方法文章

一种通过神经肌肉电刺激实现肌肉训练的小鼠模型

DOI:

10.3791/3914

2012年5月9日

本文内容

摘要

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本文描述了一种针对小鼠前 compartment 肌肉的神经肌肉电刺激(NMES)的啮齿类动物模型,该方法是一种安全且经济的临床手段。该模型的优势在于可对一种 readily available 的临床设备进行改造,以实现对小鼠特定目标肌肉收缩的诱导。

摘要

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

神经肌肉电刺激(NMES)是一种常见的临床治疗手段,广泛用于恢复1、维持2或增强3-5肌肉功能能力。经皮表面刺激骨骼肌时,电流在阴极和阳极之间流动,从而引发运动单位及其周围肌纤维的兴奋。

神经肌肉电刺激(NMES)是一种具有吸引力的研究骨骼肌适应性反应的方法,原因如下。首先,它提供了一种可重复的实验模型,其中多种生理适应已被充分记录,例如肌纤维肥大和肌肉力量增强6、血管生成7-9、生长因子分泌9-11以及肌肉前体细胞的活化12。这些生理反应可通过调节不同的刺激参数进行精确控制(有关Cochrane综述,参见13)。此外,NMES以非选择性、空间固定且时间同步的方式募集运动单位14,从而能够对所有类型的肌纤维均产生治疗效应。尽管在某些临床人群中存在明确的禁忌证,例如外周静脉疾病或恶性肿瘤,但NMES总体上安全且可行,即使对于病情严重和/或卧床患者,以及难以进行高强度运动的人群亦适用。

本文演示了如何改装市售电极,并使用小鼠模型进行神经肌肉电刺激(NMES)的操作流程。该动物模型的优势在于可使用临床现有的设备,并能即时反馈电极放置位置,以诱发目标肌肉的收缩效应。在本研究中,我们将详细描述对小鼠后肢前群肌肉进行刺激的具体操作步骤。

方案

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1. 电极制备

  • 裁剪一块 1 cm × 1 cm 的矢量电路板。
  • 使用虎钳固定两根线绕针,使针脚间距约为 3.5 mm,线绕针的分叉端应朝上。
  • 使用尖嘴钳在线绕针约一半长度处将其弯折成 90° 角。
  • 从导线连接点起约 7 cm 处剥除导线绝缘层,露出连接器的铜线部分。
  • 将一根铜线焊接到其中一根线绕针的分叉端,再对另一根线绕针重复相同的焊接步骤。
  • 将热缩管拉至铜线与金针的焊接连接处,以实现绝缘和加固;使用烙铁头加热热缩管使其收缩。
  • 将未焊接的线绕针尖端插入面包板电路板的相邻插孔中。
  • 确保线绕针彼此平行,并穿过面包板,使针尖从板上穿出的距离一致。
  • 将焊接端的针脚嵌入透明环氧树脂中,静置约 10 分钟,或直至完全固化。
  • 重复涂抹环氧树脂,直至针脚和矢量电路板完全被包裹,以增强导线的结构强度并提供应力释放。
  • 使用金属锉刀打磨环氧树脂,以露出金针的尖端。
  • 使用万用表检测,确保两条导线之间无电气短路,并确认导线通路正常。
  • 将 NMES 设备的电极导线连接至双孔母头线缆连接器(Pomona 跳线)。

