所有涉及动物模型的操作均已被当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会审核。
1. 溶液配制
- NGM-琼脂平板(1 L)
- 加入 3 g NaCl、2.5 g 胰蛋白胨培养基(例如 Bacto-Peptone)和 20 g 琼脂。高压灭菌后,加入 1 mL 胆固醇(5 mg/mL 溶于 95% 乙醇 [EtOH] 的储备液)、1 mL 1 M MgSO4、1 mL 1 M CaCl2、25 mL 1 M K2PO4 和 1 mL 两性霉素 B(2.5 mg/mL 储备液)。
- NGM-琼脂 RNAi 平板(1 L)
- 加入 3 g NaCl、2.5 g 胰蛋白胨培养基和 20 g 琼脂。高压灭菌后,加入 1 mL 胆固醇(5 mg/mL 溶于 95% EtOH 的储备液)、1 mL 1 M MgSO4、1 mL 1 M CaCl2、25 mL 1 M K2PO4、1 mL 两性霉素 B(2.5 mg/mL 储备液)、1 mL 1 M 异丙基-β-D-硫代半乳糖苷(IPTG)和 1 mL 羧苄青霉素(50 mg/mL)。
- LB(Luria-Bertani)-琼脂(1 L)
- 加入 10 g 胰蛋白胨培养基、5 g 酵母提取物、5 g NaCl、20 g 琼脂和 10 mL 1 M Tris(pH 8.0)。加 H2O 至 1 L。高压灭菌后,加入 1 mL 50 mg/mL 羧苄青霉素和 2.5 mL 5 mg/mL 四环素。
- LB 培养基(1 L)
- 加入 10 g 胰蛋白胨培养基、5 g 酵母提取物、5 g NaCl 和 10 mL 1 M Tris(pH 8.0)。加 H2O 至 1 L。高压灭菌后,加入 1 mL 50 mg/mL 羧苄青霉素。
- M9 缓冲液(1 L)
- 加入 6.0 g Na2HPO4、3 g K2PO4、5 g NaCl 和 50 mg 明胶。使用前加入 1 mL 1 M MgSO4。
- 漂白液(10 mL)
- 加入 1 mL NaClO 和 2 mL 5 N NaOH。加 H2O 至 10 mL。
2. RNAi 平板的制备
注意:C. elegans 通常在含有 7.5 mL 线虫生长培养基琼脂(NGM-琼脂)的 6 cm 培养皿中于实验室培养。本实验方案适用于在 15 °C 条件下培养的线虫。制备 NGM 培养皿时,应采用标准无菌操作技术,以防止真菌和细菌污染。以下是制备添加了 RNAi 试剂的 NGM 培养皿的实验步骤。
- 准备含有 1 mM IPTG 和 50 µg/mL 羧苄青霉素的 6 cm NGM-琼脂 RNAi 平板。在室温避光条件下干燥 24 – 48 小时。
- 将 RNAi 平板置于 4 °C 避光保存。若超过 14 天则不得使用。
- 从现有的 RNAi 文库¹³ 中,使用三区划线法,在含有 50 µg/mL 羧苄青霉素和 12.5 µg/mL 四环素的 LB-琼脂平板上,挑选含有插入 lin-53 基因 DNA 序列的 L4440 质粒的 RNAi 细菌克隆(Escherichia coli HT115)。于 37 °C 过夜培养。该克隆可在 IPTG 诱导下在细菌中表达 lin-53 双链 RNA(dsRNA)。
- 同时,培养含有无插入基因序列的 L4440 空载体质粒的 RNAi 细菌作为阴性对照。
- 次日,使用 200 µL 移液器吸头从 lin-53 或空载体的 LB-琼脂平板上挑取单菌落,分别接种至含有 2 mL 添加 50 µg/mL 羧苄青霉素的液体 LB 培养基的独立培养管中。于 37 °C 过夜培养,直至菌液在 600 nm 处的光密度(OD)达到 0.6 – 0.8。使用分光光度计测定 OD 值。
注意:与从甘油保存菌种划线所用的 LB-琼脂平板不同,液体 LB 培养基中不应添加四环素,因为在喂养阶段加入四环素会降低 RNAi 效率。
- 使用多通道移液器将每种细菌培养物(lin-53 或空载体)各取 500 µL 加入 6 cm NGM-琼脂 RNAi 平板中。平板加盖后于室温避光孵育过夜,使其干燥。在此期间,NGM 平板中的 IPTG 将诱导细菌产生 dsRNA。
- 每次实验每种细菌培养物至少使用 3 个平板,以提供 3 个技术重复。
- 将接种细菌并干燥后的 NGM-琼脂 RNAi 平板置于 4 °C 避光保存,最多可保存两周。
3. 准备 秀丽隐杆线虫 菌株 BAT28
- 维持含有转基因的线虫品系 BAT288 otIs305 [hsp-16.2启动子::che-1, rol-6(su1006)] 和 ntIs1 [gcy-5prom::gfp在15 °C条件下,使用标准NGM琼脂平板培养OP50细菌。
注意: 有关线虫培养的详细方案,请参见。 rol-6(su1006) 是一种显性等位基因,常作为表型注射标记物16,可导致典型的翻滚运动。该基因被用于 otIs305 转基因追踪 hsp-16.2启动子::che-1.
