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方法文章

通过子宫内纳米注射在小鼠胚胎模型中操控神经板细胞

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2025年8月29日

本文内容

摘要

来源:Mangold, K., H el. al., 胚胎发育第7.5天小鼠神经板靶向子宫内纳米注射(NEPTUNE)技术。J. Vis. Exp. (2022)

本视频展示了在小鼠胚胎模型中针对神经板进行宫内纳米注射的方法。将高滴度的慢病毒溶液注射到羊膜腔中,使其整合到神经板细胞内,从而实现神经发育研究和治疗应用中的稳定基因操作。

方案

所有涉及动物模型的实验程序均已通过当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会的审核。

1. 注射

注意:本实验中使用的所有器械均需在手术前以及每只小鼠之间进行灭菌处理。

  1. 对具有理想大小腔隙的第一只雌性动物进行麻醉。
  2. 将雌性动物放置于手术台上并固定。
  3. 在眼睛上涂抹眼用凝胶以防止角膜干燥,并皮下注射镇痛药物。
    注意:推荐镇痛药:布托啡诺(0.05–0.1 mg/kg 体重)或氟尼辛(2.5 mg/kg)或类似药物,具体应符合当地动物福利法规。围手术期多模式镇痛通过注射镇痛药和异氟烷维持。
  4. 使用浸有 0.5 mg/mL 氯己定溶液(或类似物)的布巾无菌擦拭下腹部,并擦干皮肤。使用手术剪在下腹部做一条 1.5–2.0 cm 的垂直正中皮肤切口。
    注意:应按照当地批准的消毒程序准备手术区域。
  5. 轻柔提起皮肤,并将切口周围约 1 cm 范围内的皮肤与下方肌肉层分离,以便术后缝合。
  6. 在肌肉层做一条 1 cm 的垂直正中切口。
  7. 用一对镊子提起一侧的皮肤和肌肉层,用另一对镊子寻找子宫角。
    注意:蜕膜排列如同项链上的珠子,而肠道则为一条长而连续的管道(图 1A)。
  8. 用镊子小心地将两侧子宫角从腹腔中拉出....

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结果

超声引导下显微注射装置,包括黏土稳定器、胚胎放置位置和体积参考指南。

图1:成功注射时羊膜腔的最佳大小和方向。A)多个E7.5天的蜕膜组成的子宫角,形状类似一串球体(下方),与大肠(上方)对比。(B)用镊子夹住蜕膜之间的子宫组织(白色虚线所示)。避免直接用镊子挤压蜕膜(白色箭头所示),因为在此早期阶段,蜕膜和发育中的胚胎.......

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
1 mL 注射器BD生物科学309628
27 G 针头BD 生物科学300635
3.5 英寸毛细管Drummond Scientific3000203G/X用于吸取自制针头
70 MHz MS 系列换能器Visual SonicsMS700
Aquasonic 清澈超声耦合剂Parker Laboratories3月-50
Autoclip 施夹器 9 mmAngthos12020-09
CD1小鼠查尔斯河实验室,德国Crl:CD1(ICR)雌性:8周龄起;雄性:12周龄起
棉签OneMed Sverige AB120788
DPBSGibco14190094
精细直型敷料镊 13 cmAgnthos08-032-130
EZ夹子 9 mmAngthos59027视频片段
虹膜剪,超锐型,直头,9 cmAgnthos307-336-090
异氟烷Baxter Medical ABEAN: 50085412586613购自瑞典药房
KimwipesKimberly Clarke7557
膜片剥离技术Visual SonicsSA-11053
微移液管拉制仪Sutter InstrumentP-97
油泥Sense AB10209
小鼠操作台Visual Sonics50249
Nanoject II 自动注射器套件德拉蒙德3-000-205A
Parafilm贝米斯HS234526C
带中央开口的培养皿(低壁)Visual SonicsSA-11620
培养皿,(ØxH):92 × 16 毫米Sarstedt82.1472.001
Rely+On Virkon杜邦130000132037消毒剂
硅胶膜Visual SonicsSA-11054
Steri 250 热珠灭菌器Angthos31100
外科胶带(1.25 cm × 9.14 m)Medicarrier67034
Vevo Compact Dual(医用空气) & O2) 麻醉系统Visual SonicsVS-12055
Vevo 成像系统 2Visual SonicsVS-11983
Vevo2100Visual SonicsVS-20047
Vicryl 6-0;C-3 针,45 cm 紫色单丝AgnthosJ384H

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