-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
البروتين البروتين التفاعلات تصور من قبل ثنائي الجزيء الإسفار التكملة في Protoplasts التبغ وأوراق
البروتين البروتين التفاعلات تصور من قبل ثنائي الجزيء الإسفار التكملة في Protoplasts التبغ وأوراق
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Protein-protein Interactions Visualized by Bimolecular Fluorescence Complementation in Tobacco Protoplasts and Leaves

البروتين البروتين التفاعلات تصور من قبل ثنائي الجزيء الإسفار التكملة في Protoplasts التبغ وأوراق

Full Text
21,573 Views
11:10 min
March 9, 2014

DOI: 10.3791/51327-v

Regina Schweiger1, Serena Schwenkert1

1Department Biologie I, Botanik,Ludwig-Maximilians-Universität, München

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

تشكيل مجمعات البروتين في الجسم الحي يمكن تصور من قبل ثنائي الجزيء تكامل مضان. وتنصهر شركاء التفاعل إلى أجزاء مكملة من العلامات الفلورية وأعرب عابر في أوراق التبغ، مما أدى إلى إعادة تشكيل إشارة الفلورسنت على مقربة من البروتينات اثنين.

الهدف العام من التجربة التالية هو مراقبة تفاعل بروتينين يتم التعبير عنهما في أوراق التبغ السليمة. يتم تحقيق ذلك من خلال تصميم التركيبات المناسبة ، ودمج الجينات ذات الأهمية لتقسيم بروتينات الفلورسنت وتحويل هذه التركيبات إلى بكتيريا زراعية. كخطوة ثانية ، يتم خلط مزارع البكتيريا الزراعية وحقنها في أوراق التبغ ، مما يؤدي إلى التعبير عن البروتينات وإشارة الفلورسنت المعاد تكوينها.

إذا كانت البروتينات على مقربة ، بعد ذلك ، يتم تحليل الأوراق الكاملة أو البروتوبلاستات المعزولة تحت المجهر. تم الحصول على النتائج التي تظهر تفاعلات البروتين البروتيني بناء على إشارة الفلورسنت المنبعثة التي تم اكتشافها بواسطة المجهر الفلوري. الميزة الرئيسية لهذه التقنية للطرق الحالية مثل الترسيب المناعي أو الخميرة إلى الهجين هي أنه يمكن مراقبة تفاعل البروتين البروتيني مباشرة في الخلية النباتية الحية.

يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على الأسئلة الرئيسية في مجال بيولوجيا النبات ، مثل تكوين مجمعات البروتين في المقصورات الخلوية المختلفة. لبدء هذا الإجراء ، قم بزراعة البكتيريا الزراعية لاستخدامها في تحويل أوراق التبغ. تلقيح 10 ملليلتر من وسط LB الذي يحتوي على المضادات الحيوية المناسبة مع 50 ميكرولتر من AG L واحد مزرعة مخزون الجلسرين التي تحتوي على البلازميد محل الاهتمام في أنبوب معقم سعة 50 مل.

احتضان عند 28 درجة مئوية لمدة 24 ساعة على الأقل ، مع الاهتزاز عند 190 دورة في الدقيقة حتى تصل الثقافة إلى OD 600 بين 1.0 و 2.0 في اليوم التالي. الطرد المركزي البكتيريا عند 3000 مرة G لمدة 15 دقيقة. بعد التخلص من التجسيد الطافي ، قم بتعليق الحبيبات في وسط التسلل المصنوع حديثا واضبط التعليق على OD 600 من 1.0.

احتضان خلايا البكتيريا الزراعية في شاكر علوي لمدة ساعتين في الظلام في درجة حرارة الغرفة لتسلل أوراق التبغ. اختر عدة أوراق قديمة من نبات التبغ عمره ثلاثة أسابيع. تخلط أحجام متساوية.

