What are the three main stages of the Western blot technique?

The three principal stages are electroblotting, immunoblotting, and detection. Electroblotting transfers proteins from a polyacrylamide gel onto a membrane using an electric field. Immunoblotting uses antibodies to probe the membrane for specific proteins. Detection uses reporter enzymes linked to antibodies that produce measurable signals through color or light changes.

How does the electroblotting sandwich work during protein transfer?

The electroblotting sandwich consists of a gel and specialized membrane sandwiched between two filter paper pieces. An electric field moves proteins through the gel, where they become trapped on the membrane via charged and hydrophobic interactions. Bubbles must be removed during assembly, as they interrupt protein transfer and cause incomplete results on the membrane.

Why are monoclonal antibodies preferred for Western blotting?

Monoclonal antibodies recognize a single epitope, or specific protein portion, providing high specificity for detecting target proteins. Monoclonal antibodies recognizing linear epitopes are especially preferred because they bind denatured proteins. This contrasts with polyclonal antibodies, which target multiple epitopes, and conformational antibodies, which only recognize native 3D protein structures.

What is the purpose of blocking in the immunoblotting process?

Blocking covers remaining membrane areas with a dilute protein solution to reduce nonspecific antibody binding. Blocking solutions typically contain bovine serum albumin or non-fat dry milk dissolved in buffered saline. This step, performed for one hour to overnight with gentle agitation, prevents background staining and improves signal specificity.

How do reporter enzymes enable protein detection in Western blots?

Reporter enzymes like alkaline phosphatase or horseradish peroxidase are linked to antibodies through their Fc region. Upon substrate addition, these enzymes produce colorimetric or chemiluminescent signals that can be imaged. The resulting signal intensity is then measured using densitometry, which quantifies protein band density through image analysis software.

What information does the protein ladder provide in a Western blot?

The protein ladder provides size reference markers that allow researchers to estimate each detected protein's molecular weight based on migration distance in the gel. This helps verify that the antibody recognizes the correct protein and determines whether a monomer or multiple protein copies are present, confirming the specificity of antibody binding.

How can Western blotting reveal protein-protein interactions?

Proteins are transferred from a gel onto a nitrocellulose membrane, then probed with additional proteins. Immunoblotting detects whether added proteins complex with immobilized membrane proteins. This approach, combined with 2D gel electrophoresis separating protein complexes by size then individual proteins, visualizes protein interactions and identifies complex composition.

لطخة ويسترن (Western Blot)

0 مشاهدات08:48 د

تُعد تقنية لطخة وسترن (Western Blotting) تقنية قوية يستخدمها العديد من الباحثين لتحديد وجود بروتينات محددة في عينة مفصولة كهربائياً باستخدام الأجسام المضادة.

هناك 3 مراحل رئيسية لهذه التقنية تعد أساسية للحصول على نتيجة عالية الجودة: وهي النقل الكهربائي (Electroblotting)، واللطخة المناعية (Immunoblotting)، والكشف (Detection). وقبل الشروع في هذه المراحل، يجب إجراء الفصل الكهربائي للهلام بوجود SDS (SDS-PAGE)، حيث يتم فصل البروتينات الممسوخة حسب الحجم في هلام بولي أكريلاميد.

يُعرف النقل الكهربائي أيضاً باسم "النقل" في تحليل Western، ويتطلب كاسيت نقل لتثبيت "الشطيرة" (sandwich)، بالإضافة إلى جهاز لنقل البروتين من هلام الأكريلاميد إلى غشاء رقيق. تتكون شطيرة النقل الكهربائي من الهلام وغشاء متخصص، يوضعان بين قطعتين من ورق الترشيح. وأثناء عملية النقل، يتم استخدام مجال كهربائي لتحريك البروتينات عبر الهلام، حيث تلتصق بالغشاء نتيجة التفاعلات الكهرومغناطيسية والكارهة للماء.

تستخدم اللطخة المناعية الأجسام المضادة "لسبر" الغشاء بحثاً عن بروتينات محددة. الأجسام المضادة هي بروتينات كبيرة على شكل حرف Y تحتوي على جزأين، يُعرفان أيضاً بمناطق Fab، واللذين يرتبطان ببروتينات أخرى. تحدد منطقة Fab الحاتمة (epitope) المحددة، أو جزءاً معيناً من البروتين، الذي سيرتبط به الجسم المضاد.

