来源:Shivaiah, K., 等.从植物叶片组织和蓝细菌中分离质体小球脂滴.J. Vis. Exp. (2022)
该视频展示了从蓝细菌中分离质体小球的过程。首先准备蓝细菌培养物,随后通过机械力破碎细胞。光合色素的释放表明细胞裂解成功。接着使用蔗糖阶梯梯度离心法,根据密度差异分离细胞组分,使低密度的质体小球在梯度顶部形成明显的条带。收集该组分并保存,用于后续分析。
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2025年10月30日
来源:Shivaiah, K., 等.从植物叶片组织和蓝细菌中分离质体小球脂滴.J. Vis. Exp. (2022)
该视频展示了从蓝细菌中分离质体小球的过程。首先准备蓝细菌培养物,随后通过机械力破碎细胞。光合色素的释放表明细胞裂解成功。接着使用蔗糖阶梯梯度离心法,根据密度差异分离细胞组分,使低密度的质体小球在梯度顶部形成明显的条带。收集该组分并保存,用于后续分析。
1. 粗提质体小球的分离
表1:从植物叶片组织或蓝细菌中分离质体小球的缓冲液配方。
| 缓冲液组成 a | |
| 研磨缓冲液 | 50 mM HEPES-KOH (pH 8.0) |
| 5 mM 氯化镁 (MgCl2) | |
| 100 mM 山梨醇 | |
| 5 mM 抗坏血酸 b | |
| 5 mM 还原型半胱氨酸 b | |
| 0.05 % (w/v) 牛血清白蛋白 (BSA) b | |
| R 培养基 | 50 mM HEPES-KOH (pH 8.0) |
| 5 mM MgCl2 | |
| R 培养基 0.2 | 50 mM HEPES-KOH (pH 8.0) |
| 5 mM MgCl2 | |
| 0.2 M 蔗糖 | |
| R 培养基 0.7 | 50 mM HEPES-KOH (pH 8.0) |
| 5 mM MgCl2 | |
| 0.7 M 蔗糖 | |
| 缓冲液 A | 25 mM HEPES-KOH (pH 7.8) |
| 250 mM 蔗糖 | |
| a. 提供的是各缓冲液组分的终浓度。 | |
| b. 必须在分离当天新鲜加入。尽管缓冲液可在分离前一天配制,但某些成分以及所有磷酸酶和蛋白酶抑制剂均需在分离当天新鲜添加。 | |
2. 纯化质体小球的收获
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图1:质体小球和类囊体的分离及免疫印迹分析。(A)来自Z. mays的代表性纯化质体小球样品,在从蔗糖梯度中提取之前的形态。(B)来自干燥处理的E. nindensis
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 抗坏血酸 | BDH | BDH9242 | |
| 牛血清白蛋白 | Proliant Biological | 68700 | |
| 法国压力细胞(型号 FA-079) | SLM/Aminco | N/A | |
| HEPES | Sigma Aldrich | H3375 | |
| 氯化镁 | Sigma Aldrich | M8266 | |
| Multitron 摇床培养箱 | Infors HT | N/A | |
| 氢氧化钾 | Fisher Chemicals | M16050 | |
| 还原型半胱氨酸 | MP Biochemicals | 101444 | |
| 山梨醇 | Sigma Aldrich | S3889 | |
| 蔗糖 | Sigma Aldrich | S9378 | |
| Synechocystis sp. PCC 6803 | N/A | N/A | |
| Optima MAX-TL 超速离心机 | Beckman Coulter | A95761 |