本文描述了一种针对小鼠前 compartment 肌肉的神经肌肉电刺激(NMES)的啮齿类动物模型,该方法是一种安全且经济的临床手段。该模型的优势在于可对一种 readily available 的临床设备进行改造,以实现对小鼠特定目标肌肉收缩的诱导。
方法文章
本文描述了一种针对小鼠前 compartment 肌肉的神经肌肉电刺激(NMES)的啮齿类动物模型,该方法是一种安全且经济的临床手段。该模型的优势在于可对一种 readily available 的临床设备进行改造,以实现对小鼠特定目标肌肉收缩的诱导。
神经肌肉电刺激(NMES)是一种常见的临床治疗手段,广泛用于恢复1、维持2或增强3-5肌肉功能能力。经皮表面刺激骨骼肌时,电流在阴极和阳极之间流动,从而引发运动单位及其周围肌纤维的兴奋。
神经肌肉电刺激(NMES)是一种具有吸引力的研究骨骼肌适应性反应的方法,原因如下。首先,它提供了一种可重复的实验模型,其中多种生理适应已被充分记录,例如肌纤维肥大和肌肉力量增强6、血管生成7-9、生长因子分泌9-11以及肌肉前体细胞的活化12。这些生理反应可通过调节不同的刺激参数进行精确控制(有关Cochrane综述,参见13)。此外,NMES以非选择性、空间固定且时间同步的方式募集运动单位14,从而能够对所有类型的肌纤维均产生治疗效应。尽管在某些临床人群中存在明确的禁忌证,例如外周静脉疾病或恶性肿瘤,但NMES总体上安全且可行,即使对于病情严重和/或卧床患者,以及难以进行高强度运动的人群亦适用。
本文演示了如何改装市售电极,并使用小鼠模型进行神经肌肉电刺激(NMES)的操作流程。该动物模型的优势在于可使用临床现有的设备,并能即时反馈电极放置位置,以诱发目标肌肉的收缩效应。在本研究中,我们将详细描述对小鼠后肢前群肌肉进行刺激的具体操作步骤。
1. 电极制备
2. 动物准备
3. 刺激
4. 典型结果
本文所述的NMES方案已在多种小鼠品系中实施,包括:野生型(B6/10)、B6.SCID和mdx/SCID小鼠。展示了在3至5月龄的mdx/SCID小鼠中,连续4周(共20次)进行NMES的代表性结果。
动物在麻醉状态下通过颈椎脱位实施人道安乐死。取胫前肌组织后立即置于液氮预冷的2-甲基丁烷中速冻,并于-80 °C保存。制备连续横切面冰冻切片(10 μm),贴附于载玻片上。采用标准统计软件包(SPSS,v19.0软件)进行统计分析。首先采用Levene检验评估方差齐性,随后采用独立样本t检验分析NMES组与对照组之间的差异。
采用苏木精-伊红(H&E)染色法,以检测NMES方案是否会导致肌营养不良肌肉的损伤加重。选取一张切片,使用光学显微镜(Nikon Eclipse E800;Nikon,日本)拍摄图像。利用美国国立卫生研究院(NIH)开发的图像分析软件Image J,人工计数肌纤维总数以及细胞核位于中央的肌纤维数量。与对照组相比,接受NMES处理的动物其再生指数(中央核肌纤维数/总肌纤维数)未见显著升高(p=0.802;图1)。这表明,NMES的应用并未加剧肌营养不良动物中所观察到的变性-再生级联反应,因此不太可能引起肌肉损伤的加重。
采用CD31免疫荧光染色以研究为期4周的神经肌肉电刺激(NMES)方案对肌肉血管化的影响。简言之,肌肉切片经4%甲醛固定后,使用5%马血清(HS)进行封闭。切片与大鼠抗小鼠一抗(1:300稀释于5% HS中)孵育,随后用555标记的山羊抗大鼠二抗(1:300稀释于5% HS中)处理。为定量CD31阳性细胞总数,选取一个切片,采用荧光显微镜(Nikon Eclipse E800;日本)拍照。毛细血管总数通过Northern Eclipse软件(Empix Imaging Inc.)手动计数。接受NMES处理的动物组中CD31阳性细胞数量较对照组显著增加(p<0.01;图2),表明所述NMES方案可促进骨骼肌血管生成。
在体收缩功能测试:在完成神经肌肉电刺激(NMES)方案4周后,使用在体测试装置(型号809B,Aurora Scientific Inc,加拿大)、刺激器(型号701C,Aurora Scientific Inc,加拿大)和力传感器(Aurora Scientific Inc,加拿大)对前肌室肌肉进行收缩功能测试。简要而言,通过膝关节外侧的小切口分离麻醉动物的腓神经。随后将小鼠仰卧固定于平台,待测足部置于足板上。测试所用后肢通过胶带在膝部和足部进行固定。通过插入皮下的钩状电极对肌肉进行刺激。以150 Hz频率持续350 ms诱导肌肉强直性收缩,以评估为期4周的NMES方案是否可改善肌肉力量。实验结果按湿肌重量进行标准化处理。与对照组相比,接受NMES处理的动物强直性收缩力提高约30%(p=0.005)(图3),表明所述方案可改善mdx/SCID动物骨骼肌的收缩力量。

