来源:Klaus, J. P., et al 测量沙粒病毒细胞吸附的高灵敏度检测方法。J. Vis. Exp. (2016)。
本视频演示了如何测量沙粒病毒与猴肾细胞的结合。该检测方法利用低温阻断内吞作用,从而分离出病毒结合步骤。该方法能够在限制病毒内化的情况下,精确量化结合于细胞表面的病毒颗粒。
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2026年7月31日
来源:Klaus, J. P., et al 测量沙粒病毒细胞吸附的高灵敏度检测方法。J. Vis. Exp. (2016)。
本视频演示了如何测量沙粒病毒与猴肾细胞的结合。该检测方法利用低温阻断内吞作用,从而分离出病毒结合步骤。该方法能够在限制病毒内化的情况下,精确量化结合于细胞表面的病毒颗粒。
注意:必须严格采用预PCR技术进行本方案所述操作(有关如何建立预PCR实验室以及如何使用良好预PCR技术开展实验的全面概述)。所有试剂和设备必须不含含有qPCR靶序列的扩增DNA,并且必须设置适当的对照以检测此类污染。本方案的总体流程见图1。
1. 准备培养基并将细胞接种至48孔板
2. 进行病毒-细胞吸附
注意: 本方案中使用的病毒为JUNV Candid #1(C#1)毒株,该毒株已被成功用作预防JUNV疾病的有效减毒活疫苗。JUNV C#1毒株系通过对强毒性的JUNV XJ毒株进行连续传代培养获得 体内 和 体外 与亲本XJ毒株相比存在12个氨基酸的差异。由于JUNV C#1被归类为生物安全等级(BSL)-2级病原体,本节所述操作必须在符合相应BSL-2级规范的条件下进行,包括使用个人防护装备(例如 眼部防护、实验服、双层手套)、II级生物安全柜,并确保所有人员均已接受机构规定的培训并获得相应批准,能够安全操作该生物体。
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图1:实验流程示意图。 病毒-细胞吸附实验的主要步骤包括:1)在4 °C条件下将病毒颗粒与细胞孵育,以允许病毒与细胞发生吸附,随后通过洗涤去除未结合的病毒;2)从细胞中纯化病毒RNA;3)逆转录(RT)将JUNV S片段基因组RNA(vRNA)转化为cDNA;4)qPCR定量JUNV S vRNA拷贝数,以评估病毒-细胞吸附水平。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| DMEM | Life Technologies | 11965-118 | |
| 青霉素-链霉素 | Life Technologies | 15140-163 | 100x |
| HEPES 缓冲液 | Life Technologies | 15630-130 | 100x |
| PBS pH 7.4 | Life Technologies | 10010-023 | 1x |
| Vero E6 细胞 | 美国模式培养物集存库 | CRL-1586 | |
| Corning 48 孔板 | Corning | 3548 |