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分析培养的果蝇脑外植体中神经干细胞的再激活

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2025年7月8日

本文内容

摘要

来源:Naomi Keliinui, C.,培养的果蝇脑外植体中神经干细胞的再激活视觉化实验杂志(2022年)。

本视频演示了一种鉴定外源因子启动果蝇(Drosophila)脑神经干细胞从静息状态重新活化的实验方案。通过解剖刚孵化的幼虫以分离其大脑组织,随后将脑组织置于含有或不含待测激素的培养基中进行培养,以评估该激素是否具有诱导神经干细胞重新活化和增殖的潜力。

方案

1. 培养基和工具的准备

  1. 用70%乙醇喷洒实验台和工作区域,并静置晾干。
  2. 用70%乙醇喷洒解剖工具、镊子以及两个玻璃培养皿,并将其放置在实验台上晾干。
  3. 配制添加物的Schneider培养基(SSM,表1),并置于冰上。
  4. 用移液器将1 mL SSM加入每个玻璃培养皿中。
  5. 使用带无菌吸头的微量移液器,将新孵化的幼虫从PBS培养皿转移至第一个玻璃培养皿中的SSM中;再使用带无菌吸头的微量移液器,将新孵化的幼虫转移至第二个玻璃培养皿中的SSM中。

2. 解剖与脑组织培养

  1. 当幼虫转移至第二个含有SSM的玻璃培养皿后,使用镊子和解剖显微镜将脑组织从幼虫体内解剖出来。根据需要调整放大倍数。
  2. 用一把镊子夹住口钩,另一把镊子轻轻夹住幼虫身体中段,向相反方向拉动(图1),使幼虫断裂为两部分。
    注意:脑组织位于口钩正后方。注意脑周围可能附着其他组织。去除这些组织时需格外小心,以免损伤脑组织。
  3. 解剖获得15–20个脑组织后,向无菌12孔细胞培养板的一个孔中加入1 mL SSM。使用移液器和无菌吸头将新鲜解剖的脑组织转移至SSM中(图2A)。
  4. 将含有脑组织的12孔培养板置于25 °C培养箱中孵育24小时(图2A)。

表1:配制补充型Schneider培养基(SSM)的配方。该表格列出了配制5 mL SSM所需各成分的体积。

成分(起始浓度)配制 5 mL终浓度
Schneider's Drosophila 培养基3.89 mL
胎牛血清(100%)500 µL<10%
谷氨酰胺(200 mM)500 µL20 mM
青霉素(5000 单位/mL),链霉素(50,000 µg/mL)100 µL1000 U/mL 青霉素,1 mg/mL 链霉素
胰岛素(10 mg/mL)10 µL0.02 mg/mL
谷胱甘肽(50 mg/mL)5 µL0.05 mg/mL
在超净工作台中,采用无菌操作技术,将所有成分加入一个 14 mL 的锥形管中。配制后置于冰上,待用。

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结果

幼虫解剖示意图,突出显示口钩和脑部,用于解剖学研究。
图1:置于玻璃培养皿中的含SSM的黑腹果蝇(Drosophila)幼虫。镊子已正确放置以进行解剖。幼虫脑部(深灰色)位于口钩(黑色)后方,图中显示二者均位于幼虫体内。

脑组织制备与孵育示意图;多孔板、移液器、孵育24小时。
图2: 脑组织培养与免疫染色。(A)...

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
10 µL 移液器吸头Denville SciP2102
1000 µL 移液器吸头Denville SciP2103-N
1000 µL 移液器GilsonP1000
24 孔多孔培养板Fisher Scientific50-197-4477
35 mm 培养皿Fisher Scientific08-757-100A葡萄培养板成分
解剖显微镜ZeissStemi 2000
乙醇 200 证明(100%),Decon Labs,1 加仑瓶Fisher Scientific2701用于在将幼虫转入培养基前清洗幼虫
胎牛血清(10%)SigmaF4135-100ML细胞培养基的补充剂。
解剖用精细镊子Fine Science Tools11295-20用于解剖的镊子,锋利时使用效果最佳。
玻璃解剖皿(3 孔)已不再供应
谷胱甘肽SigmaG6013在细胞培养过程中提供氧化保护。
培养箱Thermo Fisher Scientific确保实验过程中温度、湿度和光照条件完全一致。
胰岛素SigmaI0516实验的独立变量
层流罩用于分装培养基
L-谷氨酰胺SigmaG7513在细胞培养过程中提供支持
青霉素-链霉素(Pen-Strep)SigmaP4458-100ml用于防止细胞培养过程中细菌污染的抗生素。
磷酸盐缓冲液,pH 7.4实验室自制实验室自制用于固定和染色步骤后清洗脑组织
挑取针Fine Science Tools10140-01用于从葡萄培养板上挑取幼虫
Schneider 培养基Life Tech21720024含有促进细胞生长和增殖的营养成分
无菌水实验室自制高压灭菌 Milli-Q 水配制溶液所需

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