所有涉及动物模型的操作均已经过当地机构动物护理委员会和JoVE兽医审查委员会审核。
1. 使用排水法测量胚胎体积
注意:本实验方案中使用受精后24小时(hpf)的胚胎(图1)。用于体积测量的胚胎不用于乙醇分析。
- 将10个胚胎及胚外体液置于已标记250 μL体积的1.5 mL微量离心管中(图2A)。加水至250 μL刻度线(参见含染色水的样品示例 图2B).
- 重复步骤 1.1,为已去除绒毛膜的胚胎设置容器。
- 为了去除卵膜,将带有卵膜的胚胎置于含有2 mg/mL蛋白酶混合液的胚胎培养基中,于室温(RT)下在100 mm培养皿中孵育10分钟。每隔几分钟轻轻摇动胚胎,以破裂卵膜。
- 所有胚胎脱去绒毛膜后,将去绒毛膜的胚胎从蛋白酶混合液/胚胎培养基中取出,放入盛有新鲜胚胎培养基的新100 mm培养皿中清洗胚胎。重复此清洗步骤1次(共清洗2次)。将胚胎转移至另一个洁净的100 mm培养皿中。
- 使用尽可能细小的枪头,小心地用 P200 微量移液器移除胚胎周围的全部液体,避免损伤胚胎图2C)并使用天平称量水的重量 <精确至0.1 mg。为测定10个胚胎样本的体积,用250 μL减去所移除水的重量/体积(1 mL水 = 1 g水)。为测定单个胚胎的体积,将250 μL与所移除水的重量之差除以10。


