介绍了一种可实现癌细胞与外源性透明质酸(HA)相互作用高分辨率分析的新方法。通过结合碳二亚胺化学与微接触印刷技术,制备出图案化表面。
方法文章
介绍了一种可实现癌细胞与外源性透明质酸(HA)相互作用高分辨率分析的新方法。通过结合碳二亚胺化学与微接触印刷技术,制备出图案化表面。
癌症的侵袭与进展涉及一种运动性细胞表型,该表型受到肿瘤微环境中生长因子/细胞因子及细胞外基质(ECM)成分的复杂调控。透明质酸(HA)是一种间质ECM成分,已知可通过增强肿瘤细胞的侵袭、生长和血管生成来促进肿瘤进展1。HA与其细胞表面受体CD44相互作用,可触发一系列信号转导事件,促进肿瘤细胞的增殖、存活和迁移,从而增加转移扩散的风险2-3。HA是一种带负电荷、非硫酸化的糖胺聚糖,由D-葡萄糖醛酸和D-N-乙酰氨基葡萄糖重复单元组成。由于其重复的二糖单元上含有羧基和羟基,天然HA具有较强的亲水性,并易于进行化学修饰,例如引入硫酸基团以实现光反应性固定4-5。以往关于将HA固定于表面的研究,利用了HA及其硫酸化衍生物的生物抗性特性,以调控细胞在表面的黏附行为6-7。在这些研究中,细胞优先黏附于非HA图案化区域。
为了分析细胞与外源性透明质酸(HA)的相互作用,我们开发了具有图案化的功能化表面,可实现对癌细胞与HA相互作用的可控研究及高分辨率可视化。我们采用微接触印刷技术(uCP)在玻璃表面定义出离散的HA图案区域。通过“锚定”策略,利用碳二亚胺交联化学法将HA固定在表面8。玻璃表面经氨基硅烷微接触印刷后,与含有优化比例的EDC和NHS的HA溶液反应,从而在图案化阵列中实现HA的固定。将碳二亚胺化学法与mCP技术结合,可将HA特异性地固定在预定区域,制备出适用于体外(in vitro)研究的表面。结肠癌细胞和乳腺癌细胞均可自发地与HA微图案表面发生相互作用。癌细胞在24小时内发生黏附,并在48小时内出现增殖。利用HA微图案表面,我们证实癌细胞的黏附是通过HA受体CD44介导的。此外,HA图案化表面适用于扫描电子显微镜(SEM)观察,可对癌细胞在HA图案上的黏附突起和铺展进行高分辨率成像,从而分析癌细胞在外源性HA上的运动能力。
1. 用于微图形印章制备的标准光刻技术
2. HA 微图案化
3. 在HA微图案化表面上进行细胞培养
4. 代表性结果:
用于将透明质酸(HA)共价固定于APTES图案化玻璃载片的碳二亚胺化学反应如图1A所示。EDC是一种零长度交联剂,可与HA的羧基反应生成胺反应性中间体。由于该中间体易发生水解,因此加入NHS以提高碳二亚胺反应效率。当HA溶液与APTES微图案相互作用时,HA中间体与APTES的伯胺基团之间形成稳定的酰胺键。使用荧光显微镜观察HA图案化表面的示例以及ImageJ荧光强度分析结果,展示了HA的图案化固定效果(图1B-C)。
HA 微图案化表面可用于研究癌细胞与外源性 HA 的相互作用。MDA-MB-231 人乳腺癌细胞系和 LS174t 人结肠癌细胞系均优先黏附于 HA 微图案化区域(图 2)。利用扫描电子显微镜进行高分辨率成像,可用于分析培养细胞与固定化 HA 表面之间的相互作用(图 3)。

图1 透明质酸(HA)微图案化表面。(A)HA功能化表面构建过程的示意图;(B)荧光素(绿色)标记的HA微图案化表面的荧光图像;(C)使用ImageJ软件生成的三维像素分布图,显示离散的HA图案。比例尺 = 100μm。经Elsevier许可改编自9。

图2. 癌细胞在透明质酸(HA)微图案化表面的黏附。结肠癌(A)和乳腺癌(B)细胞在培养24小时后优先黏附于HA区域。经Elsevier许可改编自9。

图3. 癌细胞与HA的相互作用。(A)结肠癌细胞(A)在HA表面培养后的扫描电子显微镜图像,左图为低倍镜视野,右图为左图方框区域的高倍镜视野;(B)乳腺癌细胞(B)在HA表面培养后的扫描电子显微镜图像,左图为低倍镜视野,右图为左图方框区域的高倍镜视野。
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本文介绍的透明质酸(HA)微图形化方法可用于研究细胞与外源性HA的相互作用。已知HA在癌症进展中发挥关键作用1,但针对癌细胞在二维HA图案化表面相互作用的研究仍十分有限。对外源性HA微图案进行可控性研究,可实现对癌细胞黏附、生长和迁移的高分辨率可视化观察,有助于进一步阐明癌症发生发展的基本机制。
通过结合碳二亚胺化学与微接触印刷技术,我们开发了具有明确透明质酸(HA)图案的表面,用于研究癌细胞的相互作用。该方法可制备出图案一致的表面,适用于细胞培养及多种分析技术,包括但不限于免疫荧光染色、扫描电子显微镜观察、抑制实验、迁移实验等。
此外,光刻技术可轻松实现任意所需图案的微加工,从而控制透明质酸(HA)在特定应用中的固定化。例如,制备具有线性条纹的聚二甲基硅氧烷(PDMS)印章,可将HA以线性阵列形式固定,有助于分析细胞沿图案化HA的迁移行为。
尽管我们主要利用该方法阐明癌细胞与透明质酸(HA)的相互作用,但该技术同样适用于研究其他细胞类型与HA...
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视频示意图经许可转载;版权所有 © Wiley-VCH Verlag GmbH & Co. KGaA。Dickinson LE, Kusuma S, Gerecht S. 利用生物材料重建胚胎干细胞的分化微环境。Macromol. Biosci. 2010; 10月21日。[提前在线发表]。
作者感谢约翰斯·霍普金斯大学表面分析实验室的使用支持,该实验室由美国国家科学基金会资助,作为材料研究科学与工程中心的一部分。LED 是 IGERT 培训项目学员及美国国家科学基金会研究生奖学金获得者。本研究部分由美国国立卫生研究院资助项目 U54CA143868 支持。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| SU-2025 光刻胶 | MicroChem Corp. | Y111069 | |
| SU-8 显影液 | MicroChem Corp. | Y020100 | |
| Sylgard 184 | Dow Corning | ||
| 3-氨丙基三甲氧基硅烷 (APTMS) | Sigma-Aldrich | 281778 | |
| 2- [甲氧基(聚乙二醇)丙基] 三甲氧基硅烷 (Peg-silane) | Gelest Inc. | SIM6492.7 | |
| 1-乙基-3-(3-二甲基氨基丙基)碳二亚胺 | Thermo Fisher Scientific, Inc. | 22980 | |
| N-羟基琥珀酰亚胺 (NHS) | Thermo Fisher Scientific, Inc. | 24500 | |
| 荧光素标记透明质酸 (FL-HA) | Sigma-Aldrich | F1177 | 用 10 ml 去离子水重悬 |
| MDA-MB-231 乳腺癌细胞 | ATCC | HTB-26 | |
| LS174t 结肠癌细胞 | ATCC | Cl-188 |
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