方法文章

环境样品中有机磷的高通量测定与分类

DOI:

10.3791/2660

2011年6月8日

本文内容

摘要

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本方案描述了一种利用微孔板读数仪测量并分类土壤磷的高通量酶解法,可将土壤磷分为单酯磷、二酯磷和无机磷。在标准实验室中,可同时测定多达96个样品。

摘要

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环境样品中存在多种有机磷(P)分子1。传统的磷测定方法无法检测这些有机磷化合物,因为它们不与比色试剂发生反应2,3。酶促水解(EH)是一种新兴方法,可用于准确定性环境样品中的有机磷形态4,5。在准确性方面,该方法仅逊于磷-31核磁共振波谱法(31P-NMR),但后者成本高昂且需要专门的技术培训6。我们已将一种可测定三类磷(磷酸单酯P、磷酸二酯P和无机P)的酶促水解方法适配至微孔板读数系统7。该方法为研究人员提供了一种快速、准确、经济且操作简便的手段,可用于测定土壤、沉积物、粪肥中的磷形态,以及经浓缩后的水体样品。这是目前唯一可在常规实验室中进行的、用于测定有机磷形态及其酶可降解性的高通量方法。所得数据有助于科学家研究系统的养分含量及富营养化潜力。

方案

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1. 磷的提取

  1. 配制 1 L 的 0.25 M 氢氧化钠(NaOH,40.00 g/mol)+ 0.05 M 乙二胺四乙酸(EDTA,292.24 g/mol)溶液。
  2. 在 50 mL 锥形管中,向 2 g 湿或干的土壤/样品中加入 30 mL NaOH + EDTA 溶液。
  3. 在室温下振荡孵育 16 小时。
  4. 以 3000 ×g 离心 3 分钟。

2. 样品提取液 pH 值调节

  1. 取0.1 mL样品转移至1.5 mL微量离心管中。
  2. 加入0.017 mL的2.5 M乙酸、0.144 mL的0.4 M乙酸盐缓冲液(含70.5%乙酸钠[CH3COONa, 82.03 g/mol]和29.5%乙酸,pH 5.0)以及0.739 mL去离子水。
  3. 调节后提取液的终体积为1 mL,终pH值为5.0。

3. 酶储备液的配制

  1. 配制 1 L 0.1 M 醋酸钠(CH₃COONa)溶液3COONa,82.03 g/mol)溶液,pH 5.0。
  2. 在3.1步骤配制的醋酸钠缓冲液中,分别配制2份10 mL的酸性磷酸酶储备液,使终浓度均为0.5 Units/mL。
    I型酸性磷酸酶来自 Triticum aestivum (小麦胚芽;GP,通常为0.5 U mg-1固体,EC 3.1.3.2)
    IV-S型酸性磷酸酶 Solanum tuberosum (马铃薯;PP,通常为 4.6 U mg-1 固体,EC 3.1.3.2)
    * 活性单位由供应商规定,其中1单位定义为在37°C下每小时释放1微摩尔正磷酸盐至溶液中。
  3. 重组冻干的核酸酶 P1(EC 3.1.30.1) Penicillium citrinum (真菌;NP1,通常为 500 U/mg)-1 1 mL去离子水中溶解)——此后可于4°C保存以备后续使用。
  4. 将NP1用移液器加入步骤3.2中准备的10 mL离心管之一,使终浓度为2.5 Units/mL NP1;通过反复倒置数次轻轻混匀。
  5. 将两份10 mL酶溶液在3000 × g离心30分钟。

