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方法文章

在 Xenopus 卵母细胞中可视化 RNA 定位

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DOI:

10.3791/1704

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2010年1月14日

 , 

本文内容

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摘要

可视化 体内 RNA 运输通过将荧光标记的 RNA 转录本显微注射到 非洲爪蟾 卵母细胞,随后进行共聚焦显微镜观察。

摘要

RNA定位是建立细胞极性的一种保守机制。Vg1 mRNA定位于卵母细胞的植物极。 非洲爪蟾 卵母细胞,并在空间上限制Vg1蛋白的基因表达。通过这种方式对Vg1分布进行严格调控,是胚胎发育过程中正确形成胚层所必需的。Vg1 mRNA的3'非翻译区(3' UTR)中的RNA序列元件,即Vg1定位元件(Vg1 localization element, VLE),足以且必需介导其运输。为研究Vg1 mRNA的识别与运输机制 体内我们开发了一种成像技术,可通过简单的可视化读出,实现对转录因子介导的转运机制的深入分析。

为了观察RNA的定位,我们合成了荧光标记的VLE RNA,并将该转录本显微注射到单个卵母细胞中。注射后,将卵母细胞进行培养,以允许注入的RNA发生转运,随后固定并脱水,再通过共聚焦显微镜成像。mRNA定位模式的可视化可作为监测RNA运输全过程的读出指标,同时可用于鉴定转录本内部顺式作用元件以及结合VLE的反式作用因子在指导RNA运输中的功能(Lewis等,2008;Messitt等,2008)。我们已将该技术进一步拓展,用于与其他RNA和蛋白质的共定位分析(Gagnon和Mowry,2009;Messitt等,2008),并结合运动蛋白和细胞骨架的干扰实验(Messitt等,2008),以探究mRNA定位背后的分子机制。

方案

第1部分:荧光标记mRNA的转录。

  1. 将含有RNA定位元件或其他相关序列的质粒DNA线性化,并重悬于 1 μg/μl 使用经DEPC处理的H2O. DNA 模板必须含有上游的 T7、SP6 或 T3 RNA 聚合酶启动子位点,以启动转录。
  2. 向无菌的 1.5 mL 离心管中加入以下试剂:
    a. 10X Tx 缓冲液(见 M&M)2 μl
    b. 20倍浓度帽/核苷三磷酸混合液(参见M&M)1 μl
    c. 1 mM Alexa Fluor 546-14-UTP(Invitrogen)1 μl
    d. UTP,[α-32P](1 μCi/μl(Perkin Elmer)1 μl
    e. DEPC-H2O11 μl
    f. 0.2 M DTT1 μl
    g. RNasin(Promega)1 μl
    线性模板DNA1 μl
    i. RNA聚合酶(Prom....

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讨论

本文介绍了一种用于可视化mRNA定位的实验方案 非洲爪蟾 卵母细胞。该方法使用荧光标记的RNA转录本,相较于以往使用的地高辛标记转录本具有更高的信噪比,且比基于原位杂交的方法更简便、快速(Mowry and Melton, 1992; Gautreau et al., 1997)。利用该方法,我们可设计RNA序列突变并快速检测其影响。 体内 功能。此外,通过使用其他Alexa-UTP荧光染料,可在同一个卵母细胞中同时观察多种RNA分子。我们发现,在 非洲爪蟾 卵母细胞中,Alexa Fluor 546-14-UTP 的效果优于 Alexa Fluor 488-5-UTP,原因是 488 nm 波长范围内存在自发荧光;然而,仍可实现两种 RNA 的双色成像(Gagnon and Mowry, 2009)。此外,该技术可与免疫染色方案联合使用,以检测蛋白质的共定位,因为已有多种兼容的荧光二抗可供选择(Yoon and Mowry, 2006, Messitt et al., 2008)。最后,通过过表达显性负性因子或小分子干扰破坏 RNA 定位过程,可与该检测方法结合,用于观察 mRNA.......

