本文介绍了在小鼠颅骨上植入超薄聚酰亚胺基微电极阵列(PBM-array)以获取小鼠模型高密度脑电图(EEG)的手术步骤及操作要点。
本文介绍了在小鼠颅骨上植入超薄聚酰亚胺基微电极阵列(PBM-array)以获取小鼠模型高密度脑电图(EEG)的手术步骤及操作要点。
脑电图(EEG)反映了大规模神经元群体的平均电活动,广泛用作认知神经科学中无创脑功能监测工具,以及神经病学中癫痫和睡眠障碍的诊断工具。然而,EEG节律生成的潜在机制仍不明确。近年来引入的基于聚酰亚胺的高分辨率小鼠脑电微电极阵列(PBM-array)1,旨在利用小鼠模型丰富的遗传资源,探究复杂EEG生成过程中的神经生理学问题。将这种纳米制造的PBM-array应用于小鼠颅骨,是记录转基因小鼠大规模脑活动的有效工具,并有助于结合行为学识别特定EEG节律的神经关联。然而,PBM-array超薄的厚度和分叉结构使其在操作和植入过程中存在困难。本视频详细展示了PBM-array在小鼠颅骨上植入的准备与手术步骤,并提供了有助于研究人员成功完成植入的操作与手术技巧。
1. 摘要
C57BL/6J - 129S4/SvJae 杂交小鼠(12~15 周龄)通过腹腔注射氯胺酮(120 mg/kg)和赛拉嗪(6 mg/kg)混合物进行麻醉。手术前通过夹捏尾巴或脚趾检查麻醉深度。小鼠固定于立体定位仪(David Kopf Instruments,型号 902,Calif,USA)。在利多卡因局部处理以减轻疼痛后,沿中线切开头皮约 25 mm,暴露颅骨。使用生理盐水浸湿的棉签擦拭颅骨表面残留物,以增强电极与颅骨的贴附性。标记前囟和后囟点,并调整至同一水平面。将基于聚酰亚胺的微电极阵列(PBM-array)放置,使其垂直中线与颅骨中线对齐。前囟点应位于第 5th PBM阵列前部的电极层。在颅骨边缘的空白区域使用两到三个微型螺钉,以牙科水泥固定电极位置。为支撑PBM阵列连接器,我们在头部中线位置放置一个支撑杆,并用牙科水泥覆盖固定。待水泥固化后,缝合切口皮肤,并给予至少5天的恢复期。恢复期间,小鼠单独饲养于笼中,自由获取食物和饮水。恢复后进行脑电图(EEG)记录。动物护理、手术及记录程序均遵循韩国实验动物护理法规1992年法案及机构动物护理与使用委员会(IACUC)相关指南。本文所用PBM阵列的制备方法如Choi et al.所述。1 请联系作者以获取视频中使用的相同PBM阵列。
2. 实验步骤

3. 代表性结果
如果上述手术操作正确执行,将能够成功完成40通道小鼠脑电图记录,且无不良通道。下图显示了典型的原始脑电图轨迹及地形图。

图 2. 注射γ-丁内酯(GBL,50 mg/kg,腹腔注射)诱导失神发作期间的脑电图(EEG)示例记录。红色条形表示失神发作期间的棘-慢波放电(SWDs)。横轴和纵轴分别表示时间和电压。通道编号遵循图1(右)中定义的导联组合。

图3. 拓扑图显示了2-6 Hz频段的功率分布。色标中的数值表示功率图的颜色尺度。在γ-丁内酯(GBL,50 mg/kg,腹腔注射)诱导产生棘慢波放电(SWDs)期间,大脑广泛额顶叶皮层区域的功率显著高于GBL注射前(基线)的功率水平。
本文报道了在自由活动的小鼠中获取高密度脑电图(EEG)的手术与记录方法。该方法使我们能够从小鼠模型中获得功能性脑图谱,以研究自发节律性1,2或事件相关脑活动的分子机制。
获取PBM阵列中所有通道的信号是实现全脑图谱绘制的必要条件,然而为每个通道建立稳定接触非常具有挑战性。为了保持各通道与颅骨之间的稳定接触,以下操作步骤至关重要。首先,颅骨表面的任何组织碎屑都可能导致电极与颅骨分离,因此必须使用无菌棉签彻底清除所有组织碎屑,并将颅骨表面擦干。其次,PBM阵列依靠范德华力附着于颅骨表面,建议在放置PBM阵列前,在颅骨表面滴加一滴自来水以形成水膜,有助于增强贴附效果。第三,牙科水泥的黏稠度必须适中:若过于稀薄,可能在PBM阵列下方形成绝缘层;若过于浓稠,则牙科水泥会因自身重量而容易从颅骨上脱落。最后,应在颅骨上植入至少三个支撑用的微型螺钉,以使牙科水泥牢固地固定在颅骨上。这些微型螺钉能够支撑牙科水泥并稳固头戴装置,对于长期实验研究尤为关键。
由于PBM阵列的尺寸和重量,其应用将仅限于成年小鼠的慢性研究。根据我们的经验,体重超过25 g的小鼠适合使用。在进一步的应用中,可通过PBM阵列分支之间的空白区域引入次级电极,用于记录或刺激目的。
由KIST基金(2E21510)、教育部国家荣誉科学家计划以及韩国国家研究基金会通过教育部、科技和知识经济部资助的脑科学原创技术研究计划(2010-0018944)支持。
| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| γ丁内酯 | Sigma-Aldrich | H7629-500G |