4. P 标准曲线与对照

  1. 配制 1 L 的 1 mM 磷酸钾(K2HPO4,174.18 g/mol)储备液。
  2. 取 1 mL 上述 1 mM 磷酸钾储备液加入 1.5 mL 离心管中,并进行七次 0.5 mL 的连续稀释。
  3. 弃去第一个试管中的溶液,得到 7 个稀释梯度,磷酸含量范围为 20 nmol 至 0.625 nmol P。
  4. 将每个试管中的溶液各取 80 μL,重复加样至标准 96 孔板的 B–H 行。
  5. 向第 11 和 12 列的 A 行各加入 80 μL 醋酸钠缓冲液(第 3.1 节),此为 0 nmol P 的校准点。
  6. 第 11 和 12 列现在包含从 0 nmol 到 20 nmol 无机磷酸盐的 8 个参考样品。
  7. 第 10 列将包含以下对照:
    1. 向第 10 列的前三个孔中各加入 40 μL PP+GP 酶溶液和 40 μL 醋酸钠缓冲液(第 3.1 节)。
    2. 向接下来的三个孔中各加入 40 μL PP+GP+NP1 酶溶液和 40 μL 醋酸钠缓冲液。
    3. 向其中一个孔加入含 10 nmol 葡萄糖-6-磷酸(C6H11Na2O9P • xH2O,304.1 g/mol)的醋酸钠溶液 40 μL 和 PP+GP 酶溶液 40 μL;向第 10 列最后一个孔中加入醋酸钠溶液代替酶溶液。

5. 样品与酶孵育

  1. 每个待测样品将占据标准96孔板中1行的前9个孔。
  2. 将第2节中pH调节后的样品提取液分别加入最多8行的1–9号孔,每孔40 μL。
  3. 所有样品加样完成后*,使用多通道移液器将PP+GP酶溶液加入1–3列,PP+GP+NP1加入4–6列,醋酸钠缓冲液(第3.1节配制)加入7–9列。
    *此步骤必须迅速完成,以确保所有样品的孵育时间一致。
  4. 用盖板密封96孔板,将样品与酶溶液、对照及标准曲线在37°C下精确孵育1小时。

6. 释放的和背景无机磷的比色法测定

  1. 用去离子水配制以下每种溶液各 50 mL:
    溶液 A*:0.1 M 抗坏血酸(C6H8O6,176.12 g/mol)+ 0.5 M 三氯乙酸(Cl3CCOOH,163.39 g/mol)
    溶液 B:0.01 M 钼酸铵((NH4)2MoO4,196.01 g/mol)
    溶液 C:0.1 M 柠檬酸钠(HOC(COONa)(CH2COONa)2 2H2O,294.10 g/mol)+ 0.2 M 亚砷酸钠(NaAsO2,129.91 g/mol)+ 5 % 冰醋酸
    (CH3CO2H,60.05 g/mol) * 溶液 A 必须每日新鲜配制。
  2. 用多通道移液器迅速向 96 孔板的所有孔中加入 25 μL SDS 溶液、100 μL 溶液 A、20 μL 溶液 B 以及 50 μL 溶液 C。
  3. 盖上板子,在室温下孵育 30 分钟。
  4. 使用任意可调的微量板读数仪在 850 nm 处测定吸光度。

7. 磷化合物的分类

  1. 将原始数据导入电子表格应用程序(例如 Microsoft Excel)。
  2. 绘制无机磷校准曲线:以 x 轴表示 0 至 40 nmol P,y 轴表示吸光度重复测定值的平均值。
  3. 进行线性回归分析,求得最佳拟合直线方程。
  4. 第 1–3 列:直接应用校准曲线——此为背景无机磷。
  5. 第 4–6 列:取样品三个重复测定值的平均值,并从总吸光度中减去对照组(酶溶液 + 背景无机磷)——此为来自可水解磷单酯的磷。
  6. 第 7–9 列:与第 4–6 列相同,但进一步减去第 4–6 列的吸光度值——此为来自可水解磷二酯的磷。
  7. 利用校准方程将吸光度数据转换为释放的 nmol P。
  8. 释放的 nmol P 可换算为原始土壤中每千克所含的 mg P。此外,分析各类磷组分所占比例也是数据分析中有用的方法。

8. 代表性结果:

在比色反应完成后,对96孔板进行快速目视检查,可初步判断实验操作是否正确。首先通过观察板子的侧面轮廓,检查每个孔中的液体体积是否一致,所有孔中的试剂体积应恰好为275 μL。接着,目视检查各样品三复孔和标准品双复孔的颜色,这些技术重复孔的颜色应为相同的蓝色色调。然后将标准曲线应用于含有葡萄糖-6-磷酸的两个孔,并确认其释放出全部10 nmol的无机磷。在使用ICP-OES或其他替代方法测定总提取磷含量后,需确保本实验方案计算所得的总磷值不超过实际提取的磷量。
注意:在电子表格中仔细管理数据有助于避免定量误差。由于需要同时处理大量数值,提前建立数据模板将大大节省时间并提高准确性。

