-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
طرق لتصنيف البؤر السيتوبلازمية كما حبيبات الإجهاد الثدييات
طرق لتصنيف البؤر السيتوبلازمية كما حبيبات الإجهاد الثدييات
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Methods to Classify Cytoplasmic Foci as Mammalian Stress Granules

طرق لتصنيف البؤر السيتوبلازمية كما حبيبات الإجهاد الثدييات

Full Text
14,910 Views
09:33 min
May 12, 2017

DOI: 10.3791/55656-v

Anaïs Aulas*1,2, Marta M. Fay*1,2, Witold Szaflarski1,2,3, Nancy Kedersha1,2, Paul Anderson1,2, Pavel Ivanov1,2,4

1Division of Rheumatology, Immunology, and Allergy,Brigham and Women's Hospital, 2Department of Medicine,Harvard Medical School, 3Department of Histology and Embryology,Poznan University of Medical Sciences, 4The Broad Institute of Harvard and M.I.T.

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

حبيبات الإجهاد (سغس) هي الهياكل السيتوبلازمية غير الغشائية التي تشكل في الخلايا المعرضة لمجموعة متنوعة من الضغوط. سغس تحتوي على مرناس، والبروتينات ملزم رنا، الوحدات الفرعية الريباسي الصغيرة، العوامل المرتبطة الترجمة، والبروتينات خلية إشارة مختلفة. يصف هذا البروتوكول سير العمل الذي يستخدم العديد من النهج التجريبية للكشف عن، وتحديد، وتحديد الكميات سغس حسن النية .

Transcript

الهدف العام من سير العمل هذا هو تحديد ما إذا كانت البؤر المحددة داخل السيتوبلازم هي حبيبات إجهاد حسنة النية وهي حبيبات الحمض النووي الريبي التي تلعب أدوارا مهمة في فسيولوجيا الخلية. الميزة الرئيسية لسير العمل هذا هي أنه يختبر جميع الخصائص الأساسية لحبيبات الإجهاد. على الرغم من أن سير العمل هذا يتم تقديمه لخلايا الساركوما العظمية البشرية U-2 OS ، إلا أنه يمكن تطبيقه أيضا على أنواع أخرى من خطوط الخلايا والخلايا الأولية.

بشكل عام ، سيكافح الأفراد الجدد في هذه الطريقة لأنه ليست كل البؤر الناجمة عن الإجهاد هي حبيبات الإجهاد. يشتمل سير عملنا على جميع التجارب اللازمة لتمييزها. سأعرض هذا الإجراء مع Anais Aulus.

نحن زملاء ما بعد الدكتوراه في مختبر بول أندرسون وبافيل إيفانوف. للبدء ، توضع خلايا البذور على أغطية في 24 لوحة بئر كما هو موضح في بروتوكول النص. بعد الحضانة الليلية ، قم بشفط وسائط الاستزراع من الآبار B1 إلى B4 ومن C1 إلى C4 من لوحة 24 بئر.

أضف 500 ميكرولتر من الوسط المكمل ب 100 ميكرومولار من زرنيخيت الصوديوم إلى الآبار B1 و B2 ، ثم أضف 500 ميكرولتر من الوسط المكمل ب 50 ميكرومولار زرنيخيت الصوديوم إلى الآبار B3 و B4. بعد ذلك ، أضف 500 ميكرولتر من الوسط الذي يحتوي على 150 ميكرومولار فينوريلبين إلى الآبار C1 و C2. أخيرا ، أضف 500 ميكرولتر من الوسط المكمل ب 125 ميكرومولار من vinorelbine إلى الآبار C3 و C4. احتضن الطبق لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية. بعد 30 دقيقة من الحضانة ، أضف إلى الخلايا في العمود اثنين خمسة ميكرولتر من مليغرام واحد لكل مليلتر محلول سيكلوهيكسيميد وإلى الخلايا الموجودة في العمود الرابع ، ميكرولترين من 1.25 ملليغرام لكل مليلتر بورومايسين. رج الطبق برفق لخلط المحاليل وأعد الطبق إلى الحاضنة لمدة 30 دقيقة إضافية من الحضانة.

لإصلاح الخلايا ، قم بإزالة الوسائط من الآبار وغسل الخلايا بحوالي 250 ميكرولتر من PBS. أضف ما يقرب من 250 ميكرولترا من محلول بارافورمالدهايد مخزن 4٪ لإصلاح الخلايا ، مع التأكد من تغطية الجزء العلوي من الغطاء بالكامل. ثم اترك الطبق على مقاعد البدلاء في درجة حرارة الغرفة لمدة 15 دقيقة.

بعد ذلك ، قم بإزالة والتخلص من بارافورمالدهيد بشكل صحيح. أضف ما يقرب من 250 ميكرولتر من الميثانول المثلج لاختراق الخلايا وتسطيحها. احتضان اللوحة لمدة خمس دقائق إضافية في درجة حرارة الغرفة على هزاز.

