我们演示了一种简单微流控装置的制备方法,该装置可与标准的电生理实验系统集成,以精确控制的方式将脑切片的微尺度表面暴露于不同的神经递质中。
需要JoVE订阅才能观看此内容。 请登录或开始免费试用
我们演示了一种简单微流控装置的制备方法,该装置可与标准的电生理实验系统集成,以精确控制的方式将脑切片的微尺度表面暴露于不同的神经递质中。
我们已展示了可轻松与现有电生理装置集成的双层微流控器件的制备方法。该双层微流控器件采用两步标准负性光刻胶光刻工艺制备1。第一层包含在两端设有进样口和出样口的微通道。第二层包含位于微通道长度方向中点、并与通道宽度中心对齐的微尺度圆形孔。采用被动泵送方法将液体从进样口泵送至出样口2。该微流控器件可与市售灌流室集成,从而实现与电生理系统的无缝连接。从进样口引入的液体流经微通道向出样口移动,同时通过位于微通道顶部的圆形开口进入灌流室的浴液中。因此,置于灌流室浴液中且位于微流控器件上方的脑片底面可暴露于不同的神经递质环境中。由于微流控器件本身具有微米级厚度,且所用材料(玻璃盖玻片和聚二甲基硅氧烷(PDMS))具有良好的透光性,因此可对脑片进行显微成像。该微流控器件能够对引入脑片微环境的化学刺激物进行空间和时间上的精确调控。
SU-8 模具制备
主液配制
PDMS 溶液的制备
PDMS 涂覆与固化
微流控装置的构建
从模具上移除PDMS片
PDMS 片与玻璃盖玻片的键合
微流控装置与灌注腔室的整合
灌流室的制备
微流控装置与灌注室的键合
利用微流控装置使脑切片暴露于神经化学微环境
访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。
现有的宏观或微观脑片灌注腔室在提供空间分辨率以向脑片施加神经递质方面存在局限性。本文展示的微流控装置技术利用简单的生物MEMS技术克服了这一限制。由于该微流控装置 fabrication 过程简单,并且易于与现有的电生理系统集成,预计该技术将得到广泛应用。一些此前无法开展的有趣实验,现在可借助当前的微流控装置实现。脑片的不同微环境可在不同时间尺度下暴露于不同的神经递质中。当前的原型装置仅包含四个平行通道以及相邻排列的圆形开口。然而,通过采用不同的设计,可轻松改变该装置的布局,例如采用不同形状或尺寸的开口,或将微通道设计为蜿蜒结构,从而将开口定位在脑片的不同微环境中。
访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。
作者欢迎将所展示的微流控技术应用于生物学不同领域的合作研究。
本研究由美国国立卫生研究院(NIH)MH-64611项目和NARSAD青年研究者奖资助。作者还感谢Adam Beagley、Mark Dikopf和Ben Smith在技术方面提供的支持。
访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。
| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 | |
|---|---|---|---|---|
| RC-26GPL | 工具 | Warner Instruments | W2-64-0236 | 低剖面大浴槽 RC-26GLP 记录室 |
| SHD-26GH/10 | 工具 | Warner Instruments | W2-64-0253 | 用于 RC-26G 的不锈钢切片固定装置,螺纹间距 1.0 mm |
| PDMS (聚二甲基硅氧烷) | 试剂 | Dow Corning | Sylgard 184 | 硅橡胶弹性体套件 |
| Plasma Preen-II 862 | 工具 | Plasmatic Systems, Inc. | 微波等离子体系统 | |
| Model P-1 | 工具 | Warner Instruments | W2-64-0277 | 20 系列普通平台,Model P-1 |
| SA-NIK | 工具 | Warner Instruments | W2-64-0291 | 尼康 Diaphot/TE200/TE2000 适配器,SA-NIK |
| 含氧并加热的 ACSF(人工脑脊液) | 试剂 | 确切成分根据应用而异 |
访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。