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方法文章

利用视动反应研究斑马鱼的视觉功能

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DOI:

10.3791/1742

2010年2月2日

本文内容

摘要

视动反应已被广泛用于评估幼体斑马鱼的视觉功能。然而,目前尚无适用于成年斑马鱼的标准实验方案1-5。本文中,我们介绍一种在本实验室建立的新方案,用于测量成年斑马鱼的视动反应(OKR)。

摘要

视动反应(OKR)是一种动物通过眼球振动来追随周围旋转光栅的行为。该方法已被广泛用于评估幼年斑马鱼的视觉功能1-5。然而,目前尚无适用于成年斑马鱼的标准实验方案。本文介绍了一种在实验室建立的新方案,并利用自行设计的简易装置来测量成年斑马鱼的OKR。本视频将展示该装置的结构以及成年斑马鱼OKR检测的详细操作步骤。此外,视频中还演示了幼年斑马鱼OKR的测量,以及成年斑马鱼视动反应(OMR)测试的过程。本实验中成年斑马鱼OKR检测可持续长达4小时。在对成年斑马鱼视觉系统进行干预的情况下,应用此类成年鱼OKR检测将更高效地促进视觉功能的研究。

Su-Qi Zou 和 Wu Yin 对本论文贡献相同。

方案

第一部分:构建OKR装置

详细步骤见视频演示。

第二部分:成年斑马鱼的视动反应(OKR)

如果您的实验室已构建了OKR装置,成年斑马鱼OKR实验的关键在于固定鱼体。在本部分中,我们将逐步为您演示操作流程。

我们的装置由以下部分组成,与其他文献中提到的类似。圆形鱼室的外径为7.0 cm,内径为6.5 cm,高为7.0 cm。鱼室周围的转鼓外径为8.5 cm,内径为7.5 cm,高为7.0 cm。转鼓可顺时针和逆时针旋转,转速范围为20~70转/分钟(rpm)。在转鼓外侧贴有一张描图纸,其上绘制有11个黑白条纹循环。照明系统由两个直径为21 cm的环形灯管组成。

两个堆叠的立方体示意图,标注了尺寸,用于说明空间体积的计算。
图1. 海绵的模型。 中间制作的凹槽是为了确保视野不被遮挡。

  1. 如图1所示,由两部分组成的海绵。左侧部分为长3 cm × 宽3 cm × 高2 cm。右侧部分为长3 cm × 宽3 cm × 高3 cm。
  2. 将此海绵置于鱼室底部,并加入约2 cm深的培养用水。应排出隐藏在海绵内的气泡。
  3. 在海绵右侧部分前端插入一根针,位置约在边缘后方2 mm处。
  4. 用MS-222麻醉一条成年斑马鱼。
  5. 将斑马鱼背侧朝上放置于海绵上,使其一侧胸鳍位于第一根针前方。
  6. 在另一侧胸鳍后方插入第二根针。该针与第一根针配合,可防止斑马鱼身体收缩(参见图2)。
  7. 用动脉夹夹住其尾部,并将动脉夹固定在粘附于鱼室的一块橡胶(油灰模型)上。
  8. 在鱼体泄殖孔附近位置插入第三和第四根针。可防止斑马鱼剧烈摆动尾部。
  9. 第五根针置于第一根与第三根针之间,第六根针位于其对侧。它们可防止斑马鱼身体晃动。
  10. 在靠近鳃部的位置插入第七和第八根针,以保持头部方向稳定。
  11. 向鱼室内加入培养用水。
  12. 待斑马鱼苏醒后,使其适应5~10分钟。
  13. 打开装置光源,让斑马鱼适应光照环境2分钟。
  14. 启动电机以驱动光栅,让斑马鱼适应1分钟。
  15. 开启摄像机并记录眼球运动。
  16. 在个人计算机上分析眼角6和扫视次数(眼角分析的代表性示例如图2所示)。

鱼类运动分析示意图,包含追踪点及随时间变化的运动角度图
图 2. 眼轴与体轴之间的夹角。

a) 当光栅移动方向为鼻侧至颞侧时,我们定义鱼体前方的夹角为负角,鱼体后方的夹角为正角;反之亦然(简要回顾参见参考文献6)。本图中的数字表示标记针的顺序。

b) 正常组一条鱼的OKR分析示例。一段一秒长的视频被转换为一系列帧,使用Image-pro Plus软件测量每帧的眼部角度。本图中每个点代表我们测量的每一帧。

注意事项:

  1. 所有图钉仅用于防止斑马鱼身体晃动,夹得过紧会对鱼造成伤害。
  2. 动脉夹因其接触面积较小,可能会损伤尾部。一旦尾部松脱,将很难再次固定该鱼。在某些情况下,建议用绷带包裹尾部。
  3. 插入鳃部附近位置的第七和第八枚图钉,不应遮挡其对格栅视野的观察。

第三部分. 幼年斑马鱼的OKR

1. 甲基纤维素

幼鱼斑马鱼可在6%甲基纤维素溶液中固定,同时长时间保持存活。按如下方法制备甲基纤维素溶液。

  1. 将 200 ml ddH2O 放入微波炉中,高火加热约 3 分钟至沸腾。
  2. 将热水转移至搅拌加热板上,剧烈搅拌。
  3. 逐渐加入 12 g 甲基纤维素。
  4. 待甲基纤维素充分分散后,继续搅拌 3 分钟。
  5. 用冰水冷却溶液至澄清,然后置于 4°C 下保存。