ثلاثة ملليلتر كل من البكتيريا الزراعية تحمل التركيبات ذات الأهمية. املأ حقنة سعة خمسة ملليلتر بدون إبرة بخليط تعليق الخلية لتسلل معلق الخلية إلى أوراق التبغ. اضغط بحذر على المحقنة الموجودة على الجانب السفلي من الأوراق في عدة أماكن ، وسقي النباتات واتركها مغطاة ومحمية من الضوء لمدة يومين.

لعزل البروتوبلاست من الورقة المتسربة ، ضع الورقة أولا في طبق بتري وأضف بعض محلول الإنزيم الطازج. باستخدام شفرة حلاقة جديدة ، قم بتقطيع الورقة إلى قطع بحجم 0.5 سم مربع تقريبا. بعد ذلك ، انقل قطع الأوراق بمحلول الإنزيم إلى فراغ.

قارورة التسلل. تسلل بالمكنسة الكهربائية لمدة 20 ثانية تقريبا حتى تخرج فقاعات الهواء من الأوراق. حرر المكنسة الكهربائية بعناية فائقة.

رج القارورة لمدة 90 دقيقة عند 40 دورة في الدقيقة في الظلام في درجة حرارة الغرفة بعد 90 دقيقة. حرر البروتوبلاستيات عن طريق الاهتزاز لمدة دقيقة واحدة عند 90 دورة في الدقيقة. قم بتصفية المحلول من خلال الشاش في أنبوب طرد مركزي دائري القاع سعة 15 مل.

قم بتراكب محلول البروتوبلاست بملليلترين من المخزن المؤقت FPCN والطرد المركزي لمدة 10 دقائق عند 70 ضعف G مع تسارع وتباطؤ بطيء في درجة حرارة الغرفة. سوف تتراكم البروتوبلاستات السليمة عند الواجهة بين محلول الإنزيم و FPCN باستخدام فتحة عريضة برأس ماصة واحد مليلتر لنقل البروتوبلاستات السليمة إلى أنبوب طرد مركزي جديد. لنجاح هذا الإجراء ، استخدم دائما أطراف الفتحة البيضاء لمنع تمزق البروتوبلاست السليم.

املأ الأنبوب بجهاز طرد مركزي W Five عازلة لمدة دقيقتين عند 100 ضعف G مع تسارع وتباطؤ بطيئين. لتكميل البروتوبلاست ، قم بإزالة المادة الطافية بعناية وأعد تعليق الحبيبات. في تقريبا 200 ميكرولتر من W خمسة عازلة ، اعتمادا على كمية البروتوبلاست.

لتحضير عينة من البروتوبلاست للفحص المجهري للمسح الضوئي بالليزر ، بالسرعة الأولى ، شريطان صغيران من مادة مانعة للتسرب على بعد حوالي سنتيمترين على شريحة مجهرية. ضع 20 ميكرولترا من محلول البروتوبلاست بين الشرائط وضع غطاء زجاجي بعناية في الأعلى. ستمنع شرائط مانع التسرب سحق البروتوبلاست بواسطة زجاج الغطاء.

لتحضير عينة كاملة من الورقة للفحص المجهري بالمسح بالليزر ، قم بقص قطعة بطول سنتيمتر واحد من الورقة وضعها على شريحة مجهرية بحيث يكون الجانب السفلي من الورقة متجها لأعلى. أضف ما يقرب من 30 ميكرولتر من الماء. ضع غطاء زجاجي في الأعلى وثبته بإحكام بشريط لاصق على كلا الجانبين.

يتم إجراء التصوير باستخدام مجهر المسح الضوئي بالليزر متحد البؤر من نوع MICCA TCS SP five للتكبير. استخدم عدسة موضوعية بحجم 63 × مع الجلسرين كوسيط تصوير ، واستخدم برنامج الفلورسنت المتقدم لمجموعة تطبيقات Leica للتقييم. اضبط ليزر Argonne على 30٪ وقوة الليزر على 488 نانومتر إلى شدة 18٪ لمراقبتها إشارة عند 515 نانومتر ، قم بتعيين أول عرض نطاق ترددي لانبعاثات كاشف PMT من 495 إلى 550 نانومتر.