- 始终将 BAT28 菌株保存在 15 °C,以防止其过早活化 hsp-16.2启动子::che-1 转基因。在操作该品系时,应尽可能减少暴露于高于15 °C的温度环境。
- 为实现线虫的年龄同步,采用氯解技术。
- 用 900 µL M9 缓冲液冲洗含有 BAT28 成虫和卵的 6 cm NGM 琼脂平板。以 900 x g 1 分钟。去除上清液。
- 加入 0.5–1 mL 漂白液,振荡试管约 1 分钟,直至成虫线虫开始破裂。使用标准体视显微镜进行观察。
- 以900 x g离心沉淀线虫 g 离心1分钟,弃去上清液。
- 用800 µL M9缓冲液重悬虫体沉淀,900 x g离心,重复洗涤3次 g.
- 将清洗后的卵放置于接种了OP50细菌的新鲜NGM平板上。在15 °C条件下,将经过漂白处理的线虫种群在OP50细菌上培养至L4期(约4天)。使用标准体视显微镜,可通过观察线虫腹侧约中点处的白色斑块来识别L4期幼虫18。
注意: 在耗尽条件下实现生殖细胞向神经元转化的表型 lin-53,需要在亲代(P0)中将其耗尽。表型转换的评分在下一代(子代F1)中进行。为实现耗尽 lin-53 在P0代,L4期动物即接受RNAi处理。
- 手动使用铂金丝将50条L4期线虫转移至不含任何细菌的NGM平板上,每组重复操作一次,使线虫远离任何被转移的OP50细菌。让线虫在平板上移动约5分钟。使用先前接种于NGM-琼脂RNAi平板上的细菌 lin-53 将RNAi细菌(或空载体对照)转移至相应的RNAi平板。
- 避免将OP50菌株转移至实际的RNAi平板上。操作需迅速,以尽量减少菌株暴露于高于15 °C温度环境的时间。
- 在15 °C下将线虫孵育于NGM-琼脂RNAi平板上约7天,直至线虫的F1代子代发育至L3–L4阶段。此时F1代个体可明显与P0代成虫区分开,因其体型更大、更粗壮。
- 在体视显微镜下目视检查F1代子代线虫是否表现出外突的阴门(pvul)表型,如图所示 图1. 针对的RNAi lin-53 具有多效性作用并导致 pvul 表型,可用于评估针对RNAi的干预效果 lin-53 已取得成功。
注意: RNAi 靶向 lin-53 也可能导致F1代胚胎死亡。若在动物发育至L3–L4阶段前将培养板暴露于高于15 °C的环境中,该效应会增强。死亡胚胎表现为发育停滞且无法孵化。
- 在避光条件下孵育平板,因为IPTG对光敏感。
4. 诱导生殖细胞重编程
- 将含有经 lin-53 和空载体 RNAi 处理的 F1 后代的 RNAi 培养板在避光条件下于 37 °C 孵育 30 分钟,以激活 CHE-1。使用带通风功能的培养箱,因其可实现更高效的热激。
- 将热激后的线虫在室温避光条件下恢复 30 分钟,随后将培养板在 25 °C 避光过夜孵育。
- 使用配备荧光光源的常规体视显微镜,在绿色荧光蛋白(GFP)滤光片下观察线虫中体区域由 gcy-5prom::gfp 驱动的荧光信号,如图 2所示。显微镜 GFP 信号设置:激发光最大波长为 488 nm,发射光最大波长为 509 nm。
- 通过将中体区域具有 GFP 信号的线虫置于含琼脂垫的显微载玻片上,评估生殖细胞向神经元转化的程度。
- 统计显示生殖细胞向神经元转化的个体数量与无荧光信号个体数量,以评估表型外显率。通常,在 lin-53 缺失条件下约有 30% 的个体在生殖系中表现出明确的 GFP 信号,而在空载体 RNAi 条件下,仅有不超过 5% 的个体在生殖系中表现出弥散性 GFP 信号。