2. 幼体斑马鱼

  1. 在17:00喂食后,将两条雄性成年斑马鱼和一条雌性成年斑马鱼配对放入交配缸中。次日早晨转移至新的交配缸,并在1小时后收集胚胎。
  2. 将卵置于胚胎培养基中,在28.5±0.5°C、光照与黑暗周期为14:10的培养箱中孵育。
  3. 受精后48小时(hpf)卵将孵化,视动反应(OKR)测试可在72 hpf或之后进行。本视频中的幼鱼处于受精后5天(5 dpf)。

3. OKR 实验步骤

  1. 将装置置于配备CCD相机的体视显微镜下,并打开该装置的光源。
  2. 在55 mm培养皿中加入20 ml 6%甲基纤维素。
  3. 将数条幼虫并排置于培养皿中央。
  4. 在相机视野中引入一个体积约为1 μl的气泡,该气泡可作为反射光栅方向的镜面。
  5. 启动电机并记录幼虫眼球的运动。

第四部分. 成年斑马鱼的OMR

使用该装置也可进行成年斑马鱼的OMR实验,只需在鱼缸中放置一根柱子以防止鱼游过中心区域(如图3a所示,旋转速度为36 rpm,黑白周期为11个)。

  1. 将一条鱼放入该鱼用培养室中。
  2. 在鱼用培养室中央放置一个直径为 2 cm 的柱体。
  3. 分别在静止光栅和旋转光栅条件下适应一分钟。
  4. 记录斑马鱼的运动情况。
  5. 在个人计算机上分析时间重合率(示例见图3b,旋转速度为 36 rpm,黑白周期为 11)。

培养皿中的斑马鱼(a)和刺激反应柱状图(b),显示一致率。
图 3. 成年斑马鱼的视动反应(OMR)。(a)在鱼缸中央放置一根白色塑料柱,以防止鱼游过中心区域。(b)成年斑马鱼跟随光栅运动的一致率。一致率定义为跟随光栅运动的时间占总记录时间的比例。50% 的值表示鱼处于随机游动状态,而 100% 表示鱼能非常好地跟随光栅运动。使用珠宝镊子对两侧视神经进行约 10 秒的压迫损伤。损伤后,斑马鱼的视动反应表现为随机游动。

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讨论

根据OKR的定义,它是一种动物眼睛自发跟随旋转光栅移动的现象。如果这种行为持续较长时间(例如超过6小时),眼肌可能会疲劳,导致OKR减弱。

成年斑马鱼的视动反应(OMR)已被其他研究者完整描述7。在本视频中,我们仅使用我们的设备展示这种行为。一旦视神经受到挤压损伤,斑马鱼便无法很好地跟随这种光栅图案。

我们使用自行设计的简易装置,对成年斑马鱼和幼体斑马鱼进行了OKR行为测试,并对成年鱼进行了OMR测试,以评估斑马鱼的视觉功能。在本实验中,成年斑马鱼的OKR检测反应在4小时内可保持足够强度,且不会对其造成伤害。这可能使成年斑马鱼的OKR测试在功能研究中更加高效。

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致谢

感谢沈凡女士对斑马鱼饲养工作的支持。本研究得到以下基金资助:胡兵博士(中国科学院“百人计划”、国家自然科学基金 30870833 及中国国家基础科学计划 2009CB941302)。

所有动物实验均按照中国科学技术大学(USTC)动物资源中心和大学动物护理与使用委员会制定的指南和规定进行。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
甲基纤维素西格玛奥德里奇M6385黏度 25 cP

参考文献

  1. Beck, J., Gilland, E., Tank, D., Baker, R. Quantifying the Ontogeny of Optokinetic and Vestibuloocular Behaviors in Zebrafish Medaka, and Goldfish. J Neurophysiol. 92, 3546-3561 (2004).
  2. Brockerhoff, S. Measuring the optokinetic response of zebrafish larvae. Nature Protocols. 1, 2448-2451 (2006).
  3. Emran, F. OFF ganglion cells cannot drive the optokinetic reflex in zebrafish. Proc Natl Acad Sci U S A. 104, 19126-19131 (2007).
  4. Rinner, O., Rick, J., Neuhauss, S. Contrast Sensitivity, Spatial and Temporal Tuning of the Larval Zebrafish Optokinetic Response. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 46, 137-142 (2005).
  5. Roeser, T., Baier, H. Visuomotor Behaviors in Larval Zebrafish after GFP-Guided Laser Ablation of the Optic Tectum. The Journal of Neuroscience. 23, 3726-3734 (2003).
  6. Easter, S., Nicola, G. The Development of Vision in the Zebrafish (Danio rerio). Developmental Biology. 180, 646-663 (1996).
  7. Maaswinkel, H., Li, L. Spatio-temporal frequency characteristics of the optomotor response in zebrafish. Vision Research. 43, 21-30 (2003).

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