الأجسام المضادة أحادية النسيلة (Monoclonal antibodies) هي أجسام مضادة تتعرف على حاتمة واحدة، وهي النوع المفضل استخدامه في اللطخة المناعية نظراً لخصوصيتها العالية. وفي المقابل، الأجسام المضادة متعددة النسيلة (polyclonal antibodies) هي سلسلة من الأجسام المضادة المختلفة التي تستهدف حاتمات عديدة على نفس المستضد (antigen) - أو البروتين الذي يمتلك الجسم المضاد خصوصية تجاهه. ويُفضل استخدام الأجسام المضادة أحادية النسيلة التي تتعرف على حاتمة خطية لضمان إمكانية العثور على الحاتمة في بروتين ممسوخ أو خطي. وهذا أمر مهم لأن العديد من الأجسام المضادة لا تتعرف إلا على الحاتمات التشكلية، مما يعني أنها تتعرف على البروتينات في حالتها الطبيعية ثلاثية الأبعاد فقط.

بالإضافة إلى أجزاء Fab، تحتوي الأجسام المضادة على منطقة Fc، وهي خاصة بالحيوان الذي أنتج الجسم المضاد. وفي اللطخة المناعية، تُستخدم هذه المنطقة بشكل أساسي كحاتمة لجسم مضاد ثانوي - وهو جسم مضاد يتعرف على الجسم المضاد الأول الذي ارتبط بالبروتين المراد الكشف عنه.

ومن أجل إنتاج إشارة يمكن ملاحظتها، غالباً ما يتم ربط الأجسام المضادة، عبر منطقة Fc، بإنزيم كاشف، مثل الفوسفاتيز القلوي (alkaline phosphatase) أو بيروكسيداز الفجل (horseradish peroxidase). تنتج هذه الإنزيمات الكاشفة إشارات من خلال التفاعل مع الركائز لإحداث تغييرات في اللون أو إنتاج تغييرات ضوئية.

يمكن بعد ذلك قياس هذه التغييرات كمياً باستخدام قياس الكثافة (densitometry). وقياس الكثافة هو التقنية المستخدمة لقياس كثافة حزمة البروتين باستخدام برنامج تحليل الصور لحساب كثافة كل حزمة. ويمكن بعد ذلك قياس الحزم كمياً بشكل مباشر باستخدام معايير مرجعية أو التحكم داخلياً باستخدام عينة ضابطة.

لضمان نجاح عملية النقل في تحليل Western، يتم أولاً موازنة الهلام (gel) في محلول نقل (transfer buffer) لمدة 15 دقيقة. كما يجب موازنة الغشاء وفقاً لتعليمات الشركة المصنعة.

بعد ذلك، يتم تحضير شطيرة نقل الهلام بعناية في محلول النقل لمنع انحباس الفقاعات داخل النظام. ويمكن إخراج الفقاعات المحتبسة في الشطيرة عن طريق تمرير ماصة صغيرة فوقها. حتى الفقاعات الصغيرة يمكن أن تعيق نقل البروتينات، مما يؤدي إلى نقل غير مكتمل كما هو موضح في الأجزاء السفلية من هذا الغشاء.

بمجرد التجميع، يُصب المزيد من محلول النقل في غرفة النقل، ويتم تشغيل الجهاز بتيار يتراوح بين 20-30 mA لمدة 2-3 ساعات. يحتوي محلول النقل على الميثانول، الذي يعزز ارتباط البروتينات بالغشاء.

عند اكتمال عملية النقل، يتم تفكيك الكاسيت ويمكن التحقق من جودة النقل باستخدام صبغة بروتينية غير متخصصة مثل Ponceau S، حيث يتيح ذلك كشفاً سريعاً وعكسياً لحزم البروتين.

تتمثل الخطوة الأولى من عملية اللطخة المناعية (immunoblotting) في تغطية المناطق المتبقية من الغشاء بمحلول مخفف من البروتينات. تُسمى هذه الخطوة بالمنع (blocking)، وتُجرى بهدف سد مسام الغشاء وتقليل الارتباط غير النوعي للأجسام المضادة بالغشاء. وعادةً ما يتكون محلول المنع إما من ألبومين المصل البقري أو الحليب المجفف خالي الدسم المذاب في محلول ملحي منظم. وتُنفذ هذه الخطوة عادةً لمدة تتراوح من ساعة واحدة إلى ليلة كاملة على جهاز هزاز.