لمراقبة التألق الذاتي للكلوروفيل. قم بتعيين عرض نطاق ترددي ثان لانبعاثات كاشف PMT من 650 إلى 705 نانومتر. لمراقبة إشارة M cherry ، استخدم ليزر HENI 5 61.

اضبط شدة الليزر على 18٪ وعرض النطاق الترددي الثالث لانبعاثات كاشف PMT من 587 إلى 610 نانومتر. تأكد من التقاط الصور من جميع قنوات كاشف PMT بنفس إعدادات الكسب. يجب أن يتراوح الكسب بين 800 و 900 لاستبعاد إشارات الخلفية.

احصل على صور بهذا التنسيق والعرض والارتفاع 1024 × 1024 بكسل بسرعة مسح 100 هرتز. بالنسبة لتكديس Z ، استخدم مسافة قصوى تبلغ 0.5 ميكرون بين كل كومة. في هذه الدراسة ، تم استخدام طريقة BFC لمراقبة تفاعل المرافق الجزيئي العصاري الخلوي HSP 90 مع بروتينات الإرساء الغشائية TPR seven و 64.

كما هو موضح في هذا التخطيطي ، يقترن كوكب الزهرة بالجزء العصاري الخلوي من TPR سبعة ، والذي يقع في الشبكة الإندوبلازمية أو 64 ، الذي يقع في الغلاف الخارجي للبلاستيدات الخضراء. Hs.P 90 هو N مدمج نهائيا مع SCFP مما يتيح التفاعل بين مجالات TPR للحديث 64 و TPR السابع مع HSP 90 C ، Terminus ، يتم التعبير عن SCFP وحده في العصارة الخلوية كعنصر تحكم سلبي للتحقق من توطين مركب بروتين TPR سبعة HS P 90. تم تحويل TPR seven و HS P 90 بشكل مشترك مع علامة ER.

تمت مراقبة التألق في الأوراق السليمة كعنصر تحكم. تم التعبير عن SCFP وحده جنبا إلى جنب مع TPR سبعة وعلامة ER. في جميع الصور المعروضة ، يمثل شريط المقياس 10 ميكرون.

تظهر الألواح الموجودة على اليسار مضان معاد تشكيله باللون الأخضر مراقب عند 515 نانومتر. تظهر علامة ER باللون الأحمر. في اللوحات الوسطى ، يظهر تراكب كلتا الإشارتين في اللوحات اليمنى.

تم رصد إشارة معاد تشكيلها ل TPR سبعة مع HS P 90 متداخلة مع علامة ER التي تظهر باللون الأصفر. في المقابل ، لم تتم مراقبة أي إشارة ل TPR سبعة والتحكم السلبي مثل CFP. في المثال التالي ، تم التعبير عن بروتين البلاستيدات الخضراء 64 مع HS P 90 كعنصر تحكم.

تم التعبير عن Tox 64 بالاشتراك مع SCFP وحده. كما كان من قبل ، تمت مراقبة التألق المعاد تشكيله باللون الأخضر عند 515 نانومتر. تظهر الألواح الوسطى التألق الذاتي للكلوروفيل الذي تم مراقبته عند 480 نانومتر.

في اللون الأحمر يظهر تراكب لكلتا الإشارتين في اللوحات اليمنى. لوحظ التألق المعاد تكوينه في الخلايا التي تعبر عن السموم 64 و HSP 90 ، ولكن ليس في الخلايا. Coex يعبر عن السموم 64 و SCFP وحده.

نظرا لأنه يصعب تحديد التوطين الدقيق للسموم 64 و HSP 90 في الصور المجهرية للأوراق بأكملها. تم عزل البروتوبلاستات من أوراق التبغ المتسللة للفحص المجهري الفلوري. كما كان من قبل ، تمت مراقبة التألق المعاد تشكيله عند 515 نانومتر تمت مراقبة التألق الذاتي للكلوروفيل عند 480 نانومتر وتم إنشاء صور تراكب كما هو موضح في صورة التراكب هذه إلى 64 ويمكن اكتشاف HSP 90 كهياكل على شكل حلقة تحيط بالبلاستيدات الخضراء.