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披露

使用实验动物的实验均依照布朗大学制定的指南和规定进行。

致谢

我们关于RNA定位的研究工作获得了美国国立卫生研究院(NIH)基金(R01GM071049)对KLM的资助。

....

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论

<强>10X Tx 缓冲液

  • 60 mM MgCl2
  • 400 mM Tris-HCl (pH 7.5)
  • 20 mM 亚精胺-HCl

<强>20x 帽/NTP 混合液

  • 10 mM CTP
  • 10 mM ATP
  • 9 mM UTP
  • 2 mM GTP
  • 20 mM G(ppp)G 帽类似物(New England Biolabs)

<强>G-50 柱

  • 水化5 g Sephadex G-50凝胶珠(Sigma Aldrich)于100 ml去离子H2O. 使用DEPC处理30分钟,然后高压灭菌。不完全配制的储存液在室温下保存。使用前,加入以下无RNase的溶液:
  • 0.5 ml 0.2 M EDTA
  • 1 ml 1 M Tris pH 8.0
  • 0.5 ml 20% SDS
  • 将完整的G-50溶液在4℃保存 ° C.
  • 从一个3 ml注射器(BD Biosciences)中取出并丢弃活塞,将注射器筒体放入一个15 ml锥形管(Corning)中。用少量玻璃棉堵塞注射器底部(堵塞物大小约为硬币的一半)。
  • 轻轻涡旋G-50溶液以重悬珠子。
  • 向空柱中加入2 ml G-50溶液。
  • 以 1,000 x 旋转 1 分钟 g 在台式离心机中。
  • 加入200 μl DEPC 处理的去离子水2向每列加入 O。离心。
  • 重复洗涤两次,共洗涤三次。
  • 将注射器筒移至新的15 ml离心管中。

<强>胶原酶溶液

  • 75 mg 胶原酶来自 Clostridium histolyticum (Sigma Aldrich)
  • 25 ml 0.1 M KPO3+(pH 7.4)

<强>MBSH缓冲液

  • 88 mM NaCl
  • 1 mM KCl
  • 2.4 mM NaHCO₃3
  • 0.82 mM MgSO₄4 X 7H2O
  • 0.33 mM Ca(NO₃)₂3)2 X 4H2O
  • 0.41 mM CaCl2 X 6H2O
  • 10 mM HEPES(pH 7.6)

<强>卵母细胞培养基

  • 50% L15培养基
  • 15 mM HEPES(pH 7.6)
  • 1 mg/ml 胰岛素
  • 100 mg/ml 庆大霉素
  • 50 U/ml 制霉菌素
  • 50 U/ml 青霉素
  • 50 mg/ml 链霉素

<强>MEMFA溶液

  • 0.1 M MOPS(pH 7.4)
  • 2 mM EGTA
  • 1 mM MgSO₄4
  • 3.7% 甲醛

<强>计算RNA产量

  • 测定每分钟计数(CPM) "输入" 和 "整合" 使用标准的闪烁计数器对样品进行检测。
  • 掺入 = ("整合") / (10 × "输入")
  • 典型的掺入值范围在 ~0.03 至 0.10 之间。
  • 不同聚合酶的最大理论产量:T7、T3、SP6 - 2.64 μg
  • 反应产率 μg = (聚合酶的最大产量)×(整合率)
  • 将RNA稀释至50 nM = (μg RNA) / 320 / (RNA 长度,单位为碱基) / (5×10-8)
  • 反应通常产生约 50-100 μ50 nM 的 RNA 量。

参考文献

  1. Cohen, S., Au, S., Pant, N. Microinjection of Xenopus laevis oocytes. JoVE. 24, (2009).
  2. Dumont, J. N. Oogenesis in Xenopus laevis (Daudin). I. Stages of oocyte development in laboratory maintained animals. J. Morphol. 136, 153-179 (1972).
  3. Gag....

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重印与许可

勘误


Formal Correction: Erratum: Visualizing RNA Localization in Xenopus Oocytes
Posted by JoVE Editors on 6/10/2011. Citeable Link.

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