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利用多孔硅薄膜在大鼠嗜铬细胞瘤12细胞中持续递送神经生长因子

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2025年8月29日

本文内容

摘要

来源:Rosenberg, M., 等. 设计多孔硅薄膜作为神经生长因子的载体. J. Vis. Exp. (2019).

本视频展示了使用可降解的纳米结构多孔硅(PSi)薄膜持续释放神经生长因子(NGF),以支持PC12细胞分化的应用。NGF通过静电相互作用吸附在薄膜的孔隙中,并通过扩散和支架降解逐步释放到培养基中。这种可控释放可促进PC12细胞的存活,并在较长时间内促进神经突的生长与分支。

方案

1. 氧化多孔硅(PSiO2)载体的制备

  1. 切割一片单面抛光的硅(Si)晶圆 <100> 使用金刚石笔将正面重掺硼的p型硅片(电阻率为0.95 mΩ·cm)切割成1.5 cm × 1.5 cm的样品。
  2. 在管式炉中,于环境空气下以400 °C氧化Si样品2 h(升温速率:25 °C/min,自然冷却)。
  3. 将硅样品浸入由48%水合氢氟酸(HF)和双蒸水(ddH₂O)组成的溶液中2O)、甲醇(99.9%)和乙醇(99.9%)按体积比1:1:3混合的溶液中浸泡5分钟;随后用乙醇冲洗样品三次,并在氮气流下干燥。
    注意:仅可使用塑料器皿配制和储存氢氟酸溶液,因为氢氟酸会溶解玻璃。
    警告:HF 是一种高度腐蚀性的液体,必须极其小心地操作。若发生接触,应立即用大量清水彻底冲洗,并在受影响区域涂抹 HF 解毒凝胶;随后立即就医。
  4. 将硅样品安装在聚四氟乙烯刻蚀池中,使用铝箔条作为背接触,铂丝线圈作为对电极。
  5. 在250 mA/cm²的恒定电流密度下,将牺牲层置于体积比为3:1的氢氟酸水溶液与乙醇(99.9%)的混合液中刻蚀30秒2;然后用乙醇冲洗所得PSi薄膜表面三次,并在氮气流下干燥。
  6. 将新鲜蚀刻的多孔层在0.1 M的氢氧化钠(NaOH)水溶液中溶解2分钟。随后用乙醇冲洗三次,并在氮气流下干燥。
  7. 将样品浸入48%的氢氟酸(HF)水溶液中,ddH₂O2O₂ 和乙醇(99.9%)(1:1:3 v/v)混合溶液中处理 2 分钟,随后用乙醇冲洗三次,并在氮气流下干燥。
  8. 在体积比为3:1的氢氟酸水溶液与乙醇(99.9%)混合液中,以250 mA/cm²的恒定电流密度对硅样品进行电化学腐蚀,持续20秒2;然后用乙醇冲洗所得PSi薄膜表面三次,并在氮气流下干燥。
  9. 将新鲜蚀刻的多孔硅(PSi)样品在管式炉中于环境空气下800 °C进行热氧化处理1小时(升温速率:25 °C/min,自然冷却),以形成多孔SiO₂2 (PSiO2支架
  10. 旋涂 PSiO2 以4,000 rpm转速旋涂正性厚光刻胶1分钟;随后将涂覆样品在90 °C下烘烤2分钟(升温速率:5 °C/min,自然冷却)。
  11. 将PSiO切碎2 使用切割锯将样品切成8 mm × 8 mm的样品。
  12. 用丙酮浸泡切割后的样品3小时以去除光刻胶,随后用乙醇彻底冲洗,并在氮气流下干燥。

2. 用神经生长因子(NGF)负载PSiO2

  1. 配制NGF负载溶液:将20 µg小鼠β-NGF溶解于400 µL体积比为1:1(v/v)的0.01 M磷酸盐缓冲盐水(PBS)与ddH2O混合溶液中。
  2. 在PSiO2样品表面加入52 µL上述负载溶液,置于加盖容器中室温(RT)孵育2小时。
    注意:孵育过程中需保持容器内高湿度,防止溶液干燥。
  3. 孵育结束后,收集样品表面的溶液,用于后续测定PSiO2载体中NGF的负载量。
    注意:NGF向PSiO2中的负载应在使用前立即进行;由于蛋白质干燥和变性的风险,本步骤不可暂停。

