人诱导性多能干细胞(hiPSC)系 HPS1006 由日本文部科学省/日本医疗研究开发机构(MEXT/AMED)国家生物资源项目下属的理化学研究所生物资源中心(RIKEN BRC)提供。
1. 诱导人诱导多能干细胞分化为内皮祖细胞(EPCs)
- 细胞外基质(ECM)包被板和试剂
- 通过将2.5 mg基底膜基质凝胶分装至50 mL离心管中,于-20 °C保存不超过6个月,制备基底膜基质包被的12孔板。向管中加入30 mL已冷藏(4 °C)的冷Dulbecco改良Eagle培养基/营养混合物F-12(DMEM/F12),用移液器轻轻吹打混匀,直至凝胶完全解冻。然后将500 µL溶液加入12孔板的每个孔中。将板置于培养箱(37 °C,5% CO2)中孵育至少1小时。
注意: 基底膜基质凝胶对温度敏感,应按照制造商说明进行分装和包被操作。不同批次间细胞外基质蛋白浓度可能存在差异。为确保准确性,应根据具体批次的批号查阅质量证书,确定确切浓度。例如,若确切浓度为10.0 mg/mL,则使用250 µL凝胶以获得总量2.5 mg。
- 通过将ROCK抑制剂溶于无菌水中,配制成10 mM的rho-激酶(ROCK)抑制剂储备液(表1)。将储备液分装为100–200 µL/管,于-20 °C保存,避免反复冻融。
- 将5 g L-抗坏血酸溶于50 mL无菌水中,配制成100 mg/mL的L-抗坏血酸储备液,并于-20 °C保存(表1)。向500 mL高级DMEM/F12培养基中加入6.25 mL谷氨酰胺和305 µL L-抗坏血酸储备液,制备LaSR培养基(表1)。于2–8 °C保存不超过2周。
- 将CHIR99021溶于未稀释的二甲基亚砜(DMSO)中,配制成终浓度为10 mM的CHIR99021溶液(表1)。将溶液分装为100–200 µL/管,避免反复冻融,于-20 °C保存不超过1年。工作分装液可于4 °C保存不超过1个月。
- 向450 mL DMEM/F12培养基中加入50 mL热灭活胎牛血清,配制DMEM/F12-10培养基。于2–8 °C保存不超过1个月(表1)。
- 向467 mL Dulbecco磷酸盐缓冲液(PBS)中加入33.3 mL 7.5%牛血清白蛋白(BSA),配制流式缓冲液-1(表1)。于2–8 °C保存不超过6个月。
- 单细胞化hiPSC的接种及EPC分化前扩增(第-3天至第-1天)
- 当6孔板中的hiPSC集落未出现自发分化且达到适宜传代密度(通常约为80%汇合度,即2.5–3.5 × 106个细胞)时,开始分化。在显微镜下仔细观察自发分化的细胞,以判断是否需要多次传代以清除未分化细胞。有关细胞培养基和细胞外基质的信息,请参见步骤1.4.15下方的注释。
- 吸除培养基,向各孔中加入1 mL消化试剂,于37 °C孵育5–7分钟。用移液器轻轻吹打孔底表面2–3次,使细胞解离并单细胞化。
- 将解离的细胞转移至含4 mL hiPSC维持培养基的15 mL离心管中,充分重悬。保留10 µL用于细胞计数。
- 于20–25 °C、200 × g离心5分钟使细胞成团。计数细胞,并计算在基底膜基质包被的12孔板(步骤1.1.1)中达到适宜hiPSC密度(每孔75–400 × 103个细胞)所需的体积。
- 吸除包被液,向每孔中加入含10 µM ROCK抑制剂的1 mL hiPSC培养基(1:1,000稀释)。离心后,吸除上清液,用1 mL hiPSC培养基重悬细胞沉淀。
- 根据步骤1.2.4确定的体积,将所需量的hiPSC加入12孔板的各孔中。分化一个hiPSC克隆可能需要2–4块12孔板。请参考步骤1.2.4以确定接种所需的板数。
- 将板置于培养箱(37 °C,5% CO2)中。在培养箱内轻轻前后、左右滑动板,使细胞均匀分布。
- 次日(即第-2天),更换为不含ROCK抑制剂的2 mL hiPSC维持培养基。下一日(第-1天),更换为2 mL新鲜hiPSC维持培养基。