2. 用乙醇处理胚胎
- 从交配缸中收集胚胎,并置于标准的100 mm培养皿中。每个培养皿中放置的胚胎数量不超过100个,并在28.5 °C条件下孵育。
注意:如果需要去除卵膜(步骤1.2),则必须在添加乙醇之前完成去除。
- 在受精后6小时(6 hpf),将最多100个胚胎转移至新的标准100 mm培养皿中,培养皿内含胚胎培养液或含1%乙醇(v/v)的胚胎培养液。盖上皿盖,但切勿密封培养皿。将胚胎置于设定为28.5 °C的低温培养箱中孵育18小时,或直至胚胎发育至24 hpf的发育阶段。
3. 胚胎处理前用于顶空气相色谱分析的准备工作流程
- 配制5 M NaCl水溶液(每个样品管需要450 μL),以使所有蛋白质变性并防止乙醇代谢。在胚胎培养基中配制蛋白酶混合液,浓度为2 mg/mL。
- 为每个样品标记一个1.5 mL微量离心管和一个2 mL气相色谱瓶。同时为下述乙醇标准品,以及空气、水、5 M NaCl/蛋白酶混合液空白样,标记额外的2 mL气相色谱瓶。
- 准备三支移液器:两支p200移液器调至50 μL,第三支调至200 μL;一支p1000移液器调至450 μL,以及一支p2移液器调至2 μL。用于将胚胎从培养皿转移至1.5 mL微量离心管的玻璃移液管,需快速将管尖通过火焰以使边缘平滑,避免吸取胚胎时造成损伤。
4. 胚胎顶空气相色谱分析的处理
注意:为保持稀释因子计算的一致性,无论胚胎是否仍处于绒毛膜内,均按相同方式处理。
- 使用两支已设定为 50 μL 的 p200 微量移液器,其中一支吸取 50 μL 蛋白酶混合液,另一支吸取 50 μL 水。
- 使用玻璃移液管和微量移液器,迅速将 10 个胚胎(来自步骤 2.2)放入一个 1.5 mL 微量离心管中,并盖紧管盖(如图 2A所示)。对所有待测样品、对照组以及乙醇处理的胚胎重复此操作。
- 使用设定为 200 μL 的 p200 微量移液器,迅速打开管盖并吸除所有残留的胚胎培养液(如图 2C所示)。迅速将装有 50 μL 水的移液器插入管中,快速但轻柔地加入水后再吸出(避免损伤胚胎)。紧接着,迅速加入另一支移液器中预装的 50 μL 蛋白酶混合液,并盖紧管盖(图 2D)。
注意:此操作应逐个样品进行。
- 将样品在室温下静置 10 分钟,使蛋白酶混合液充分降解卵膜。随后,迅速加入 450 μL 的 5 M NaCl 溶液,并盖紧管盖(图 2E)。将样品涡旋振荡 10 分钟。为加快处理速度,可设置混合仪同时振荡多个样品。
注意:对于发育超过 24 hpf 的胚胎样品管,需加入少量(约 100 μL)硅胶珠混合物(两种粒径:0.5 mm 和 1 mm)。在较老的胚胎中,无论匀浆时间多长,脊索仍会保持完整。
- 匀浆 10 分钟后,迅速取出 2 μL 匀浆后的胚胎上清液,加入气相色谱小瓶中,并立即用聚四氟乙烯盖密封小瓶。
5. 准备培养基和乙醇标准品
- 制备培养基标准品时,用5 M NaCl/蛋白酶混合液将培养基稀释10倍。取每种样品各2 μL加入气相色谱瓶中,并用聚四氟乙烯盖密封。
- 制备乙醇标准品时,将100%乙醇用5 M NaCl/蛋白酶混合液进行系列稀释,配制成以下浓度:0.3125、0.625、1.25、2.5、5、10、20和40 mM。取每种标准品各2 μL加入气相色谱瓶中,并用聚四氟乙烯盖密封。
6. 顶空气相色谱的准备
注意:顶空气相色谱法用于定量乙醇含量,而非用于分离。
- 将自动进样器加热器设置为 58 °C 并开启。待加热器温度升至 58 °C 后,打开供给气相色谱仪的空气和氢气气路(用于乙醇定量的火焰离子化检测)。
注意:应根据制造商的规格要求,将气压(psi)设置为适合色谱仪正常运行的数值。确保氦气气路已打开并调节至正确的 psi 值。
- 对于进样隔垫,确保已注入的样品数不超过 >100 次;对于进样纤维,确保已注入的样品数不超过 >500 次。
注意:若任一组件的进样次数超过上述限值,则在运行待测样品前必须予以更换。
- 启动分析软件,并确保工作站已正确配置。按照实验室/部门标准存储所有数据。为待测样品创建新的样品列表。
- 启动初始化方法,并在运行样品前等待火焰离子化检测器稳定。检测器稳定后,运行软件中的初始化方法以清洗纤维。
7. 使用顶空气相色谱法进行样品检测
- 启动方法完成后,在样品列表中为每个样品创建 1 个新行。从分析软件的方法菜单中,为样品列表上的每个样品加载 436 Current spme ethanol 2013 3min absorb 2_5min rg run.METH。
- 填写样品列表,首先输入空气、水、5 M NaCl/蛋白酶混合液空白样品,然后按顺序输入标准品,浓度从 0.3125 mM 到 40 mM。标准品之后,再次输入第二轮空气、水和 5 M NaCl/蛋白酶混合液空白样品。
- 输入所有待测的匀浆胚胎上清液样品,按预测乙醇浓度从低到高排列。最后输入第三轮也是最终一轮的空气、水和 5 M NaCl/蛋白酶混合液空白样品。
- 按照样品输入的顺序,将气相色谱小瓶加入自动进样器中。让样品预热 10–15 分钟。在软件中启动样品运行。
- 所有样品及最终空白样品运行结束后,在样品列表中添加最后一个样品并运行 standby.METH,以在软件中启动关机方法。备份样品运行期间获取的所有数据。按以下顺序关闭设备:自动进样器加热器、氢气瓶,待色谱仪温度降至 30 °C 后,再关闭空气瓶。氦气瓶保持开启,以保护石蜡柱。
8. 样品乙醇峰积分与样品浓度分析
注意: 从 8.3 开始的所有数值均在 Excel 文件中计算得出,所有方程已预先填好。
- 关闭方法完成后,点击“打开色谱图”,打开包含结果的文件夹。该程序会自动对样品进行积分。
- 在结果中,确认已对正确的峰进行了积分(乙醇峰应在 2 至 2.5 之间)。待所有样品均确认无误后,打印或导出结果。
- 将乙醇标准品的峰高绘制在图表上。计算乙醇标准品的斜率、Y 轴截距和 R2 值(R2 应 >0.99)。
注意:这些数值将用于根据样品峰高确定乙醇浓度。
- 对于每个样品,用样品的峰高减去乙醇标准品的 Y 轴截距,再将所得数值除以乙醇标准品的斜率,得到每个样品在 GC 小瓶中的乙醇值。

- 为计算胚胎中的乙醇浓度,首先计算每个样品的稀释因子。取本实验方案第 1.3 步中计算出的体积值,除以该体积值加上 500 μL。该数值代表在胚胎处理过程中(步骤 4.3 和 4.4)加入每个样品的 5 M NaCl/蛋白酶混合液的体积。

- 利用该样品稀释因子,乘以每个样品的乙醇值,所得结果单位为 mM。通过将培养基中乙醇值乘以 10 的稀释因子,计算培养基参考样品的浓度。

