RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ar
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/63287-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
يحدد هذا البروتوكول طريقة لاستخراج الديدان الخيطية الحية بكفاءة من الركائز الطبيعية في هذا المجال.
Caenorhabditis nematodes هي حقيقية ، تعيش في الطبيعة. إن جمع الديدان الخيطية البرية ، يسمح لنا بدراسة الجينات ، والجينومات في سياقها الطبيعي تكشف عن وظائف ، والتي قد تحجبها الظروف الاصطناعية للمختبر. هذه التقنية ، تستخرج الديدان ، من الركائز العضوية الغنية بالبكتيريا في الحقل ، وتخلق ثقافات نظيفة على أطباق بتري ، وتلتقط لقطة لكل مجموعة سكانية ، في الوقت الذي تم جمعها فيه.
هذه المجموعات السكانية مناسبة تماما لمسائل علم البيئة أو علم الوراثة السكانية أو علم الوراثة الفوقي. ثقافات السلالة البرية ، هي أيضا قيمة ، للدراسات الجينية الكمية. هذه التقنية بسيطة وسهلة التنفيذ ، حتى بالنسبة للمبتدئين في البحث الميداني.
ومع ذلك ، فإن رحلة جمع ناجحة ، تتطلب إعدادا مدروسا للمواد ، قبل السفر. حدد الركيزة الغنية بالبكتيريا في الحقل ، مثل الفاكهة المتعفنة أو الزهور أو الفطريات أو سيقان النباتات العشبية أو التربة أو فضلات الأوراق. ضع كمية صغيرة من الركيزة ، في كيس بلاستيكي ملصق.
إذا كانت المواد المتعفنة نادرة في الجانب الميداني من الاهتمام ، فضع بعض الفاكهة كطعم. اتركه للصخرة ، ثم استرجعه ، وأي ديدان استعمرته. سجل معرف العينة وخط العرض وخط الطول والتاريخ ووصف الركيزة.
سجل أي قياسات بيئية محلية أخرى ذات صلة بالتجربة ، مثل درجة الحرارة المحيطة والركيزة ، وحالة الركيزة ، ووقت التجميع ، ووجود اللافقاريات الكلية المرتبطة بالركيزة. استخدم المقص لقطع جزء طوله ثلاثة سنتيمترات ، من الأنابيب المطاطية من كل قمع. ضع الأنبوب فوق نهاية قمع بلاستيكي.
حرك مشبك أنابيب فوق الأنبوب المطاطي ، وقم بإغلاقه. لصنع حامل قمع ، قم بقطع الثقوب الدائرية ، في وسط صينية من الورق المقوى المكشوفة. عكس الورق المقوى ، وقم بطي الجانبين مرة واحدة ، وقم بربطهما معا.
هذا سوف يخلق الساقين, التي ترفع الثقوب فوق مقاعد البدلاء. تأكد من أن مشابك الأنابيب ، في الموضع المغلق ، ووضع القمع في الثقوب. صب الماء المعقم في كل قمع ، وملئه حوالي ثلاثة سنتيمترات تحت الحافة.
اضغط على القمع، لتحرير أي فقاعات هواء محاصرة في الأنبوب. قم بطي منديل خال من الوبر إلى النصف ، لعمل مربع ، وضعه فوق القمع. ثم اضغط على المسح لأسفل ، لغمره في الماء.
قم بتقسيم أي قطع صلبة كبيرة يدويا ، من الركيزة الطبيعية. ضع بعض العينة برفق على المسح في القمع. تأكد من عدم ثقب المسح ، أو ترك أي عينة بارزة فوق الحافة.
قم بطي زوايا المسح بعناية ، فوق العينة ، لمنع الماء من الفتل ، فوق حافة القمع. قم بتسمية مسار التحويل باستخدام معرف العينة، المقابل لملاحظات المجموعة الميدانية. اختر أي حشرات نشطة ، أو أخرى ، قد تسافر وتلوث العينات.
أضف المزيد من الماء إلى كل قمع ، لغمر العينة بأكملها. أثناء الحضانة في درجة حرارة الغرفة بين عشية وضحاها ، سوف تتأرجح الديدان الخيطية النشطة عبر الأنسجة ، وتغرق في قاع القمع. اكتب معرف العينة الخاص بقمع ، في الجزء السفلي من صفيحة دودة NGM بطول ستة سنتيمترات ، جالسة مع بقعة من بكتيريا OP50 E.coli.
قم بإزالة الغطاء من اللوحة ، وقم بإزالة القمع ، الذي يحتوي على العينة من حامل القمع ، وأمسكها في وضع مستقيم ، فوق صفيحة الدودة المفتوحة ، بيد واحدة. حرر الضغط على مشبك الأنابيب من ناحية أخرى ، واسمح لقطة أو قطرتين من الماء ، بالسقوط من الأنبوب ، على صفيحة الدودة بجوار العشب البكتيري. بمجرد أن يسقط الماء من القمع ، قم بإغلاقه بسرعة مرة أخرى ، لمنع إغراق لوحة NGM.
للتنظيف ، تخلص من محتويات القمع ، واغسلها بالماء الساخن ، لإعادة استخدامها لاحقا. مراقبة الديدان الخيطية المعزولة تحت المجهر الاستريو. بالإضافة إلى الديدان الخيطية ، سيكون هناك في بعض الأحيان أنيليدات صغيرة من مجموعة Oligo ، و Tardigrades ، و rotifers ، والقشريات الصغيرة.
لإنشاء خطوط خنثى ISO ، أو خطوط أنثوية ISO ، انقل كل خنثى L4 أو أنثى بالغة متزاوجة ، إلى لوحة NGM منفصلة مقاس 3.5 سم ، جالسة مع OP50. تعقيم قطف الدودة ، قبل وبعد كل نقل. أخيرا ، قم بلف الألواح جيدا للسفر ، مع فيلم البارافين.
في جزيرة بارو كولورادو بنما ، في عام 2018 ، تمت معالجة 131 ركيزة بهذه الطريقة. 99 ٪ منها أنتجت الديدان الخيطية. 34 ٪ أسفرت عن التهاب الديدان الخيطية Caenorhabditis.
في منطقة استبعاد تشيرنوبيل أوكرانيا ، في عام 2019 ، تمت معالجة 170 ركيزة بهذه الطريقة. 56 ٪ منها أنتجت الديدان الخيطية ، ولم يكن أي منها من التهاب Caenorhabditis. تعمل هذه الطريقة لأن الديدان الخيطية تسبح من خلال المسح.
لكن الركيزة والحيوانات الأخرى تبقى في الأعلى. يمكن تعديل العديد من جوانب البروتوكول ، للاستفادة من أي موارد متاحة في هذا المجال. تسمح العينات التي تم جمعها باستخدام هذه الطريقة للباحثين بمعالجة مجموعة واسعة من أسئلة بيولوجيا السكان في الثقافات الراسخة للدراسات المختبرية اللاحقة.
Related Videos
09:02
Related Videos
19.5K Views
04:19
Related Videos
92 Views
09:37
Related Videos
16.8K Views
07:45
Related Videos
26.1K Views
08:56
Related Videos
21.3K Views
12:40
Related Videos
19.5K Views
09:55
Related Videos
10K Views
09:47
Related Videos
3.6K Views
09:42
Related Videos
3.4K Views
09:10
Related Videos
3K Views