所有涉及动物模型的操作均已经过当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会的审核。
1. 小鼠经口咽部吸入Klebsiella pneumoniae的气管内接种
- 确保小鼠通过尾部标记、纹身或其他经批准的标识方法进行唯一识别。
- 使用P200移液器在将小鼠移出异氟烷前预先吸取细菌接种剂量,以加快操作流程。为获得最佳气管内滴注效果,应使用以下体积: <100 µl 以防止溢出。此处使用 2000 菌落形成单位 (CFU)/50 µl 的 K. pneumoniae.
- 在透明麻醉舱中使用异氟烷气体对小鼠进行麻醉(例如,2%异氟烷,流速为1 L/min)或根据机构指南进行。每次麻醉的小鼠数量由实验人员的操作舒适度决定,通常为1-2只。观察呼吸情况,当可见深呼吸且呼吸间隔可达2-3秒时,确认已达到麻醉深度。注意: 如果担心挥发性(吸入性)麻醉剂可能产生的混杂效应,可改用腹腔注射氯胺酮/赛拉嗪进行麻醉。采用上述方法时,深度麻醉仅持续数分钟。若实施更长时间的麻醉,应使用眼膏以防止眼球干燥。
- 小鼠麻醉后,将其置于半卧位仰卧姿势,通过上颌门齿悬挂在倾斜的有机玻璃板上的钉子间拉伸的橡皮筋上(图1).
- 用一对钝头无齿镊子轻轻将小鼠舌头向一侧牵拉,再用P200移液器将给药剂量注入口腔内。操作时需格外小心,避免对舌头或口咽部造成损伤。
- 在保持舌头回缩的同时,用戴手套的手指轻轻堵住小鼠鼻孔,直至其开始吸气。持续遮盖鼻孔,直到小鼠完成两次或更多次吸气,且口腔内无可见液体为止。由于小鼠为 obligate nose breathers(必须通过鼻腔呼吸),遮盖鼻孔有助于确保小鼠将细菌吸入肺部。
- 将小鼠从接种板上取下并放回笼中,将其置于仰卧位,以防止在小鼠从麻醉中恢复期间垫料或碎屑堵塞鼻孔。
- 所有小鼠给药完毕并从麻醉状态清醒后,将小鼠饲养于独立隔间或房间内,且该空间仅容纳接受过相同给药处理的小鼠 K. pneumoniae 每天监测小鼠,包括体重,若感染后时间超过48小时。
- 若让小鼠超过48小时,则需每日更换垫料和/或提供辅助加热。
2. 测定肺部及外周组织中的细菌载量
- 开始前:为肺和脾准备含有900 µl 1×磷酸盐缓冲液(PBS)的稀释管,为血液准备含有90 µl 1× PBS的稀释管。标记用于细菌培养的平板并置于室温下;这样在组织采集后,可最大限度缩短从匀浆到接种培养之间的时间。
注意:由于通过吸入感染可能导致细菌在肺部沉积不均,建议每只小鼠仅用于分析总气道细胞数量或总(双侧)肺细菌负荷,二者选其一。 - 根据机构指南实施小鼠安乐死。此处采用150 mg/kg剂量的戊巴比妥钠注射致死,或等效剂量的商品化安乐死溶液,随后进行放血。此方法可避免因CO2吸入和颈椎脱位可能引起的肺部并发症。
- 取出脾脏并放入含有2 ml 1× PBS的容器中,将管子置于冰上。每次处理不同组织或小鼠之间,需用乙醇清洁器械。
- 在冰上对组织进行匀浆,建议使用一次性匀浆器,并在每个样本之间更换。一次性匀浆器头可在实验间高温高压灭菌后重复使用。
- 组织匀浆完成后,进行系列稀释并接种平板。通过在塑料平板上划线分隔,将同一组织/稀释度的样品以双复孔形式接种于同一块胰蛋白胨大豆琼脂(TSA)平板上。以下列出了接种与稀释建议(所有情况下均取10 µl样品涂布于平板),该建议基于感染后24小时的解剖结果。若分析48–72小时的样本,由于后期细菌负荷增加,可能需要接种更多稀释梯度。
- 对于脾脏:将100 µl匀浆后的脾组织依次加入900 µl无菌1× PBS中,进行1:10至1:100的稀释。对原始匀浆液及两个稀释度均进行双复孔接种。
- 让涂布的样品短暂干燥。
- 将TSA平板倒置,放入37 °C静置培养箱中过夜培养。
- 通过计算平板两侧及各稀释度的菌落数平均值,确定定植细菌数量。结合肺组织初始体积5 ml、脾组织初始体积2 ml的稀释因素,计算各组织总的菌落形成单位(CFU)。