1. 细胞在三维弹性蛋白样蛋白(ELP)水凝胶中的包封
- 硅胶模具的制备
- 使用所需直径的活检打孔器在厚度为0.5 mm的硅胶片上打孔,并在每个孔周围剪出方形。根据所需模具数量重复操作。
注意:模具的直径和厚度可根据具体应用和细胞培养条件进行调整。实践中,对于50 × 106 个细胞/mL的细胞培养,建议分别使用厚度为0.5 mm、直径为4 mm和5 mm的模具,以充分提取DNA/RNA和蛋白质。对于免疫染色,可使用直径为2 mm的活检打孔器,在每个方形模具上制作三个相邻的孔,以便每个孔板孔中可进行三个重复染色。
- 用镊子去除单个模具两侧的塑料薄膜。
注意:避免接触暴露的硅胶表面,以免污染降低后续等离子体键合效率。
- 使用镊子将相同数量的裸硅胶模具和玻璃盖玻片(No. 1,直径12 mm)交替排列在48孔板倒置的盖子上。完成后,盖上48孔板盖子以避免污染。
- 对整个48孔板盖子(即,模具和玻璃载片)进行氧气等离子体处理。处理后立即用镊子将硅胶模具翻转并贴附到相邻的玻璃盖玻片上。用力按压模具以确保键合牢固。让模具在室温下孵育1小时。
注意:氧气等离子体处理时间会因所用仪器不同而有所变化。本实验所用仪器的典型条件为:工作气压范围0.3–4 mbar,氧气流速20 cm3/min,样品暴露于等离子体10–20秒。
- 通过高压灭菌对模具进行灭菌。将模具在室温下保存于无菌环境中,直至使用。
注意:此阶段的模具可长期保存。
- 弹性蛋白样蛋白储备液的制备
- 从4 °C保存条件下取出冻干的ELP。在打开管盖前将蛋白升温至室温,以确保在多次使用过程中蛋白表面不会产生冷凝水。
- 在4 °C条件下,将ELP溶于Dulbecco磷酸盐缓冲液(DPBS)中,并持续搅拌(即,旋转)过夜。
注意:ELP储备液的浓度将在加入交联剂溶液后进一步稀释,稀释比例由用户自定义。例如,若最终ELP浓度为3%(w/v),则应配制3.75%(w/v)的ELP储备液,并以4:1的体积比(ELP溶液:交联剂溶液)进行稀释。根据具体应用需求调整浓度。
- 使用0.22 µm注射器滤器对ELP储备液进行无菌过滤。未使用时将ELP置于冰上保存。
- 在生物安全柜中,使用无菌镊子将灭菌后的模具转移至24孔组织培养板中。
- 四(羟甲基)磷氯化物(THPC)储备液的制备
- 在使用前立即用DPBS稀释THPC。根据最终ELP浓度和所需的交联比例调整THPC溶液的浓度。
注意:在本方案中,通过以4:1的体积比混合ELP储备液与THPC溶液,获得最终3%(w/v)的ELP浓度。可根据需要进行调整。
- 将2.6 µL THPC溶液(80%水溶液)加入997.4 µL DPBS中。
注意:该THPC浓度对应于在所述4:1体积比混合条件下,THPC上的羟甲基与ELP蛋白上的伯胺之间1:1的化学计量比,最终形成3%(w/v)的ELP水凝胶。THPC溶液黏稠,液滴可能粘附在移液枪头壁上。为确保准确浓度,在稀释至DPBS时应避免此类液滴残留。向THPC原液容器中通入氮气以防止膦基氧化及交联剂失活。
- 涡旋混合溶液,并置于冰上保存。
- 使用0.22 µm注射器滤器对THPC储备液进行无菌过滤。根据需要,用无菌DPBS进一步稀释THPC储备液,以获得较低的化学计量交联比(例如,0.5:1或0.75:1)。
注意:THPC对氧气敏感,稀释后的溶液应在配制后数小时内使用完毕。
- 使用胰蛋白酶-EDTA孵育使细胞解离为单细胞悬液,离心收集细胞,并用血细胞计数板对悬浮于培养基中的细胞进行计数。
注意:此步骤的具体方案将高度依赖于目标细胞类型和应用。在本方案中使用的神经前体细胞,采用0.025%胰蛋白酶-EDTA在室温下孵育1.5分钟,随后在200 × g下离心2分钟。为提高细胞存活率,细胞应悬浮于正常培养条件下。用于细胞包封的典型细胞密度范围为每毫升最终水凝胶体积含1–50 × 106个细胞。可根据需要进行调整。
- 将所需数量的细胞分装至无菌1.5 mL离心管中。
- 在约200 × g下离心3分钟。小心吸除上清液,并将细胞沉淀置于冰上保存。
注意:必须彻底吸除所有上清液,以避免ELP和THPC交联剂的进一步稀释。具体离心速度会因细胞类型而异。
