需要JoVE订阅才能观看此内容。 请登录或开始免费试用

方法文章

用于小鼠模型中无创神经调节的眼科药物递送

583 次观看

2025年8月29日

本文内容

摘要

来源:Zhan, J., et al. 用于长期调控DREADD控制的神经元活动的非侵入性策略。J. Vis. Exp. (2019)

本视频展示了一种用于靶向神经调节的非侵入性眼科药物递送方法。该药物以滴眼液形式给药,经循环系统吸收后穿过血脑屏障,激活特定的神经元受体。

方案

所有涉及动物模型的操作均已经过当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会的审核。

1. 使用滴眼液重复给予氯氮平-N-氧化物(CNO)

  1. 在给予滴眼液前3-4天,每天对每只小鼠进行3分钟的颈背部抓握操作,使其适应抓握处理。
  2. 将氯氮平-N-氧化物(CNO,5 mg)溶解于1 mL无菌0.9%生理盐水溶液中(储备液:5 mg CNO/mL)。将溶液置于4°C冰箱中保存。
  3. 实验开始前称量每只小鼠的体重,以确定所需给予的CNO剂量。每眼使用1-3 μL滴液,以达到1.0 mg CNO/kg体重的剂量。
    注意:例如,一只20 g的小鼠应接受双眼滴注(每眼2 μL)。
  4. 在小鼠的非活动期(光照期)给予滴眼液,即关灯前2小时(zeitgeber时间(ZT)10)。若需在小鼠活动期(黑暗期)给予CNO,操作时应确保使用微弱红光,以便妥善处理动物。
    注意:应采取预防措施,避免干扰实验动物的昼夜节律(及光/暗周期)。
    1. 使用P10微量移液器吸取所需体积(1-3 μL)的CNO溶液,以实现1.0 mg CNO/kg的剂量。
      注意:每次滴眼应使用新的无菌移液器吸头。本组实验中采用双眼滴注CNO;然而,若需较低CNO浓度,也可采用单眼滴注。
    2. 通过抓握颈背部固定小鼠。
    3. 缓慢排出溶液,直至移液器尖端形成稳定的液滴。
    4. 小心将液滴靠近小鼠角膜,直至溶液被递送。移液器尖端不得接触小鼠眼部。
    5. 释放小鼠,并将其放回原有饲养笼中。
  5. 每天重复此操作,持续5天。
    注意:该持续时间可根据实验需求进行调整。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
BSASigma生命科学#A2153-100G冻干粉末,纯度≥96%(琼脂糖凝胶电泳法)
C57BL/6J小鼠杰克逊实验室#000664雄性小鼠,3月龄
毛细管Drummond科学公司#3-000-203-G/X外径:1.14英寸
氯氮平-N-氧化物Sigma#C08325mg
异氟烷Baxter#NDC 10019-360-60异氟烷,美国药典标准
Microinjector IIIDrummond科学公司#3-000-207Nanoject III — 可编程纳升级注射器
封片介质Invitrogen#P36930Prolong Gold 抗荧光淬灭封片试剂

标签

DREADD受体滴眼给药血脑屏障穿透海马神经元激活CNO剂量计算动物操作规程暗红光使用