-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
تحليل متشابك التحوير من ذبابة الفاكهة خلايا مستقبلة للضوء بعد التعرض للضوء لفترات طويلة
تحليل متشابك التحوير من ذبابة الفاكهة خلايا مستقبلة للضوء بعد التعرض للضوء لفترات طويلة
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Analyzing Synaptic Modulation of Drosophila melanogaster Photoreceptors after Exposure to Prolonged Light

تحليل متشابك التحوير من ذبابة الفاكهة خلايا مستقبلة للضوء بعد التعرض للضوء لفترات طويلة

Full Text
6,887 Views
11:36 min
February 10, 2017

DOI: 10.3791/55176-v

Atsushi Sugie1,2,5, Christoph Möhl3, Satoko Hakeda-Suzuki4, Hideaki Matsui1,2, Takashi Suzuki*4, Gaia Tavosanis*5

1Department of Neuroscience of Disease, Center for Transdisciplinary Research,Niigata University, 2Brain Research Institute,Niigata University, 3Image and Data Analysis Facility,German Center for Neurodegenerative Diseases (DZNE), 4Graduate School of Life Science and Technology,Tokyo Institute of Technology (Titech), 5Dendrite Differentiation,German Center for Neurodegenerative Diseases (DZNE)

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

نحن هنا تظهر كيفية تحديد عدد والتوزيع المكاني للمناطق نشطة متشابك في المستقبلات الضوئية البطن ذبابة الفاكهة، سلط الضوء مع الواسمات الجزيئية المشفرة وراثيا، وتعديل على بعد التعرض لفترات طويلة للضوء.

الهدف العام من هذا الإجراء التجريبي هو فهم الديناميكيات المشبكية في خلية عصبية واحدة في ظل ظروف تنشيط مختلفة. يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على الأسئلة الرئيسية في مجال اللدونة المشبكية مثل الكشف عن التغيرات في التركيب الجزيئي للمشابك عند نضوج نشاط الخلايا العصبية. الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أنها تسمح بالتحليل شبه الآلي لجوانب متعددة من نقاط الاشتباك العصبي بما في ذلك عددها وتوزيعها ومستوى إثراء المكونات الجزيئية بعد نقاط الاشتباك العصبي.

في هذه التجربة ، اجمع الذباب في قوارير عادية في غضون ست ساعات من الانغلاق. قم بتحميل قوارير التجميع في رف أكريليك شفاف. في حاضنة صغيرة مضبوطة على 25 درجة مئوية ، ضع الحامل على مسافة دقيقة من لوحة LED حيث يكون التعرض للضوء في المتوسط 1000 لوكس.

بعد ذلك ، يطير في الخلف لمدة يوم إلى ثلاثة أيام باستخدام أحد الشروط التالية ، إما ظلام مستمر ، أو 12 ساعة من الضوء متبوعا ب 12 ساعة من الظلام ، أو ضوء مستمر. في وقت لاحق ، قم بتشريح الأدمغة وصخبها باستخدام التقنيات القياسية. لتركيب أدمغة الذبابة ، قم بتحميل ماصة دقيقة بوسيط تركيب وقم بإيداع قطرتين بحجم 2 ميكرولتر في وسط شريحة المجهر على بعد حوالي 2 سم.

ضع زلة غطاء على كل قطرة والفجوة بين حوالي 0.2 مم. ثم قم بإيداع 15 ميكرولترا من وسط التركيب فوق زلات الغطاء وفي الفجوة. تحت المجهر التشريحي ، قم بإيداع الدماغ في الفجوة من الماصة الدقيقة.

ثم ضع الأدمغة ، الجانب البطني لأعلى. أخيرا ، قم بإرفاق زلة غطاء وإغلاقها على طول الحواف باستخدام طلاء أظافر شفاف. يمكن بعد ذلك تصوير الأدمغة باستخدام التقنيات القياسية لإعادة تكوين الصور ثلاثية الأبعاد.

في هذه الحالة ، يتم توثيق تلألؤ GFP في الخلايا ذات تعبير Brp النشط باستخدام طريقة النجمة. في هذا المثال أيضا ، تم مناعة محاور المستقبلات الضوئية R7 و R8 باستخدام مضادات السياوبتين ، والتي تم عرضها باستخدام الأجسام المضادة الثانوية الموسومة ب RFP. لتحديد عدد وتوزيع ومستوى إلغاء تحديد موقع Brp GFP puncta أولا تحميل صور ثلاثية الأبعاد للدماغ مصنوعة من مكدسات الصور.

يتم عرض Brp puncta باللون الأبيض. الآن ، أوجد منطقة الاهتمام. في هذه الحالة ، توجد أطراف محور عصبي R8 باتباع ترقق المحاور الإيجابية المضادة للأوبتين عند نقطة الدخول إلى طبقة النخاع M3.

في كل طرف محوري R8 ، حدد نقطة Brp GFP باستخدام وحدة الكشف عن البقعة. حدد إضافة نقاط جديدة، ثم حدد تقسيم منطقة الاهتمام فقط في إعدادات الخوارزمية. بمجرد تحديد منطقة التحليل ، اضبط القناة المصدر على Brp GFP ثم اضبط قطر XY المقدر على 0.35 ميكرون.