الخطوة التالية هي تحضين الغشاء مع الجسم المضاد الأولي المخفف في محلول المنع. قد تستغرق هذه الخطوة من 30 دقيقة إلى ليلة كاملة، ويجب إجراؤها مع تحريك لطيف.

بعد ذلك، يُشطف الغشاء جيداً لتقليل تلون الخلفية غير النوعي، ثم يُضاف الجسم المضاد الثانوي في محلول المنع إلى الغشاء. وبعد تحضين قصير، يُشطف الغشاء جيداً مرة أخرى.

يمكن الكشف عن الأجسام المضادة الثانوية بفضل الإنزيمات المراسلة المرتبطة بها. وعند إضافة الركيزة الصحيحة، يمكن تصوير التغيرات اللونية أو التلألؤ الكيميائي ثم قياسها باستخدام تقنيات قياس الكثافة (densitometry). بالإضافة إلى ذلك، يوفر سلم البروتين مرجعاً قياسياً للحجم، بحيث يمكن تقدير الحجم الخطي لكل بروتين بناءً على المسافة التي هاجرها في الهلام بالنسبة لعلامات الحجم في السلم. ويعد رصد حجم البروتينات المكتشفة عبر اللطخة المناعية وسيلة جيدة للتحقق من أن الجسم المضاد يتعرف على البروتين الصحيح، ومعرفة ما إذا كان البروتين الظاهر هو مونومر (monomer) أم نسخ متعددة من البروتين.

تتوفر آلاف الأجسام المضادة الأولية تجارياً، مما يتيح الكشف عن بروتينات محددة وتقدير كميتها داخل العينة. يستخدم الباحث هنا جسماً مضاداً لـ HIF-1α لقياس كمية عامل النسخ هذا المستجيب للأكسجين في المزارع الخلوية للكشف عن نقص الأكسجة. كما استخدموا جسماً مضاداً لـ beta-actin ليكون بمثابة ضابط تحميل (loading control). وكما تلاحظون، فإن الخلايا التي زُرعت في ظروف أكسجين طبيعية أنتجت كمية أقل بكثير من HIF-1 مقارنة بتلك التي زُرعت في ظروف أكسجين منخفضة.

يمكن أن يوفر الجمع بين الفصل الكهربائي للهلام ثنائي الأبعاد (2D gel electrophoresis) والبصمة المناعية (immunoblotting) معلومات قيمة حول وجود المعقدات البروتينية. هنا، تم تشغيل العينات أولاً وفقاً لحجم المعقد البروتيني، ثم تم تغيير طبيعتها (denatured) بحيث يمكن فصل كل بروتين فردي في المعقد وفقاً لحجمه الفردي. وتظهر الأجسام المضادة لثلاثة بروتينات مختلفة ثلاثة معقدات فريدة تحتوي على أعداد متفاوتة من هذه البروتينات، حيث يتوزع كل معقد في خط عمودي. يحتوي العمود الموجود في أقصى اليسار على beta-2 و MCP-21، بالإضافة إلى بروتين آخر لا تظهره هذه العلامات. ويظهر العمود الأوسط معقداً يحتوي على البروتينات الثلاثة جميعها، بينما يحتوي العمود الأيمن على beta-2 و MCP-21 فقط.

يمكن استخدام البصمة المناعية أيضاً لتصور التفاعلات بين البروتينات والبروتينات. يتم ذلك أولاً بنقل البروتينات من الهلام إلى غشاء نيتروسليلوز، ثم سبر ذلك الغشاء باستخدام بروتينات إضافية. بعد ذلك، تُستخدم البصمة المناعية للكشف عما إذا كانت البروتينات المضافة قد شكلت معقدات مع أي من البروتينات التي تم تثبيتها على الغشاء.

لقد شاهدت للتو فيديو JoVE حول لطخة المناعة (immunoblotting). يجب أن تكون الآن مدركاً لكيفية نقل البروتينات إلى غشاء، وفحص الغشاء باستخدام الأجسام المضادة، والكشف عن الإشارة. كما هو الحال دائماً، نشكركم على المشاهدة!

تُستخدم تقنية لطخة ويسترن (Western Blotting) لتحديد وجود بروتينات معينة في عينات مفصولة كهربائياً. وبعد الفصل باستخدام تقنية تُعرف باسم الفصل الكهربائ…

Browse More Videos

SDS PAGE