق الخلوي على ما يبدو لطرح الخلفية. ضع دائرة حول الهياكل الفردية للأنسجة المسماة في الصورة على الشاشة لإنشاء عائد استثمار. اضبط تكرار الحصول على الصورة في وقت التسجيل الإجمالي. بالنسبة للتجارب التي تزيد مدتها عن 30 دقيقة ، يوصى بتكرار اكتساب من 0.2 إلى 0.5 هرتز لمنع السمية الضوئية. بعد ذلك ، ابدأ التسجيل.
تصف هذه المقالة طريقة لمراقبة مستويات ATP داخل الخلايا في الوقت الفعلي باستخدام نقل طاقة الرنين الفلوريسنتي (FRET) في شرائح حصين الفئران ذات البنية العضوية. يتضمن هذا النهج استخدام عصبونات وخلايا نجمية محولة تعبر عن مستشعر ATP يحتوي على بروتينات فلورية مانحة ومستقبلة.
تتيح مراقبة ديناميكيات ATP داخل الخلايا في أنسجة الدماغ الحية تقليل المخاطر الميكانيكية للأهداف العلاجية العصبية من خلال ربط حالات الطاقة الخلوية بالنتائج الوظيفية. ويدعم هذا النهج القائم على تقنية FRET التحقق من الأهداف في مراحل الاكتشاف المبكرة من خلال توفير قراءات كمية وفي الوقت الفعلي لعمليات الأيض العصبية والدبقية تحت الظروف الفسيولوجية. وتعزز هذه الطريقة الثقة التنبؤية في النماذج قبل السريرية عن طريق الحفاظ على بنية الأنسجة مع السماح بالتقييم الطولي لتقلبات ATP استجابةً للاضطرابات الدوائية أو الجينية.
تندرج هذه الطريقة ضمن سلسلة عمليات الاكتشاف، بدءاً من التحقق الأولي من الهدف وصولاً إلى التوصيف قبل السريري، حيث تساهم مراقبة ATP في الوقت الفعلي في فهم كل من آلية العمل وتقييم السمية الخلوية.
فيديوهات ذات صلة
0 مرات المشاهدة
فيديوهات ذات صلة
0 مرات المشاهدة
فيديوهات ذات صلة
0 مرات المشاهدة
فيديوهات ذات صلة
0 مرات المشاهدة
فيديوهات ذات صلة
0 مرات المشاهدة
فيديوهات ذات صلة
0 مرات المشاهدة
فيديوهات ذات صلة
0 مرات المشاهدة
فيديوهات ذات صلة
0 مرات المشاهدة
فيديوهات ذات صلة
0 مرات المشاهدة
فيديوهات ذات صلة
0 مرات المشاهدة
آخر تحديث: 29 أغسطس 2026