وبعد ذلك ، تحقق من طرح الخلفية في الكشف عن البقعة. بعد ذلك ، حدد الجودة كنوع عامل التصفية ، ويتم تصفية النقاط تلقائيا. أكمل هذه الخطوة بالنقر فوق إنهاء.

كرر طريقة الكشف عن النقاط لجميع محاور R8 في مجموعة البيانات. المنطقة التالية التي يجب تحديدها هي السيتوبلازم المحوري. أولا ، قم بإنشاء كائنات سطحية باستخدام وظيفة السطح.

بعد ذلك، حدد إضافة أسطح جديدة، وضمن إعدادات الخوارزمية، قم بتبديل منطقة الاهتمام فقط إلى المقطع. الآن ، حدد يدويا منطقة الاهتمام. بعد ذلك ، قم بتعيين محيط الحساب.

للعثور على قناة المستقبلات الضوئية كمصدر ، حدد الخيار السلس. بالنسبة للحد ، حدد الكثافة المطلقة. قم بتمكين خيار تقسيم الكائنات التي تلمس النواقص.

اضبط قطر نقاط المقعد على 0.5 ميكرون واستخدم إعدادات المرشح الافتراضية لجودة وعدد الفوكسل. ثم يتم تطبيق الفلتر تلقائيا. الآن ، انتقل إلى تحرير وحذف أجزاء السطح التي تم إنشاؤها خارج منطقة الاهتمام.

في هذه الحالة ، المحاور الأخرى. بعد تكرار اكتشاف منطقة المحور العصبي لجميع محاور R8 في مجموعة البيانات ، يتم تحديد جميع محاور Brp puncta و R8 كمجموعة من الكائنات الموضعية. ويتم تحديد المناطق السيتوبلازمية المقابلة على أنها أجسام سطحية.

الآن ، تابع عن طريق تحديد اتجاه ومساحة كل محور عصبي يدويا. هذا مهم للقياس الكمي لاحقا لكثافة Brp GFP على طول كل خلية عصبية في نخاع الأعصاب. للقيام بذلك ، حدد أولا نقاط البداية ونقاط النهاية.

حدد إضافة نقاط قياس جديدة، ثم حدد تحرير متبوعا بتحديد سطح الكائن للعمل مع الجزء العلوي من كائنات السطح. لتحديد نقاط البداية ، ضع نقاط القياس على جميع الكائنات السطحية للمحاور R في الطبقة M1. ضع هذه النقاط بترتيب منهجي قابل للتكرار.

بعد ذلك ، حدد نقاط النهاية. حدد إضافة نقاط قياس جديدة وتحرير وسطح الكائن مرة أخرى. بعد ذلك ، مع تكرار نفس الترتيب المنهجي ، ضع نقاط القياس في الجزء السفلي من محاور R في طبقة M3.

لتحديد كثافة خلفية Brp ، قم بتحليل المناطق السيتوبلازمية لمحورين عصبي R7. حدد إضافة أسطح جديدة وحدد منطقة محور عصبي R7 يدويا كما تم لمحاور R8. استخدم إعدادات متطابقة باستثناء عدم التبديل إلى خيار تمكين تقسيم الكائنات.

اترك هذا. بعد ذلك ، أضف كائنا وهمية داخل منطقة محورية R7 محددة. حدد إضافة مواقع جديدة، وحدد تخطي الإنشاء التلقائي، وقم بالتحرير يدويا.

ثم حدد مركز الكائن وانقر على الكائن السطحي لوضع كائن البقع الوهمية داخل محور R7. الآن ، كرر خطوات الكشف عن السطح والبقع لمحور عصبي R7 ثان. ثم حدد نقاط البداية والنهاية للمحاور R7 كما هو الحال مع محاور R8.

لهذا التحليل ، تأكد من تثبيت البرنامج الصحيح. افتح مجموعة البيانات التي تحتوي على البيانات الموضعية وبيانات الأسطح وكائنات نقطة القياس ، يحتوي كل منهما على نفس عدد نقاط القياس. افحص البيانات.

يجب أن يكون لكل من كائنات نقطة القياس نفس عدد نقاط القياس حتى تعمل العمليات الحسابية. بمجرد تحديد النقاط ومناطق المحور العصبي ونقاط البداية والنهاية ، ابدأ تشغيل المكون الإضافي. أولا ، تحقق من البيانات الوصفية ، على وجه الخصوص ، حجم فوكسيل.

افتح خصائص الصورة من تحرير ، ثم تحقق من الأبعاد الثلاثة للفوكسل والميكرون تحت الإحداثيات في الهندسة. بعد ذلك ، حدد قناة لتحليل الكثافة. في هذه الحالة، يتم تحديد القناة التي تعرض Brp GFP.

ثم حدد اسم الملف للنتائج. بعد ذلك ، حدد عدد الصناديق على أنها 10 ، واضبط طول المحور العصبي على 100٪ ثم حدد مناطق النقطة عن طريق ضبط نصف قطر البقعة على 0.35 ميكرون والمنطقة السيتوبلازمية المحيطة بها على 50 ميكرون. أخيرا ، قم بتنفيذ أمر اكتشاف المشبك ، وبعد ذلك ، قم بتحليل الإخراج إحصائيا.

