来源:Baker, G. J., 等., Lowenstein, P. R. 胶质瘤浸润性外周血单个核细胞的分离与流式细胞术分析。J. Vis. Exp. (2015)
该视频展示了利用机械解离和酶消化法从小鼠脑组织中分离肿瘤浸润性外周血单个核细胞的过程。随后通过密度梯度离心收集免疫细胞,以用于后续分析。
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2025年7月8日
来源:Baker, G. J., 等., Lowenstein, P. R. 胶质瘤浸润性外周血单个核细胞的分离与流式细胞术分析。J. Vis. Exp. (2015)
该视频展示了利用机械解离和酶消化法从小鼠脑组织中分离肿瘤浸润性外周血单个核细胞的过程。随后通过密度梯度离心收集免疫细胞,以用于后续分析。
所有涉及样本采集的操作均按照本机构的IRB指南进行。
在无菌塑料容器中,将90 ml的10倍浓度PBS加入264 ml超纯去离子水(3.93倍稀释)中,配制密度梯度离心介质混合液。用HCl调节pH至7.0–7.2,经0.22 µm滤膜过滤除菌。4 °C保存。
在50 ml聚丙烯离心管中,将18 ml密度梯度离心介质混合液与30 ml密度梯度离心介质混合,配制70%密度的离心介质(具体试剂详见材料列表)。4 °C保存,使用前恢复至室温。
在50 ml离心管中,将9.6 ml DPBS与10.4 ml 70%密度的离心介质混合,配制37%密度的离心介质。4 °C保存,使用前恢复至室温。
1. 胶质瘤浸润性外周血单个核细胞的分离
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图1:胶质瘤浸润性PBMC的分离。 (A) 分离含有早期原位胶质瘤移植灶的小鼠脑组织的策略。上方图示为将同侧半球从对侧半球分离的矢状面切开操作。下方图示为为分离包含肿瘤移植灶的目标组织(以紫色高亮显示)所需的另外两个冠状切面。(B) 经酶消化、通过70 μm尼龙滤网过滤并离心后获得的单细胞脑组织沉淀(白色箭头所示)。(C) 离心前正确制备的密度梯度离心介质。白色箭头指示两种密度离心介质层之间形成的清晰界面。(D) 离心后密度梯度离心介质的分层情况,显示在37%密度离心介质层顶部形成的脂质层(白色箭头)以及位于两.......
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 伊格尔培养基的杜尔贝科改良版 | Gibco | 12430-054 | 含 4.5 g/L D-葡萄糖、L-谷氨酰胺、25 mM HEPES 和酚红 |
| 杜尔贝科磷酸盐缓冲液 | Gibco | 14190-144 | 不含氯化钙或氯化镁 |
| 胎牛血清 | Omega Scientific Inc. | FB-11 | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | 15140-122 | 10,000 U/ml 青霉素;10,000 μg/ml 链霉素 |
| 0.6 ml 锥形聚丙烯微量离心管 | Genesee Scientific | 22-272 | |
| 聚氨酯冰桶 | Fisherbrand | 02-591-45 | 容量:0.152 oz. (4.5 L) |
| 胶原酶(I-S 型) | Sigma Aldrich | C1639 | 来源于 Clostridium histolyticum |
| 脱氧核糖核酸酶 I | Worthington Biochemical Corp. | LS002007 | >2,000 Kunitz 单位/毫克干重 |
| 大型解剖剪 | Ted Pella Inc. | 1316 | |
| 小型解剖剪 | FST | 14094-11 | |
| 钝头镊子 | Ted Pella Inc. | 13250 | |
| 7 ml 玻璃 Dounce 组织研磨器 | Kontes | KT885300-0007 | |
| Percoll 密度梯度离心介质 | GE Healthcare | GE17-0891-01 | |
| 10 ml 血清移液管 | Genesee Scientific | 12-104 | 一次性使用;无菌 |
| 70 μm 无菌尼龙网细胞滤筛 | Fisherbrand | 22363548 | |
| 15 ml 聚丙烯离心管 | Genesee Scientific | 21-103 | 锥底 |
| 50 ml 聚丙烯离心管 | Genesee Scientific | 21-108 | 锥底 |
| 12×75 mm 圆底聚丙烯 FACS 管 | Fisherbrand | 14-956-1B |