3. 含NGF的PSiO2载体存在下的细胞活力与生长

  1. 大鼠嗜铬细胞瘤(PC12)细胞培养
    1. 通过向 Roselle Park 医学研究所(RPMI)培养基中添加 10% 马血清(HS)、5% 胎牛血清(FBS)、1% L-谷氨酰胺、1% 青霉素-链霉素和 0.2% 两性霉素制备基础生长培养基。
    2. 通过向 RPMI 培养基中添加 1% HS、1% L-谷氨酰胺、1% 青霉素-链霉素和 0.2% 两性霉素制备分化培养基。
    3. 将细胞悬液(106 个细胞)接种于含 10 mL 基础生长培养基的 75 cm2 培养瓶中,培养 8 天;每隔 2 天向培养瓶中添加 10 mL 基础生长培养基。
    4. 为获得分化的 PC12 细胞培养物,将细胞悬液转移至离心管中,在室温下以 200 × g 离心 8 分钟,弃去上清液。
    5. 用 5 mL 新鲜基础生长培养基重悬细胞,并在室温下以 200 × g 再次离心 5 分钟;弃去上清液,将细胞沉淀重悬于 3 mL 基础生长培养基中。
    6. 为分离细胞团簇,使用 23 G 注射器反复吹打细胞 10 次。
    7. 使用血细胞计数板对细胞进行计数,并将 104 个细胞/cm2 的工作面积接种至涂有 I 型胶原的培养板中,加入分化培养基。
    8. 24 小时后,每孔加入新鲜的小鼠 β-NGF(50 ng/mL)或载有 NGF 的 PSiO2 载体。
      注意:更高浓度的 NGF(>50 ng/mL)具有与指定浓度相同的效果。
    9. 每隔 2 天更换一次分化培养基。
    10. 为评估细胞活力,在代表性时间点加入 10%(v/v)基于刃天青的活力指示溶液,于 37 °C 孵育 5 小时;使用分光光度计在 490 nm 处测定吸光度。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
丙酮Gadot830101375
两性霉素Biological Industries03-028-1B
氢氟酸水溶液 (48%)Merck101513
AZ4533 光刻胶Metal Chem, Inc.AZ4533
BSA 第五组分MP biomedicals216006950
BSA 溶液 (10%)Biological Industries03-010-1B
I 型胶原蛋白Corning Inc.354236
胶原酶EncoLS004176
胶原蛋白包被的塑料盖玻片NUNC Thermanox1059846
D-(+)-葡萄糖Sigma-Aldrich ChemicalsG8170
Dispase-IISigma-Aldrich Chemicals4942078001
无水乙醇 (99.9%)Merck818760
胎牛血清Biological Industries04-121-1A
盐酸胍Sigma-Aldrich ChemicalsG7294
Ham's F-12 营养混合物Thermo Scientific11765054
HBSSThermo Scientific14185-045
HEPES (1 M)Thermo Scientific15630-056
马血清Biological Industries04-124-1A
L-15 培养基Sigma-Aldrich ChemicalsL5520
层粘连蛋白Thermo Scientific23017015
L-谷氨酰胺Biological Industries03-020-1A
小鼠 β-神经生长因子Peprotech450-34-20
正常驴血清 (NDS)Sigma-Aldrich ChemicalsG9023
木瓜蛋白酶Sigma-Aldrich Chemicalsp-4762
PBS (pH 7.4) 将 10 mM Na₂HPO₄、1.8 mM KH₂PO₄、137 mM NaCl 和 2.7 mM KCl 溶解于双蒸水 (ddH₂O, 18 MΩ·cm) 中配制而成。
PBS ×10Biological Industries02-020-1A
PC12 细胞系ATCCCRL-1721
青霉素-链霉素Biological Industries03-032-1B
聚-L-赖氨酸Sigma-Aldrich ChemicalsP4832
PrestoBlue 试剂Thermo ScientificA13261
RPMI 培养基Biological Industries01-100-1A
硅晶圆Siltronix Corp. 高度硼掺杂,p 型,电阻率为 0.00095 Ω·cm,<100> 晶向
叠氮化钠Sigma-Aldrich ChemicalsS2002
氢氧化钠 (NaOH)Sigma-Aldrich ChemicalsS8045
单宁酸Sigma-Aldrich Chemicals403040
吐温 X-100Chem-Impex International Inc.1279

标签

PC12细胞持续释放静电吸附神经突生长细胞分化支架降解可控递送胶原涂层