- 使用糖原合成酶激酶3(GSK-3)抑制剂CHIR99021诱导EPC(第0天至第5天)
- 第0天,将各孔中的hiPSC维持培养基更换为含8 µM CHIR99021的2 mL LaSR培养基。
- 第1天,吸除培养基,加入含8 µM CHIR99021的新鲜LaSR培养基2 mL。
- 第2、3、4天,更换为不含CHIR99021的新鲜LaSR培养基2 mL。
- 磁珠激活细胞分选(MACS)纯化CD31+ EPC(第5天)
- 第5天,吸除培养基,向每孔中加入1 mL消化试剂,于37 °C孵育6–8分钟。
- 用移液器将细胞解离并单细胞化,通过40 µm细胞滤器过滤,收集至含10 mL DMEM/F12-10培养基的50 mL离心管中。来自两个以上12孔板的细胞悬液应分装至至少两个50 mL离心管中。
- 通过加入DMEM/F12-10培养基(总量至50 mL)终止消化反应。充分吹打混匀,保留10 µL用于细胞计数。于20–25 °C、200 × g离心5分钟使细胞成团。
- 吸除上清液后,加入10 mL DMEM/F12-10培养基,将细胞悬液转移至新的15 mL离心管中。于20–25 °C、200 × g离心5分钟使细胞成团。
- 吸除上清液,用流式缓冲液-1重悬细胞,密度为每100 µL缓冲液含1.0 × 107个细胞。
- 按1:100比例加入Fc受体(FcR)阻断试剂,孵育5分钟后,加入稀释1:200的异硫氰酸荧光素(FITC)标记CD31抗体。于20–25 °C避光孵育30分钟。
- 加入10 mL流式缓冲液-1,保留10 µL悬液用于流式细胞术分析,以确定CD31+细胞比例(图1)。
- 于20–25 °C、200 × g离心5分钟使细胞成团。吸除上清液,用流式缓冲液-1重悬至密度为每100 µL溶液含1.0 × 107个细胞。按每100 µL细胞悬液加入5 µL FITC分选试剂盒。充分吹打混匀,于20–25 °C避光孵育15分钟。
- 按每100 µL细胞悬液加入5 µL磁性纳米颗粒,充分吹打混匀,于20–25 °C避光孵育10分钟。
- 将细胞悬液转移至5 mL流式管中,加入流式缓冲液-1至总体积2.5 mL。将流式管置于磁铁上5分钟。
- 连续操作,将磁铁和流式管倒置,倾倒出未被FITC-CD31抗体标记的细胞悬液。保持倒置状态2–3秒,再移除残留液体。在将管恢复直立前,吸除管口边缘的液滴。
- 从磁铁上取下流式管,加入2.5 mL流式缓冲液-1,洗涤残留的CD31+细胞。轻轻吹打2–3次使细胞重悬。将流式管放回磁铁上5分钟。
- 重复步骤1.4.11–1.4.12三次,再重复步骤1.4.11一次,共洗涤四次。
- 从磁铁上取下流式管,加入适量适宜培养基(如用于长期内皮细胞培养的人内皮细胞无血清培养基[hECSR],或用于冻存的冻存液),重悬纯化的CD31+细胞。保留两份10 µL悬液,一份用于细胞计数,另一份用于流式细胞术分析,以评估MACS后样本中CD31+细胞的纯度(图1)。若无法立即进行流式分析,可将样品于4 °C保存至分析前。
- 此时可将CD31+ EPC冻存。
注意: 可使用vitronectin包被的12孔板和更稳定的hiPSC维持培养基(mTeSR plus)替代基底膜基质包被板和hiPSC维持培养基(mTeSR1)。制备vitronectin包被的12孔板时,用稀释缓冲液将vitronectin稀释至终浓度10 µg/mL,取500 µL稀释液加入12孔板各孔中,于20–25 °C放置至少1小时。单细胞化hiPSC的接种密度与基底膜基质包被板相当。更换培养基或基质成分可能影响hiPSC的增殖和自发分化,通常需要1–2周适应新培养条件。若使用更稳定的hiPSC维持培养基进行hiPSC维持培养,则该培养基也可用于EPC分化,替代原hiPSC维持培养基。此时,应在第-2天更换该更稳定的hiPSC维持培养基以去除ROCK抑制剂,第-1天的换液步骤可省略。