بمجرد اكتمال النفاذية ، تخلص من الميثانول وسد الخلايا عن طريق تطبيق ما يقرب من 250 ميكرولتر من المخزن المؤقت المانع لمدة ساعة واحدة في درجة حرارة الغرفة. بعد ذلك ، قم بإعداد محلول الجسم المضاد الأساسي عن طريق إضافة 12 ميكرولترا من الأجسام المضادة ضد G3BP1 eIF4G و eIF3B إلى ثلاثة ملليلتر من المخزن المؤقت المانع. أضف 250 ميكرولترا من محلول الجسم المضاد إلى كل بئر من لوحة 24 بئر.

احتضن اللوحة على الروك لمدة ساعة على الأقل في درجة حرارة الغرفة. بعد ساعة واحدة من الحضانة ، قم بإزالة محلول الجسم المضاد واغسل الخلايا بحوالي 250 ميكرولتر من PBS لمدة خمس دقائق. بعد ذلك ، أضف 12 ميكرولترا من الأجسام المضادة Anti-Mouse Cy2 و Anti-Rabbit Cy3 و Anti-Goat Cy5 جنبا إلى جنب مع ثلاثة ميكرولترات من صبغة الخطافات إلى ثلاثة ملليلتر من المخزن المؤقت المانع لتحضير محلول الأجسام المضادة الثانوية.

أضف 250 ميكرولترا من محلول الجسم المضاد الثانوي إلى كل بئر وقم بتغطية اللوحة لحماية العينات من الضوء. احتضان اللوحة على الروك في درجة حرارة الغرفة لمدة ساعة واحدة. عند اكتمال الحضانة ، قم بإزالة محلول الجسم المضاد وغسل الخلايا باستخدام PBS لمدة خمس دقائق.

وسط تركيب الحرارة في كتلة حرارية 37 درجة مئوية لمدة 10 دقائق لتقليل اللزوجة. ثم باستخدام طرف ماصة مسبق القطع سعة 200 ميكرولتر ، ضع 25 ميكرولترا من وسط التركيب على شريحة زجاجية مكتوبة. باستخدام ملقط دقيق ، انقل الغطاء من البئر إلى الشريحة ، مع عكس الجزء العلوي بحيث تواجه الخلايا وسط التثبيت.

استخدم طرف P200 نظيفا للضغط على الغطاء لأسفل. بمجرد تركيب جميع أغطية الغطاء ، قم بإزالة وسط التثبيت الزائد عن طريق الضغط على منديل المختبر بقوة على الشريحة. بعد ذلك ، اغسل الشريحة بالماء.

وصمة عاره على الفور بأنسجة المختبر مرة أخرى. قم باختراق الخلايا المسبوقة عن طريق احتضانها ب 250 ميكرولتر من الميثانول المثلج في درجة حرارة الغرفة لمدة 10 دقائق. بعد ذلك ، أضف إلى الآبار التي تم إفراغها من اللوحة ما يقرب من 250 ميكرولتر من 70٪ من الإيثانول وأغلق اللوحة باستخدام البارافيلم لمنع التبخر.

احتضن الطبق عند أربع درجات مئوية طوال الليل. بعد الحضانة الليلية ، قم بإزالة الإيثانول وإعادة ترطيب الخلايا بإضافة 500 ميكرولتر من 2XSSC. احتضن الغطاء لمدة خمس دقائق على الروك في درجة حرارة الغرفة.

ثم تخلص من المحلول وأضف 500 ميكرولتر من SSC مرة أخرى. احتضن الطبق لمدة خمس دقائق إضافية مع تحريك لطيف. بعد ذلك ، ضع طبقة من البارافيلم في قاع فرن التهجين وماصة 25 ميكرولترا من مخزن التهجين فوقه.

انقل الغطاء من لوحة 24 بئر ، مع عكس الجزء العلوي بحيث تواجه الخلايا المخزن المؤقت للتهجين. احتضن الغطاء عند 42 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة. ماصة 25 ميكرولتر من محلول البيوتين oligo dT على البارافيلم في فرن التهجين.

بعد ذلك ، باستخدام الملقط ، التقط الغطاء وصمة عار حافته على أنسجة المختبر لإزالة المخزن المؤقت التهجين الزائد. انقل الغطاء إلى محلول البيوتين oligo dT ، وتأكد من أن الخلايا مقلوبة لأسفل وتحتضن عند 42 درجة مئوية لمدة 60 دقيقة. بمجرد اكتمال التهجين ، أضف ما يقرب من 500 ميكرولتر من 2XSSC الدافئ مسبقا إلى آبار طبق 24 بئر.