بعد مشاهدة هذا الفيديو ، يجب أن يكون لديك فهم جيد لكيفية تصميم التركيبات الخاصة بك ، وتحويل أوراق التبغ ، وأفضل طريقة لتصور إشارة الفلورسنت التي توضح تفاعل البروتينين اللذين يثير اهتمامك.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

علم الأحياء النباتية العدد 85 Tetratricopeptide تكرار المجال كوصي البلاستيدات الخضراء الشبكة الإندوبلازمية HSP90 معقدة توك translocon ثانية BiFC

Related Videos

ثنائي الجزيء الإسفار التكملة (BiFC) الفحص عن البروتين البروتين في خلايا البصل التفاعل باستخدام مدفع الجينات هيليوس

10:39

ثنائي الجزيء الإسفار التكملة (BiFC) الفحص عن البروتين البروتين في خلايا البصل التفاعل باستخدام مدفع الجينات هيليوس

Related Videos

20K Views

الإسفار التكملة ثنائي الجزيء

08:54

الإسفار التكملة ثنائي الجزيء

Related Videos

28.4K Views

الفحص البروتين تراكب الأغشية : بروتوكول لاختبار التفاعل بين البروتينات القابلة للذوبان وغير القابلة للذوبان في المختبر

08:38

الفحص البروتين تراكب الأغشية : بروتوكول لاختبار التفاعل بين البروتينات القابلة للذوبان وغير القابلة للذوبان في المختبر

Related Videos

22.4K Views

الكشف عن تفاعلات البروتين في النبات باستخدام عبارة الإسفار ثنائي الجزيء المتوافقة التكملة (BiFC) نظام

08:21

الكشف عن تفاعلات البروتين في النبات باستخدام عبارة الإسفار ثنائي الجزيء المتوافقة التكملة (BiFC) نظام

Related Videos

25.7K Views

التصوير إعادة التنظيم المكاني لMAPK اشارة المسار باستخدام نظام التعبير عابر التبغ

08:54

التصوير إعادة التنظيم المكاني لMAPK اشارة المسار باستخدام نظام التعبير عابر التبغ

Related Videos

10.1K Views

لوسيفراس "التكامل بالتصوير الإنزيم" في أوراق نيكوتيانا بينثاميانا "تحديد عابر ديناميات التفاعل" البروتين-بروتين

07:55

لوسيفراس "التكامل بالتصوير الإنزيم" في أوراق نيكوتيانا بينثاميانا "تحديد عابر ديناميات التفاعل" البروتين-بروتين

Related Videos

14.6K Views

التعبير المشارك من البروتينات الانصهار الفلورسنت تشيميريك متعددة بطريقة فعالة في النباتات

09:45

التعبير المشارك من البروتينات الانصهار الفلورسنت تشيميريك متعددة بطريقة فعالة في النباتات

Related Videos

10.1K Views

TurboID القائم على القرب العلامات في تحديد بلانتا لشبكات التفاعل البروتين البروتين

07:02

TurboID القائم على القرب العلامات في تحديد بلانتا لشبكات التفاعل البروتين البروتين

Related Videos

25.5K Views

تحديد التفاعل الثلاثي بين اثنين من مونومرات من عامل النسخ MADS مربع وبروتين استشعار الكالسيوم من قبل BiFC-FRET-FLIM المقايسة

14:34

تحديد التفاعل الثلاثي بين اثنين من مونومرات من عامل النسخ MADS مربع وبروتين استشعار الكالسيوم من قبل BiFC-FRET-FLIM المقايسة

Related Videos

4.1K Views

ملصقات القرب المستندة إلى AirID للتفاعل بين البروتين والبروتين في النباتات

08:36

ملصقات القرب المستندة إلى AirID للتفاعل بين البروتين والبروتين في النباتات

Related Videos

2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code