图 1. 营养不良(mdx)/免疫缺陷小鼠(4-5个月)骨骼肌的苏木精与伊红染色结果(10倍放大):A)未经处理的对照组,B)经4周神经肌肉电刺激(NMES)后的样本。

图 2. 营养不良(mdx)/免疫缺陷小鼠(4-5个月)骨骼肌中作为骨骼肌血管化标志物的CD31免疫荧光(红色)(20倍放大)A)未处理对照组,B)NMES治疗4周后。

图3. 对照组与接受为期4周NMES治疗动物的前部肌群收缩功能测试。mNm = 毫牛顿·米。点击此处查看高清大图。
这些结果表明,我们建立的小鼠NMES模型可促进骨骼肌血管生成(图2)和肌肉增强(图3),但不会引起骨骼肌损伤(图1)。
需要注意的是,此处所述的刺激参数旨在对前部肌群产生肌肉超负荷效应。与临床情况类似,可根据需要调整电极放置位置以刺激其他肌群,但不同肌群对神经肌肉电刺激(NMES)的反应可能因其肌纤维类型组成不同而有所差异。根据研究设计,可调整NMES的持续时间、治疗总次数以及重复总次数。
与任何实验方案一样,本方法也存在一些需要注意的局限性。在本研究中,刺激作用于腓深神经。然而,在临床实践中,刺激通常施加于运动单元。在动物模型中,刺激神经需要较低的强度即可引发完全的肌肉收缩。本模型的另一个局限性在于,由于动物处于麻醉状态,我们无法获得应用神经肌肉电刺激(NMES)过程中关于舒适度的信息。因此,难以评估临床人群中类似强度刺激的耐受性。然而,我们的组织学结果表明,所描述的NMES模型不会引起肌肉损伤。
开发能够模拟临床常用治疗模式的动物模型,为我们提供了有用的实验工具,有助于更深入地理解细胞和分子对治疗干预的反应。此外,这些模型还可用于开展临床前研究,以优化现有的康复方案并开发新的适应证。
我们无任何利益冲突需要披露。
本工作由美国国立卫生研究院(NIH)物理治疗师和职业治疗师培训资助项目——康复研究综合培训机会(K12 HD055931)、物理治疗基金会以及匹兹堡克劳德·D·皮珀老年美国人独立中心(P30 AG024827)资助。
| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 带分叉焊片端子的向量线绕接柱 | Newark Inc | T68 | |
| 向量电路板 | Newark Inc | 3662-2 | |
| Pomona 跳线 | Newark Inc | P-36-0 | |
| 5 分钟环氧树脂 | VO Baker Co. | 4001 | |
| Spectra 360 电极凝胶 | Milliken Medical | MR41217 | |
| 便携式神经肌肉刺激装置 | EMPI | 300pv |
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