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方法文章

视网膜神经节神经元与嗅鞘胶质细胞的共培养

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2025年7月8日

本文内容

摘要

来源:Portela-Lomba, M., 等. 轴突切断的大鼠视网膜神经节细胞与嗅鞘施万细胞共培养,作为一种 体外 成年轴突再生模型 视频实验杂志 (2020)

本视频演示了从大鼠视网膜中分离视网膜神经节细胞(RGNs)并将其与嗅鞘施万细胞(OEG)共培养的实验步骤。该方法可用于研究神经损伤后OEG细胞的神经再生潜力。

方案

所有涉及动物模型的实验程序均已通过当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会的审核。

1. 检测用ihOEG(Ts12和Ts14)的制备

注意: 此步骤必须在 RGN 切取和共培养前 24 小时完成。

  1. 处理 12 mm Ø 带有10的盖玻片 µg/mL 多聚-L-赖氨酸(PLL)孵育 1 小时。
    注意: 盖玻片可在PLL溶液中放置过夜。
  2. 用1×磷酸盐缓冲液(PBS)洗涤盖玻片三次。
  3. 从 p60 细胞培养皿上分离 Ts12 和 Ts14 ihOEG 细胞。
    1. 向15 mL锥形管中加入4 mL DMEM/F12(基础培养基)-FBS(胎牛血清)培养液,在37 °在洁净的水浴中,温度为 C。
    2. 从培养板中移除培养基,用1 mL 1× PBS(磷酸盐缓冲盐水)-EDTA(乙二胺四乙酸)洗涤细胞一次。
    3. 向OEG细胞中加入1 mL胰蛋白酶-EDTA,于37℃孵育3–5分钟 °C,5% CO2.
    4. 用 p1000 移液器收集细胞,并转移至步骤 2.1 中准备的培养基中。
    5. 200 × g 离心 5 分钟 g.
    6. 吸除上清液。
    7. 加入1 mL ME10培养基,重悬沉淀。
    8. 使用血细胞计数板对细胞数量进行计数。
  4. 在24孔板中,每孔加入500 µL培养基,接种80,000个Ts14细胞或100,000个Ts12细胞至盖玻片上 µME10 培养基 L
  5. 在37℃下培养细胞 °C,5% CO₂2 24小时。

2. 视网膜组织解剖

注意:使用2月龄雄性Wistar大鼠作为RGN来源。每只大鼠的两个视网膜用于24孔细胞培养板中的20个孔。手术器械使用前需高压灭菌。木瓜蛋白酶解离试剂盒为商业购买(材料表)。请按照供应商提供的说明进行试剂重悬。将D, L-2-氨基-5-磷酸戊酸(APV)重悬为5 mM的储存液,并分装成小份。

  1. 在实验当天,配制以下培养基。
    1. 在 p60 细胞培养皿中加入 5 mL 冷的 EBSS(Earle's 平衡盐溶液)( papain 解离试剂盒中的第 1 管)。
    2. 在另一个 p60 细胞培养皿中加入重组后的 papain 解离试剂盒第 2 管(papain)以及 50 µL APV,然后加入 250 µL 重组后的第 3 管(DNase 加 5 µL APV)。
    3. 在无菌离心管中,将 2.7 mL 第 1 管溶液与 300 µL 第 4 管溶液(卵白蛋白-卵黏蛋白蛋白酶抑制剂)混合,再加入 150 µL 第 3 管溶液(DNase)和 30 µL APV。
    4. 配制 20 mL Neurobasal-B27 培养基(NB-B27)。
  2. 用 CO2 窒息法处死一只大鼠。
  3. 使用剪刀断头取下大鼠头部,将其放入 100 mm 培养皿中,并用 70% 乙醇喷洒头部,随后置于超净工作台内。
  4. 用剪刀剪除大鼠的胡须,以免干扰眼部操作。
  5. 用镊子夹住视神经,将眼球轻轻拉出,以便使用手术刀在眼球上做切口。
  6. 取出晶状体和玻璃体,并将视网膜(呈橙色组织)完整剥离,其余眼组织层(包括色素上皮层)保留在原位。
  7. 将视网膜放入步骤 2.1.1 中准备好的 p60 细胞培养皿中。
  8. 将视网膜转移至步骤 2.1.2 中准备好的 p60 细胞培养皿中,用手术刀将其切成大小约 < 1 mm 的小块。
  9. 转移至 15 mL 塑料离心管中。
  10. 将组织在 37 °C、5% CO2 的湿润培养箱中孵育 30 分钟,每 10 分钟轻轻振荡一次。
  11. 使用玻璃巴斯德吸管反复吹打,使细胞团块解离。
  12. 将细胞悬液在 200 x g 条件下离心 5 分钟。
  13. 弃去上清液。为灭活 papain,将细胞沉淀重悬于步骤 2.1.3 配制的溶液中(每 2 只眼使用 1.5 mL)。
  14. 小心地将该细胞悬液加入含 5 mL 重组第 4 管溶液的容器中。
  15. 在 200 x g 条件下离心 5 分钟。
  16. 离心期间,彻底移除 OEG 24 孔细胞培养板(此前已在步骤 1 中准备)中的 ME-10 培养基,并向每孔加入 500 µL NB-B27 培养基。
  17. 弃去上清液,将细胞重悬于 2 mL NB-B27 培养基中。
  18. 将 100 µL 视网膜细胞悬液接种至 m24 孔板的每一孔中,接种于 PLL 处理的或 OEG 单层覆盖的盖玻片上。
  19. 在 NB-B27 培养基中,于 37 °C、5% CO2 条件下维持培养 96 小时。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
B-27 补充剂Gibco17504044
D,L-2-氨基-5-磷酰戊酸Sigma283967NMDA 受体抑制剂
DMEM-F12Gibco11320033细胞培养基
FBSGibco11573397胎牛血清
FBS-HycloneFisher Scientific16291082胎牛血清
L-谷氨酰胺LonzaBE17-605F
Neurobasal 培养基Gibco21103049神经元细胞培养基
木瓜蛋白酶解离系统Worthington Biochemical CorporationLK003150用于神经细胞分离
PBS自制
PBS-EDTALonzaH3BE02-017F
青霉素/链霉素/两性霉素 BLonza17-745E抑菌和杀菌剂
垂体提取物Gibco13028014牛垂体提取物
多聚-L-赖氨酸 (PLL)SigmaA-003-M

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