来源: Scarborough, R. J., et al. 针对HIV-1产生的RNA在基因或药物治疗中应用的疗效与毒性评估。 J. Vis. Exp. (2016)。
本视频演示了一种逆转录酶(RT)检测方法,用于评估待测RNA对病毒样颗粒(VLP)产生的影响。将细胞共转染质粒后,通过测量RT活性来定量反映VLP的产量。RT活性的降低表明待测RNA抑制了病毒基因的表达。
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2026年7月31日
来源: Scarborough, R. J., et al. 针对HIV-1产生的RNA在基因或药物治疗中应用的疗效与毒性评估。 J. Vis. Exp. (2016)。
本视频演示了一种逆转录酶(RT)检测方法,用于评估待测RNA对病毒样颗粒(VLP)产生的影响。将细胞共转染质粒后,通过测量RT活性来定量反映VLP的产量。RT活性的降低表明待测RNA抑制了病毒基因的表达。
1. 病毒产生检测
注意:常用的病毒定量检测方法包括通过酶联免疫吸附试验(ELISA)检测人免疫缺陷病毒(HIV)-1 衣壳蛋白(p24)的表达、通过逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR)对病毒RNA进行定量,以及检测HIV-1逆转录酶(RT)的活性。步骤1.2至1.5介绍了定量检测HIV-1 RT活性的方法。
注意:仅当BSL3实验室中没有放射性工作站时,才需要执行步骤1.2。如果培养板无需移出BSL3实验室,则直接进行步骤1.3,并加入50 µl放射性/病毒裂解液(表1),以替代25 µl的放射性裂解液。
表1: 非商业化缓冲液和试剂的组分。所有非商业化缓冲液和试剂的配方均已提供。
| 缓冲液/试剂名称 | 成分 |
| 病毒裂解液混合物 | 60 mM Tris-HCl(来自1 M Tris-HCl,pH 7.8),75 mM KCl,5 mM MgCl2,1.04 mM EDTA,1% NP-40。 |
| 放射性混合物 | 60 mM Tris-HCl(来自1 M Tris-HCl,pH 7.8),75 mM KCl,5 mM MgCl2,1.04 mM EDTA,10 µg/ml Poly(A),0.33 µg/ml oligo dT。使用前立即加入:每500 µl混合物中加入8 mM二硫苏糖醇(DTT, C4H10O2S2)和5 µl [32P] dTTP(3,000 Ci/mmol)。 |
| 放射性/病毒裂解液混合物 | 60 mM Tris-HCl(来自1 M Tris-HCl,pH 7.8),75 mM KCl,5 mM MgCl2,1.04 mM EDTA,0.1% NP-40,5 µg/ml Poly(A),0.16 µg/ml oligo dT。使用前立即加入:每1 ml混合物中加入8 mM二硫苏糖醇(DTT, C4H10O2S2)和5 µl [32P] dTTP(3,000 Ci/mmol)。 |
| 2x SSC | 7.53 g NaCl 和 8.82 g 柠檬酸钠-2H2O 溶于 1 L H2O 中。 |
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图1:测试siRNA对HIV-1产生的影响。(A)不同长度和对称性的siRNA设计。利用HIV-1 RNA中的一个保守序列(1498靶位点)设计了具有不同长度(17至29个核苷酸的有义链)的对称性和非对称性siRNA(si1498-)。图中显示了预期的有义链(上方,黑色)和反义链(下方,红色)。(B)si1498长度变异体对HIV-1产生的抑制作用。相对于长Dicer底物无义siRNA(siNS),转染了对称或非对称si1498长度变异体的HEK293T细胞上清液中HIV-1逆转录...
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养板,96 孔,24 孔,6 孔。 | Corning | 353075, 353047, 353043 | |
| [³²P]dTTP | Perkin Elmer | BLU505H | |
| poly(A) RNA 模板 | Sigma-Aldrich | 10108626001 | |
| 寡聚(dT)12-18 DNA 引物 | Thermo Fisher | 18418-012 | |
| DEAE 滤膜纸 | Perkin Elmer | 1450-522 | |
| 微孔板闪烁计数器 | Perkin Elmer | 1450-024 | |
| 裂解缓冲液片剂 | Roche | 4693159001, 4906837001 | 蛋白酶和磷酸酶抑制剂 |