ELISA 板检测显示蛋白质浓度结果,孔中呈现蓝色梯度,实验分析。
图 1. 96 孔板显示 8 个样品(A-H 行)的结果以及标准曲线(第 11 和 12 列)。对照位于第 10 列。第 1-3 列与第 4-6 列之间的颜色强度增加是由于水解的单酯 P 化合物所致,第 4-6 列与第 7-9 列之间的颜色强度增加是由于水解的二酯 P 化合物所致。

磷形态分布柱状图:正磷酸盐、单酯磷、二酯磷。
图 2. 利用高通量酶解法分析佛蒙特州土壤样品经 0.25 M NaOH-0.05 M EDTA 提取后各磷形态的分布。误差棒表示标准偏差,n = 3。

讨论

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由于该方法本身具有使用小体积样本快速操作的特点,因此需要格外小心。其中最关键的步骤是将溶液移液至板上的操作。准确且最重要的是保持一致的移液技术,这对于本检测的成功至关重要。

NaOH-EDTA 提取法可将许多样品中的大部分磷分为三类:正磷酸盐、单酯磷和二酯磷。含有 NaOH-EDTA 可提取性磷的土壤、粪肥、沉积物或任何其他环境样品均可采用该方法进行表征。环境样品中的磷形态不一定稳定,该技术可在样品降解前完成表征,且无需投入大量研究人员。

当需要处理大量样品时,该检测方法尤为适用。试剂用量和空间需求已缩减至可管理的水平(例如,使用1.5 mL微量离心管而非50 mL玻璃烧瓶)。这种改进还可减少废物的产生。

披露

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未声明任何利益冲突。

致谢

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感谢美国地质调查局(USGS)和佛蒙特州水资源与湖泊研究中心提供资金支持。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
NaOHSigma-AldrichS8045
EDTASigma-AldrichEDS
冰醋酸Sigma-Aldrich242853
乙酸钠Sigma-AldrichS2889
小麦酸性磷酸酶Sigma-AldrichP3627
马铃薯酸性磷酸酶Sigma-AldrichP1146
核酸酶 P1Sigma-AldrichN8630
磷酸钾Sigma-AldrichP2222
葡萄糖-6-磷酸Sigma-AldrichG7250
SDSSigma-AldrichL4390
抗坏血酸Sigma-AldrichA5960
TCASigma-AldrichT9159
钼酸铵Sigma-AldrichA1343
柠檬酸钠Sigma-AldrichS1804
砷酸钠Sigma-AldrichS9663

参考文献

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  1. Turner, B. L., Frossard, E., Baldwin, D. S. Organic phosphorus in the environment. , Cabi Publishing. Wallingford. (2005).
  2. Murphy, J., Riley, J. P. A modified single solution method for determination of phosphate in natural waters. Anal. Chim. Acta. 27, 31-36 (1962).
  3. Dick, W. A., Tabatabai, M. A. Determination of orthophosphate in aqueous solutions containing labile organic and inorganic phosphorus compounds. J. Environ. Qual. 6, 82-85 (1977).
  4. He, Z., Toor, G. S., Honeycutt, C. W., Sims, J. T. An enzymatic hydrolysis approach for characterizing labile phosphorus forms in dairy manure under mild assay conditions. Bioresour. Technol. 97, 1660-1668 (2006).
  5. He, Z., Honeycutt, C. W. A modified molybdenum blue method for orthophosphate determination suitable for investigating enzymatic hydrolysis of organic phosphates. Commun. Soil Sci. Plant Anal. 36, 1373-1383 (2005).
  6. Cade-Menun, B. J. Characterizing phosphorus in environmental and agricultural samples by 31P nuclear magnetic resonance spectroscopy. Talanta. 66, 359-371 (2005).
  7. Johnson, N. R., Hill, J. E. Phosphorus species composition of poultry manure-amended soil using high-throughput enzymatic hydrolysis. Soil Sci. Soc. Am. J. 74, 1786-1791 (2010).

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