ثم ، باستخدام الملقط ، انقل الغطاء إلى البئر واحتضانه عند 42 درجة مئوية لمدة 10 دقائق. بعد تلطيخ الخلايا بمحلول الأجسام المضادة ، اعرض العينات باستخدام المجهر الفلوري. معروضة هنا صور لخلايا U-2 OS غير المعالجة التي لا تحتوي على أي حبيبات أو بؤر ملطخة بعلامات حبيبات الإجهاد G3BP1 و eIF4G و eIF3B.

في خلايا U-2 OS المعالجة بزرنيخيت الصوديوم أو vinorelbine ، تم تحفيز تكوين بؤر السيتوبلازمية التي تحتوي على G3BP1 و eIF4G و eIF3B. تم تأكيد التوطين المشترك لهذه العلامات من خلال تحليل مسح الخط الذي تم إجراؤه لكل قناة عند زيادة التكبير متبوعا بفرض فائق للرسوم البيانية التي تم الحصول عليها. بالإضافة إلى ذلك ، احتوت البؤر السيتوبلازمية المحددة في الخلايا المعالجة على mRNA كما هو موضح في poly A FISH.

تم تحديد إشارة oligo dT مع إشارة G3BP1 التي تؤكد تحديد حبيبات الإجهاد. بمجرد إتقانها ، يمكن تنفيذ سير العمل بالكامل في ثلاثة أيام إذا تم تنفيذه بشكل صحيح. بعد مشاهدة هذا الفيديو ، يجب أن يكون لديك فهم جيد لكيفية إجراء التألق المناعي والتهجين الفلوري.

الخطوات الحاسمة للتوصيف الصحيح وتحديد حبيبات الإجهاد. لا تنس أن العمل مع بارافورمالدهيد قد يكون خطيرا للغاية. يجب دائما استخدام الاحتياطات مثل استخدام معدات الوقاية الشخصية والتهوية الكافية أثناء تنفيذ هذا الإجراء.

Explore More Videos

البيولوجيا الخلوية العدد 123 حبيبات الحمض النووي الريبي حبيبات الإجهاد مرنا قمع الترجمة إمونوستينينغ في الموقع التهجين استجابة الإجهاد

Related Videos

مقايسة التألق المناعي لتوصيف وقياس حبيبات الإجهاد في الثدييات

04:34

مقايسة التألق المناعي لتوصيف وقياس حبيبات الإجهاد في الثدييات

Related Videos

428 Views

تصور G3BP الإجهاد حبيبات حيوية في الخلايا الأولية لايف

10:12

تصور G3BP الإجهاد حبيبات حيوية في الخلايا الأولية لايف

Related Videos

18.7K Views

دراسة نظام لمراقبة الجودة من البروتين D. discoideum عن طريق درجة الحرارة التي تسيطر التصوير الخلية الحية

06:09

دراسة نظام لمراقبة الجودة من البروتين D. discoideum عن طريق درجة الحرارة التي تسيطر التصوير الخلية الحية

Related Videos

7.3K Views

تحليل المناعي من الإجهاد الحبيبية تشكيل بعد تحدي البكتيريا من خلايا الثدييات

11:37

تحليل المناعي من الإجهاد الحبيبية تشكيل بعد تحدي البكتيريا من خلايا الثدييات

Related Videos

10.6K Views

محلل البنية الفرعية: سير عمل سهل الاستخدام للاستكشاف السريع والتحليل الدقيق للأجسام الخلوية في صور المجهر الفلوري

14:28

محلل البنية الفرعية: سير عمل سهل الاستخدام للاستكشاف السريع والتحليل الدقيق للأجسام الخلوية في صور المجهر الفلوري

Related Videos

8.2K Views

القياس الكمي لتعديلات هيستون العالمية بعد الترجمة باستخدام قياس التدفق الخلوي داخل النواة في الخلايا الدبقية الصغيرة لدماغ الفأر المعزول

07:10

القياس الكمي لتعديلات هيستون العالمية بعد الترجمة باستخدام قياس التدفق الخلوي داخل النواة في الخلايا الدبقية الصغيرة لدماغ الفأر المعزول

Related Videos

2.3K Views

الليزر Microdissection القبض على أنسجة الثدييات

16:34

الليزر Microdissection القبض على أنسجة الثدييات

Related Videos

17.4K Views

Trypsinizing Subculturing وخلايا الثدييات

05:59

Trypsinizing Subculturing وخلايا الثدييات

Related Videos

21.9K Views

الكمي بؤر γH2AX في الاستجابة للإشعاع المؤين

06:53

الكمي بؤر γH2AX في الاستجابة للإشعاع المؤين

Related Videos

20.9K Views

الكميات بؤر γH2AX في عينات الأنسجة

08:48

الكميات بؤر γH2AX في عينات الأنسجة

Related Videos

14.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code