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方法文章

膜片钳与灌流技术在研究离子通道表达中的应用 非洲爪蟾 卵母细胞

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DOI:

10.3791/2269

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2011年1月10日

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本文内容

摘要

使用膜片钳技术记录BK通道的离子电流。通过向非洲爪蟾卵母细胞Xenopus oocytes注射信使RNA来表达BK通道。膜片钳记录过程中,细胞内溶液由灌流系统控制。

摘要

本文所述方案旨在研究大电导、电压门控及钙激活钾通道(BK通道)的激活机制。该方法通过膜片钳技术记录单个通道或全细胞电流,以分析通道在不同膜电位和胞内钙浓度条件下的开放特性。首先,将表达目标通道蛋白的细胞固定于记录槽中,并使用含适当离子成分的灌流液维持生理环境。随后,通过移液管形成高阻封接,并根据实验需求采用细胞贴附或全细胞记录模式。在记录过程中,施加阶梯式电压脉冲以评估电压依赖性激活,并同步调控灌流液中的Ca²⁺浓度,以探究钙离子对通道活性的调节作用。采集的电流信号经放大、滤波后由数据采集系统储存,并利用专用软件进行离线分析,包括电流-电压关系曲线绘制、激活曲线拟合及动力学参数计算。本方案可系统地揭示BK通道在电压与钙双重调控下的门控行为,适用于通道突变体功能研究及药理学评估。 关键词:BK通道,膜片钳技术,电压门控,钙激活,离子通道功能分析,电生理记录,通道门控行为2+激活的K+ (BK)通道。该方案也可用于研究其他离子通道和神经递质受体的结构-功能关系1BK通道在不同组织中广泛表达,参与多种生理功能,包括调控平滑肌收缩、内毛细胞的频率调谐以及神经递质释放的调节2-6BK通道由膜去极化和细胞内Ca²⁺激活2+ 和 Mg2+ 6-9因此,本方案旨在同时控制膜电压和细胞内溶液。在本方案中,将编码BK通道的信使RNA注入 非洲爪蟾 V-VI期卵母细胞,随后在18°C下培养2-5天10-13采用膜片钳技术,以细胞内侧朝外构型分离出含有单个或多个BK通道的膜片10-13记录过程中,用所需溶液灌流膜片的胞内侧,以检测不同条件下通道的激活情况。综上所述,将BK通道的mRNA注入 非洲爪蟾 卵母细胞用于在卵母细胞膜上表达通道蛋白;采用膜片钳技术,在受控的电压和细胞内溶液条件下记录通过通道的电流。

方案

1. 将 mRNA 注射到卵母细胞中

  1. 注射0.05 - 50 ng体外转录的信使RNA 体外 进入 Xenopus laevis 使用 Nanoject II Auto-Nanoliter Injector(Drummond Scientific Company,型号 3-000-204)对卵母细胞(V–VI 期)进行显微注射,每种 mRNA 重复注射约十二个卵母细胞。
  2. 用ND-96溶液(96 mM氯化钠(NaCl,Mr 58.44 g/mol),2 mM氯化钾(KCl,Mr 74.56 g/mol),1.8 mM氯化钙(CaCl2•2H2O,Mr 147.02),1 mM 氯化镁(MgCl2•6H2O,Mr 203.31 g/mol),5 mM 4-(2-羟乙基)-1-哌嗪乙磺酸(HEPES,Mr 238.31 g/mol),2.5 mM 丙酮酸钠(Mr 110.04 g/mol)和1×青霉素-链霉素,调pH至7.6,然后置于培养板中,在培养箱中孵育 18°C 超过 2 天。

2. 准备灌注系统

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讨论

卵母细胞表达系统因其内源性离子通道背景信号相对较低,是进行电压门控离子通道电生理学表征的理想选择。此外,由于该系统属于瞬时表达系统,因此为开展这些通道的突变研究提供了高效的方法。然而需要注意的是,卵母细胞表达系统与哺乳动物细胞系统存在差异,因此在翻译后修饰以及与不同亚基的结合方面可能存在区别。此外,两种细胞间的脂质浓度可能存在差异,从而影响离子通道的功能特性。

每次实验后,应使用去离子水清洗灌流管路、笔形电极和探头,以防止堵塞。务必使用新鲜的漂白剂处理银电极丝,确保其表面被氯化银覆盖,否则记录结果将不准确。调整数据采集的配置设置,使测试电位与指令电位完全相等。保持膜片钳电极清洁有助于实验,因此应使用盖子保护其免受污染,并仅在使用前进行火焰抛光。

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披露

未声明任何利益冲突。

致谢

本工作获得了美国国立卫生研究院资助 R01-HL70393 和 R01-NS060706 的支持,资助对象为 J.C。J.C. 是斯宾塞·T·奥林教席资助下的生物医学工程教授。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
Nanoject II 自动纳升级注射器Drummond Scientific3-000-204
P-97 Flaming/Brown 微量移液器拉制仪Sutter Instrument Co.P-97
灌流系统及电子控制器AutoMate Scientific, Inc.ValveLink 16灌流尖端内径:100 微米
倒置显微镜Olympus CorporationCKX31
玻璃移液管VWR international53432-921
Flaming/Brown 微量移液器拉制仪Sutter Instrument Co.P-97
放大器Axon InstrumentsAXOPATCH 200B
计算机接口INSTRUTECH CorporationITC-18
前置放大头级Axon InstrumentsCV 203BU

参考文献

  1. Methfessel, C. Patch clamp measurements on Xenopus laevis oocytes: currents through endogenous channels and implanted acetylcholine receptor and sodium channels. Pflügers Arch. 407, 577-588 (1986).
  2. Toro, L., Wallner, M., Meera, P., Tanaka, Y.

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