أغسطس 24, 2018
هذا البروتوكول وصف أسلوب لزراعة ايليجانس كاينورهابديتيس على نطاق واسع في وسائل الإعلام الصلبة. كبديل لثقافة السائل، يسمح هذا البروتوكول الحصول على معلمات جداول مختلفة المزروعة المستندة إلى اللوحة. وهذا يزيد من قابلية النتائج للمقارنة بإهمال الاختلافات المورفولوجية والأيضية بين ثقافة وسائل الإعلام السائلة والصلبة.
في مجال C.elegans ، يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على الأسئلة الرئيسية التي تتطلب إنتاج مجموعات كبيرة من الديدان الخيطية وعينات باستخدام زراعة الألواح. تتمثل المزايا الرئيسية لهذا البروتوكول في سهولة إنشائه وسهولة وصفه بما في ذلك المزالق والتطبيقات. بعد الحصول على مجموعة متزامنة من الديدان الخيطية ، أضف ما يقرب من ملليلتر واحد من M تسعة عازلة إلى الألواح ، وقم بتوزيع المخزن المؤقت بعناية عن طريق تأرجح الألواح.
بعد ذلك ، اجمع الديدان الخيطية في أنبوب سعة 15 مل. الآن ، اقلب الأنبوب واستخدم مجهرا لتقييم كثافة الديدان الخيطية. اضبط كثافة التعليق حسب الحاجة ، واستمر في تقييمه تحت المجهر.
ضع 150 ميكرولترا من التعليق مباشرة على الألواح ذات أطراف الماصة المعدلة. لضمان التوزيع المتساوي للديدان الخيطية بين الألواح ، قم بقلب أنبوب التعليق على فترات منتظمة. أولا، اغسل الديدان الخيطية باستخدام طرف ماصة معدل بحوالي 500 ميكرولتر من المخزن المؤقت M تسعة.
باستخدام نفس المخزن المؤقت ، استمر في فصل الديدان الخيطية حتى يتم جمع معظم في حالة تعليق. بعد ذلك ، خذ الديدان الخيطية بطرف ماصة معدل ، وانقلها إلى طبق به OP50. تقلل أطراف الماصات المعدلة من إجهاد القص والتلف الذي يلحق بالديدان الخيطية بسبب قطرها الأكبر.
ثم اترك اللوحة تجف. قبل جمع العينات ، قم بإعداد النيتروجين السائل لتجميد الديدان الخيطية التي تم جمعها. ثم ضع M تسعة عازلة على الجليد.
ضع ملليلترا واحدا من M تسعة عازلة على كل طبق ، وقم بتدوينها برفق لغسل كل طبق. بعد ذلك ، خذ حجم M تسعة مخزن مؤقت ، وانقله إلى أنابيب جديدة سعة 15 ملليلترا. الطرد المركزي الأنبوب لفترة وجيزة عند 800 مرة جم ، قبل إزالة معظم المخزن المؤقت M تسعة.
بعد ذلك ، اغسل العينات ثلاث مرات باستخدام 10 مل من M تسعة عازلة لإزالة أي بكتيريا. باستخدام ماصة زجاجية ، انقل كل حبيبات إلى أنبوب فارغ سعة 1.5 ملليلتر. استخدم الماصة الزجاجية لتناول مليلتر واحد من المخزن المؤقت M تسعة من الأنبوب الثاني سعة 1.5 ملليلتر، لشطف الديدان الخيطية من جدار الماصة.
ثم اغسل الديدان الخيطية المتبقية من أنابيب سعة 15 ملليلتر ، وانقلها إلى أنابيب العينة. بعد ذلك ، قم بالطرد المركزي لأنابيب العينة عند 19 ، 000 مرة جم لمدة دقيقة واحدة ، وقم بإزالة أكبر قدر ممكن من المواد الطافية. بعد ذلك ، أغلق كل أنبوب بغشاء البارافين ، وقم بتجميده في النيتروجين السائل على الفور.
قم بتخزين الأنابيب على حرارة 80 درجة مئوية تحت الصفر حتى تحضير المحلل. أضف نفس الأحجام من حبات أكسيد الزركونيوم 0.5 ملم ، وضعف حجم محلول المحللة مع كوكتيل مثبط البروتيناز لكل عينة مجمدة. ثم ضع الأنابيب في الخالط لمدة دقيقة واحدة على السرعة تسعة.
الطرد المركزي للعينات لمدة 30 دقيقة عند أربع درجات مئوية ، و 19 ، 000 مرة جم. أخيرا ، انقل المادة الطافية إلى أنبوب جديد على الجليد ، وقم بتخزينها عند 80 درجة مئوية تحت الصفر للتجارب المستقبلية. في هذا البروتوكول ، تم استزراع كميات كبيرة من C.elegans للتطبيقات في أبحاث مرض السكري.
يرتبط عدد الديدان الخيطية التي تم جمعها بإنتاجية البروتين في المحللة ، مما يدل على أنه يمكن تحقيق عزل البروتين الكمي القابل للتكرار باستخدام هذا البروتوكول. يتم عرض التحليلات الطيفية الكتلية للمستقلب التفاعلي ميثيل جليوكسال ، والمنتجات النهائية المتقدمة للجليكاسیون التي تشكلت عن التعرض لميثيل جليوكسال. تمت مقارنة الديدان الخيطية المعالجة بالغلوكوز والضوابط.
يمكن أن يؤدي نقل الديدان الخيطية عبر الماصة إلى إجهاد القص ، مما قد يضر بالديدان الخيطية. لم تختلف مستويات الإجهاد التأكسدي في الديدان الخيطية الماصة والديدان الخيطية المنقولة بسلك معدني باستخدام هذا البروتوكول. باتباع هذا الإجراء ، يمكن إجراء طرق أخرى مثل اللطخة الغربية ، من أجل الإجابة على أسئلة إضافية في البروتينات.
يسهلهذا البروتوكول أيضا التجارب التي تربط معلمات متعددة بنفس السكان.
اعرض النص الكامل واحصل على الوصول إلى آلاف الفيديوهات العلمية
يصف هذا البروتوكول طريقة لاستزراع ديدان Caenorhabditis elegans على نطاق واسع في أوساط صلبة. ويسهل هذا النهج إنتاج مجتمعات وعينات كبيرة من الخيطيات، مما يعزز من إمكانية مقارنة النتائج.
تتيح الزراعة واسعة النطاق لديدان C. elegans عزلاً كمياً قابلاً للتكرار للبروتينات من أجل اكتشاف المؤشرات الحيوية المرتبطة بمرض السكري، مما يدعم التحقق من الأهداف في المضاعفات التنكسية العصبية. توفر هذه الطريقة سير عمل قابلاً للتوسع مع تقليل إجهاد القص للتحليل البروتومي لـ AGEs و ROS، وهو أمر قابل للتطبيق المباشر في تقليل المخاطر الآلية في المراحل المبكرة من اكتشاف الأدوية. ومن خلال تسهيل تحضير مجتمع متزامن تحت ظروف محكومة، فإنها تعزز الثقة التنبؤية في النماذج قبل السريرية للاعتلالات السكرية.
تندرج هذه الطريقة ضمن تسلسل عمليات الاكتشاف، بدءاً من اختبار الفرضيات، مروراً بتحديد المركبات الرائدة، وصولاً إلى التحقق قبل السريري، وهي تدعم بشكل خاص الأبحاث المتعلقة بالتنكس العصبي المرتبط بمرض السكري.