باتباع البروتوكولات الموصوفة ، تم تحليل نقاط الحفر Brp GFP في نقاط الاشتباك العصبي R8 للذباب المعرض للظلام المستمر أو الضوء المستمر أو دورة الضوء / الظلام العادية. تم تقليل عدد النقاط النقطية Brp بشكل كبير في المستقبلات الضوئية R8 للذباب المحفوظ في ضوء مستمر. تم حساب توزيع النقطة باستخدام مكون إضافي مخصص.

تم

توزيع نقاط الاشتباك العصبي R8 على طول العمود المحوري من M1 إلى طبقة M3 ، لكن كثافتها كانت أعلى في طبقات M1 و M3. وبالمثل ، تم حساب مستويات إلغاء تمركز النقطة. لم تتغير في جميع الظروف ، لكن مستويات إلغاء توطين Brp GFP اختلفت عن المراسلين الآخرين ، مثل Brp-short-cherry الذي يتم نزع فتيله بوضوح تحت الضوء المستمر.

من الممكن أن تكون هناك معالجة غير مناسبة لجزء Brp القصير بعد تفكيكه من AZ. بعد مشاهدة هذا الفيديو ، يجب أن يكون لديك فهم جيد لكيفية تحليل خصائص البلاستيك المشبكي في خلية عصبية واحدة. تتضمن هذه الخصائص البلاستيكية عدد المشبك وتوزيعها وتسمية تخصيب مكون جزيئي معين بعد نقاط الاشتباك

العصبي.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

علم الأعصاب العدد 120 ذبابة الفاكهة مبصرة المشبك منطقة نشطة Bruchpilot التعرض للضوء

Related Videos

Channelrhodopsin2 تحفيز ساطة من الإمكانيات في متشابك ذبابة الفاكهة العضلية المفارق

09:12

Channelrhodopsin2 تحفيز ساطة من الإمكانيات في متشابك ذبابة الفاكهة العضلية المفارق

Related Videos

14K Views

إعداد وتطوير الكبار ذبابة الفاكهة الأمخاخ والشبكية للتصوير لايف

16:47

إعداد وتطوير الكبار ذبابة الفاكهة الأمخاخ والشبكية للتصوير لايف

Related Videos

36.3K Views

تشريح والمناعية من اليرقات، العذراء وتعليم الكبار ذبابة الفاكهة شبكية العين

11:58

تشريح والمناعية من اليرقات، العذراء وتعليم الكبار ذبابة الفاكهة شبكية العين

Related Videos

26.1K Views

التسجيل الفيزيولوجي الكهربي لاستجابات الجهد لذبابة الفاكهة المستقبلات الضوئية لشبكية العين لمحفزات الضوء

04:00

التسجيل الفيزيولوجي الكهربي لاستجابات الجهد لذبابة الفاكهة المستقبلات الضوئية لشبكية العين لمحفزات الضوء

Related Videos

532 Views

التحقيق في إمكانات إزالة الاستقطاب المطولة (PDA) في ذبابة الفاكهة المستقبلات الضوئية

03:06

التحقيق في إمكانات إزالة الاستقطاب المطولة (PDA) في ذبابة الفاكهة المستقبلات الضوئية

Related Videos

492 Views

التعديل المشبكي في ذبابة الفاكهة بعد التعرض للضوء لفترات طويلة

02:09

التعديل المشبكي في ذبابة الفاكهة بعد التعرض للضوء لفترات طويلة

Related Videos

492 Views

تحليل إعادة تدوير الحويصلة المشبكية وامتصاص الصبغة الفلورية في يرقات ذبابة الفاكهة

02:42

تحليل إعادة تدوير الحويصلة المشبكية وامتصاص الصبغة الفلورية في يرقات ذبابة الفاكهة

Related Videos

486 Views

ضوء الفحص ميول لدراسة الساعة البيولوجية الفطرية وPhotobehavior الخاضعة للرقابة في ذبابة الفاكهة يرقات

07:14

ضوء الفحص ميول لدراسة الساعة البيولوجية الفطرية وPhotobehavior الخاضعة للرقابة في ذبابة الفاكهة يرقات

Related Videos

13.4K Views

الطريقة الكهربية لالردود تسجيل بين الخلايا الجهد ل ذبابة الفاكهة خلايا مستقبلة للضوء وInterneurons إلى النور المحفزات في فيفو

11:42

الطريقة الكهربية لالردود تسجيل بين الخلايا الجهد ل ذبابة الفاكهة خلايا مستقبلة للضوء وInterneurons إلى النور المحفزات في فيفو

Related Videos

20.1K Views

طريقة الكهربية لالكامل خلية الجهد المشبك تسجيلات من ذبابة الفاكهة المستقبلات الضوئية

10:36

طريقة الكهربية لالكامل خلية الجهد المشبك تسجيلات من ذبابة الفاكهة المستقبلات الضوئية

Related Videos

15.5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code