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方法文章

利用核磁共振研究原子水平的蛋白质-蛋白质相互作用

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2025年7月8日

本文内容

摘要

来源:Winkelaar, G., . 利用核磁共振波谱法(NMR)和微尺度热泳法(MST)测量球状蛋白与丝状蛋白的相互作用. J. Vis. Exp. (2018).

本视频介绍了利用核磁共振波谱技术研究15N标记的野生型和突变型envoplakin蛋白与未标记的vimentin蛋白之间相互作用的方法。野生型envoplakin与vimentin成功相互作用会导致核磁共振谱图中谱线显著展宽和信号峰消失;而突变型envoplakin与vimentin之间缺乏相互作用,则在核磁共振谱图中呈现分辨良好的信号峰。

方案

1. 核磁共振方法

  1. NMR 样品制备
    1. 使用 20 mM Tris-HCl、1 mM DTT、pH 7 缓冲液纯化15N标记的野生型或 R1914E E-PRD 蛋白。蛋白储备液的浓度通常为 0.3 至 1 mM,体积约为 1 mL。
      注意:可使用截留分子量为 3 kDa、体积为 5 mL 的离心超滤装置将蛋白浓缩至>100 µM,以使浓度达到样品制备的合适范围。
    2. 使用 20 mM Tris-HCl、1 mM DTT、pH 7 缓冲液纯化一份未标记的 VimRod 蛋白样品。
    3. 在最终体积为 500 µL 的溶液中,加入野生型或突变型 E-PRD 蛋白至终浓度为 100 µM,加入重水(D2O)至终浓度为 10%(v/v),并加入 DSS(4,4-二甲基-4-硅代戊烷-1-磺酸)至终浓度为 20 µM。用 20 mM Tris-HCl、1 mM DTT、pH 7 缓冲液补足体积至 500 µL。典型的样品制备方案见表 1
      注意:DSS 在 0 ppm 处的共振峰用于校准1H 化学位移,并间接参考蛋白的15N 化学位移。D2O 用于提供氘锁信号,以保持核磁共振波谱仪在恒定的净磁场下运行。
    4. 按照上一步的方法配制第二份 E-PRD、D2O 和 DSS 样品,并在补足体积至 500 µL 前加入 VimRod 至终浓度为 50 µM。
    5. 将 500 µL 的样品转移至 5 mm 直径的 NMR 样品管中进行实验。

2. 核磁共振实验设置

  1. 打开气流,使用弹出命令“ej”将样品从磁体中升起。随后,将样品放置在磁体顶部的转子中,并通过开口插入,使用命令“ij”将其装入。在继续操作前,请等待样品在磁体内部完全稳定。
  2. 使用“edc”命令创建新数据集并加载标准 1H NMR 参数,选择实验“ZGPR”(图1)。填写“NAME”(姓名)、“EXPNO”(实验编号)和“PROCNO”(处理后数据文件夹编号)字段。在“Set solvent”(设置溶剂)字段中选择溶剂,然后点击“Execute ‘getprosol’”(执行“getprosol”)以读取标准探头及溶剂依赖性(prosol)参数。
  3. 将样品锁定至氘代溶剂 即, D2O,使用“lock”命令,等待其完成扫描并实现锁定。
  4. 使用自动调谐命令“atma”调节样品,以校正磁体的共振频率。监测进动曲线,直至自动调谐完成。
  5. 使用 TOPSHIM(命令“topshim”)对磁场进行匀场。匀场是指调整磁场以使样品周围磁场均匀的过程。若使用相同或相似样品,建议在执行 topshim 前使用“wsh”命令保存匀场值,并用“rsh”命令读取这些值。
  6. 使用“rga”命令调节接收增益,以获得最大信噪比。
  7. 将谱图中心置于水共振偏移(o1)处,并使用“calibo1p1”以高功率设置90度质子脉冲(p1)。
  8. 使用“zg”命令采集质子谱,并用“efp”进行处理,该处理包括指数乘法(“em”)、对自由感应衰减(FID)施加线宽展宽、“ft”对FID进行傅里叶变换,以及“pk”进行相位校正。
  9. 使用无积分选项的多项式进行自动相位校正“apk”和自动基线校正“absn”。
  10. 在实验中选择“SFHMQC3GPPH”以创建一个新的数据集(如1.2.2所述)。
  11. 从质子谱中复制优化后的 P1 和 O1 参数,并使用命令“getprosol 1H p1 plw1”设置 P1 相关脉冲,其中 p1 为优化后的 P1 值,plw1 为 P1 的功率水平。
  12. 优化 CNST54 常数以设置酰胺化学位移的偏移量,优化 CNST55 以定义带宽,从而覆盖感兴趣的谱图区域,以便优化接收增益(图2)。为了选择这些参数,从二维谱中提取第一个FID(自由感应衰减)信号,并根据观测到的信号来确定参数。此外,通过使用命令“gs”实时监测数据质量,调整弛豫延迟(D1)、扫描次数(NS)和预扫描次数(DS),以获得可接受的信号灵敏度。
  13. 使用 Zero Go “zg” 记录谱图。

表1. 核磁共振样品制备。

样品缓冲液 A 中的 1 mM E-PRD (µL)缓冲液 A1 中的 1 mM VimRod (µL)缓冲液 A (µL)D2O 中的 200 µM DSS (µL)缓冲液 B2 (µL)总体积 (µL)
E-PRD 单独5005050350500
E-PRD + VimRod5050050350500
1缓冲液 A:20 mM Tris-HCl,1 mM DTT,pH 7
2缓冲液 B:23 mM Tris-HCl,1.14 mM DTT,pH 7

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结果

使用溶剂 H2O+D2O 并选择参数的氢谱 NMR 实验设置界面。
图 1:NMR 实验设置界面截图。 所示窗口用于设置标准实验以采集 HSQC 数据集。实验参数在“Experiment”(实验)选项旁读取。图中显示的 ZGPR 实验被选为初始实验,用于加载标准的、溶剂依赖的氢谱参数。“Title”(标题)窗口用于输入实验细节,以便记录存档。为采集 HSQC 谱图,需将 ZGPR 实验替换为 SFHMQC3GPPH。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
氯化铵(<sup>15</sup>N,99%)Cambridge Isotope LaboratoriesNLM-467核磁共振同位素标记
D<sub>2</sub>O,重水(D,99.8%)Cambridge Isotope LaboratoriesDLM-2259核磁共振样品制备
DSS,2,2-二甲基-2-硅代戊烷-5-磺酸钠-D6(D,98%)Cambridge Isotope LaboratoriesDLM-8206核磁共振参考物质
精密5 mm核磁共振管,7&rdquo;长SJM/DeuterotubesBOROECO-5-7核磁共振管
核磁共振波谱仪(14.1 特斯拉)Bruker核磁共振数据采集
TCI 5 mm z-PFG 低温探头Bruker核磁共振数据采集
软件
Bruker TopSpin 4.0.1Bruker核磁共振数据处理

标签

15N SOFAST HMBC