- 将细胞沉淀重悬于ELP储备液中,使其体积占最终体积的80%(假设ELP溶液与THPC溶液的体积比为4:1)。吹打混合20–25次,使细胞与ELP均匀混合。
注意:避免用手握住管底,以防温度升高导致ELP发生相变。每个带有三个重复孔的2 mm模具需要7.5 µL的最终体积(即,6 µL ELP储备液和1.5 µL THPC储备液),平均分配至3个孔中(即,每孔2.5 µL最终体积)。对于4 mm和5 mm模具,分别需要7.5 µL和15.5 µL的最终体积。
- 向细胞/ELP悬液中加入THPC储备液,补足剩余20%的最终体积。吹打混合20–25次,确保混合均匀。
- 立即以环形方式将相应最终体积的细胞/ELP/THPC混合液加入各模具中。对所有模具重复此操作。
- 将样品在室温下孵育15分钟,随后在37 °C下继续孵育15分钟。
注意:第一次孵育有助于在升温至ELP的低临界溶解温度(LCST)以上之前完成水凝胶的初步交联,并诱导其发生热致相分离。
- 缓慢向24孔板的每个孔中加入750 µL预热的细胞培养基,注意避免破坏凝胶。
- 将水凝胶在37 °C下孵育7天。
注意:建议根据细胞类型每1–2天更换一次完全培养基。为减少对凝胶的扰动,在从孔中吸除培养基时应使用连接200 µL移液枪头的玻璃巴斯德吸管。
2. 三维ELP水凝胶中细胞的免疫细胞化学
- 通过将10 mL 16% (w/v) 多聚甲醛(PFA)与30 mL DPBS混合配制固定液,并将溶液预热至37 °C。
- 从24孔板中吸除培养基,并用1 mL DPBS轻轻洗涤。
- 向每孔加入750 µL固定液,在37 °C孵育30分钟。请勿使用组织培养箱,以避免PFA蒸气污染其他培养物。
- 小心吸除每孔中的固定液,并将PFA废液弃入适当的危险废物容器。
注意:接触PFA可能引起皮肤和眼睛刺激。操作时应佩戴手套和护目镜,并在化学通风橱中进行。
- 向每个样本加入1 mL DPBS。立即吸除DPBS,并弃入PFA废液容器中。
- 用1 mL DPBS对样本洗涤两次,每次10分钟。
注意:使用Parafilm密封后,样本可在4 °C的DPBS中保存最多一周。
- 每孔加入750 µL通透液(100 mL DPBS加0.25 mL Triton X-100;即PBST),在室温下以15 rpm振荡孵育1小时,进行通透处理。
- 吸除PBST,向每个样本加入750 µL封闭液(95 mL PBS、5 g牛血清白蛋白(BSA)、5 mL血清和0.5 mL Triton X-100)。在室温下以15 rpm振荡孵育3小时。
注意:封闭液中应包含与二抗宿主物种相同的血清(例如,山羊、驴),并在使用前经0.22 µm滤膜无菌过滤。
- 配制抗体稀释液(97 mL DPBS、2.5 g BSA、2.5 mL血清(与EPL制备所用宿主物种相同)和0.5 mL Triton X-100)。用抗体稀释液稀释一抗,每孔加入500 µL稀释液。用Parafilm密封后,在4 °C下以振荡方式过夜孵育。
注意:Nestin和Sox2一抗按厂家原始浓度以1:400比例稀释于抗体稀释液中。
- 从每个样本中吸除抗体溶液,并在室温下以15 rpm振荡用PBST洗涤60分钟。重复该洗涤步骤3次。
- 用抗体稀释液稀释二抗及5 mg/mL储备液DAPI(1:2,000),每孔加入500 µL稀释液。用铝箔包裹24孔板,在4 °C下以振荡方式过夜孵育。
注意:由于二抗对光敏感,后续所有步骤均需避光以防止荧光淬灭。山羊抗小鼠和山羊抗兔二抗按厂家原始浓度以1:500比例稀释于抗体稀释液中。
- 从每个样本中吸除抗体溶液,并在室温下以15 rpm振荡用PBST洗涤30分钟。重复该洗涤步骤3次。
- 在载玻片表面滴加一滴硬封片剂。用镊子夹住模具边缘,在纸巾上轻轻吸去多余液体。小心将模具倒置贴附于封片剂上,避免产生气泡。
- 在室温下静置48小时使封片剂完全固化。样本可储存于室温或4 °C。成像前应确保封片剂充分固化(至少48小时),因为封片剂的折射率在固化过程中会发生变化。用透明指甲油将样本与盖玻片边缘密封,以防污染或样本移位。
- 使用共聚焦显微镜对样本进行成像。