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方法文章

RhoC GTP酶激活实验

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DOI:

10.3791/2083

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2010年8月22日

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本文内容

摘要

本方案利用下拉实验测定细胞内活性 RhoC GTPase 的水平。

摘要

RhoC GTPase 与 RhoA GTPase 具有 91% 的同源性。由于 RhoA GTPase 在细胞中广泛存在,目前已开发出多种针对 RhoA GTPase 的试剂和技术。然而,RhoC GTPase 在转移性癌细胞中的表达水平相对较低,因此针对 RhoC 的特异性试剂较少。我们已对 Rho 活化检测方法进行了改进,以用于检测 RhoC GTPase。该技术利用 GST-Rho 结合结构域融合蛋白来沉淀活化的 RhoC GTPase。此外,我们可在实验开始时收集总蛋白,以测定细胞中总 RhoC GTPase(结合 GTP 和 GDP 的形式)的水平。这使得能够确定细胞中活化态与总 RhoC GTPase 的比例。尽管已有多个该实验的商业化版本,但这些商业试剂盒主要针对 RhoA GTPase 优化,通常对 RhoC GTPase 的检测效果不佳。因此,我们对实验的部分步骤进行了优化,并开发了 RhoC 特异性抗体。

方案

1. 准备GST融合蛋白

  1. 制备含有 rhotekin Rho 结合域(RBD)N 端前 90 个氨基酸的 JM109 感受态细菌甘油菌株,该片段已亚克隆至 BamH1/EcoR1 位点的 pGEX3x 载体中。

    为确保高效率,每次实验都必须执行以下步骤。根据我们的经验,新鲜制备的 GST-RBD 是获得稳定且准确的 GTP 酶活化检测结果的关键。
  2. 取约 50 μL 甘油菌(无需解冻)加入 50 mL 含氨苄青霉素的 LB 培养基中,37°C 摇床过夜培养。
  3. 按 1:10 比例转接到 500 mL LB-amp 培养基中,培养 1 小时。
  4. 加入 0.1 mM IPTG 诱导 GST 融合蛋白表达,持续 2 小时。
  5. 将菌液均匀分装至离心管中,使用 Sorval GSA3 转子在 4°C、5000 RPM 条件下离心 20 分钟。
  6. 用 10 mL 裂解缓冲液*重悬沉淀。
    *细菌裂解缓冲液:20% 蔗糖,10% 甘油,50 mM Tris(pH 8.0),0.2 mM Na2S2O5,2 mM MgCl2,2 mM DTT,临用前新鲜添加 PMSF、苯甲酰胺、抑肽酶和亮抑酶肽。
  7. 超声处理 2–3 分钟(具体时间取决于超声仪型号;我们使用 Fischer Sonic Dismembranator Model 500,设置为档位 6,占空比 50%)。
  8. 使用 Sorvall SS34 转子在 4°C、10,000 rpm 条件下离心 20 分钟。此时可取少量上清进行 SDS-PAGE 分析,考马斯亮蓝染色后应可见约 46 kDa 处的蛋白条带。
  9. 弃去上清,加入 1 mL 50% 谷胱甘肽-Sepharose 4B 悬浮液。
  10. 4°C 旋转孵育 30 分钟,用裂解缓冲液洗涤 3 次。
  11. 用 GST-fish 缓冲液**将 GST-RBD/谷胱甘肽-Sepharose 微珠重悬为约 1 mL 的 50% 悬浮液。**GST-Fish 缓冲液:10% 甘油,50 mM Tris(pH 7.4),100 mM NaCl,1% NP-40,2 mM MgCl2,临用前新鲜添加 PMSF、苯甲酰胺、抑肽酶和亮抑酶肽。

2. GST融合蛋白下拉实验

  1. 每次实验使用 5-10 × 106 个细胞
  2. 用预冷的 PBS 洗涤细胞一次,将培养板置于冰上(我们使用装满冰的平底玻璃皿),并加入 0.5 mL GST-fish 缓冲液进行裂解。
  3. 冰上孵育 5 分钟,用橡胶刮棒或平头刮刀收集细胞,转移至微量离心管中,在 4°C 下以 20,000 r.p.m. 离心 5 分钟。
  4. 将上清液转移至新的微量离心管中。取 50 μL 用于测定总 Rho 蛋白量(即结合 GDP 和 GTP 的 Rho 总量)。
  5. 加入 0.5 mL GST-RBD/谷胱甘肽-Sepharose 珠子,在 4°C 下旋转孵育过夜。
  6. 用 GST-fish 缓冲液洗涤 6 次。
  7. 将珠子重悬于 40 μL 2× Laemmli 样品缓冲液中。
    此时应测定步骤 2.4 中取样的总 Rho 蛋白浓度,并准备 30 μg 样品,与相应的激活样品一同上样电泳。
  8. 样品在 90°C 下煮沸 5 分钟,短暂离心后取上清液(避免珠子),上样并使用 12 孔 4–20% 梯度 SDS-PAGE 凝胶进行电泳。
  9. 电泳电压不超过 150 伏,使用 Towbin 缓冲液并以恒定功率 100 W 将蛋白转移至膜上。
  10. 用 5% 脱脂牛奶/TBST 溶液封闭膜,然后用 RhoC 特异性抗体进行杂交检测。

3. 代表性结果

理想结果应在约 22 kDa 处出现单一条带。结果不佳时会出现多条条带或高背景信号,这表明可能存在蛋白质降解、样品洗涤不充分或使用了陈旧的 GST-RBD。

RhoC-GTP 蛋白表达分析;Western 印迹显示无表达至高表达条带;肌动蛋白对照。
图 1. 三种表达不同水平 RhoC GTPase 的独立细胞系用于展示 RhoC 活性形式和总蛋白的低表达、高表达或无表达情况。随后将印迹膜剥离并用针对持家基因肌动蛋白(actin)的抗体重新杂交,作为总 RhoC 蛋白的上样对照。

RhoC GTPase 激活印迹;蛋白质分析、电泳结果、GTPase 信号通路研究。
图 2. 多重条带或高背景信号可能源于蛋白质降解、样品洗涤不充分或使用了陈旧的 GST-RBD。

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讨论

该实验流程中最关键的步骤是新鲜GST-RBD的制备。未能充分重视此步骤是实验失败的主要原因。从GST-RBD的制备(1.2)到与细胞裂解液的过夜孵育(2.5),所有步骤应在同一天内完成。另一个关键步骤是确保有足够的细胞用于制备细胞裂解液。这一点在检测RhoC GTP酶时尤为重要,因为RhoC在细胞中的表达水平通常较低。

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披露

未声明任何利益冲突。

致谢

美国国防部 W81XWH-05-1-0005、W81XWH-06-1-0495、W81XWH-08-1-0029 和 W81XWH-08-1-0356

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
谷胱甘肽-Sepharose 4B 微珠GE Healthcare17-0756-01
Criterion 4-20% Tris-HCl 凝胶Bio-Rad345-0032

参考文献

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重印与许可

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