2. 动物准备

  • 使用2%异氟烷(Abbott Laboratories, North Chicago, IL)与100% O2气体通过吸入法对动物进行麻醉。在整个NMES过程中,动物应保持麻醉状态。
  • 开始NMES方案前,应进行足趾夹捏测试,以确认动物已完全麻醉。
  • 应定期检查动物对刺激的反应,以确保麻醉深度足够。必要时应调整麻醉剂量。应定期评估除被刺激肢体外的其他部位是否出现运动、呼吸深度的变化以及黏膜颜色,以监测麻醉深度。
  • 将动物置于侧卧位。
  • 在眼睛上涂抹眼用润滑剂,以防止手术过程中角膜干燥。
  • 剃除待治疗的后肢区域毛发,并用酒精擦拭。
  • 用3%漂白剂擦拭电极,然后用水冲洗。
  • 在电极放置部位涂抹一层导电凝胶。在整个NMES方案过程中,应根据需要重新涂抹,以确保电极与皮肤之间的电流传导。
  • 应使用加热灯或循环水毯以维持正常的机体核心温度范围。
  • 注意:所有实验程序均已通过匹兹堡大学机构动物照护与使用委员会(IACUC)的审查和批准,并在获得PHS认证及AAALAC International认证的项目和设施中进行。

3. 刺激

  • 电极放置:
    • 为了刺激包括胫骨前肌和趾长伸肌在内的前肌室肌肉,应将表面电极直接放置在动物的腓深神经上,该神经是腓总神经的一个远端分支,位于腓骨头前方稍偏位置。
    • 当刺激引发踝关节完全背屈及足趾完全伸展时,表明电极放置位置正确。相反,若仅有背屈而无足趾伸展,则提示仅胫骨前肌被激活。根据实验设计的不同,这种靶向性的收缩反应可能是理想的。
    • 肌肉收缩分为两个刺激阶段:第一个阶段为自由运动的向心收缩期,持续约0.5秒。在此阶段初期,足爪从静息位置移动至最大背屈和足趾完全伸展状态。第二个阶段为在最大背屈和足趾伸展位置维持的等长收缩。
  • 刺激参数:
    • 本神经肌肉电刺激(NMES)模型采用300 PV Empi多功能电疗仪,该设备提供两个常规NMES通道(见表格)。在本模型中仅使用一个通道。
    • 所用参数包括对称波形、脉冲持续时间为150 μs、频率为50 Hz。刺激时间设定为5秒,包含0.5秒的上升斜坡和0.5秒的下降斜坡,以使肌肉更渐进地适应刺激。在当前方案中,两次收缩之间的间歇时间为10秒,但可根据所需效果进行调整。缩短间歇时间将更快引发肌肉疲劳。这些刺激参数基于临床方案设计,旨在通过神经肌肉电刺激增强肌肉力量,同时避免引起显著的骨骼肌损伤1, 15, 16
    • 小鼠完成两组各10次收缩,组间休息5分钟。
    • 对于成年动物,NMES刺激强度通常从9 mA开始。根据我们的经验,此强度接近不会在刺激后立即引起明显步态障碍的最大起始强度。在后续NMES疗程中,每当动物能够完成20次完整背屈动作时,刺激强度即增加1 mA。
  • 完成刺激方案并从麻醉中恢复后,动物通常表现出正常的步态与姿势。在整个NMES干预过程中,步态应始终保持无异常。

4. 典型结果

本文所述的NMES方案已在多种小鼠品系中实施,包括:野生型(B6/10)、B6.SCID和mdx/SCID小鼠。展示了在3至5月龄的mdx/SCID小鼠中,连续4周(共20次)进行NMES的代表性结果。

动物在麻醉状态下通过颈椎脱位实施人道安乐死。取胫前肌组织后立即置于液氮预冷的2-甲基丁烷中速冻,并于-80 °C保存。制备连续横切面冰冻切片(10 μm),贴附于载玻片上。采用标准统计软件包(SPSS,v19.0软件)进行统计分析。首先采用Levene检验评估方差齐性,随后采用独立样本t检验分析NMES组与对照组之间的差异。

采用苏木精-伊红(H&E)染色法,以检测NMES方案是否会导致肌营养不良肌肉的损伤加重。选取一张切片,使用光学显微镜(Nikon Eclipse E800;Nikon,日本)拍摄图像。利用美国国立卫生研究院(NIH)开发的图像分析软件Image J,人工计数肌纤维总数以及细胞核位于中央的肌纤维数量。与对照组相比,接受NMES处理的动物其再生指数(中央核肌纤维数/总肌纤维数)未见显著升高(p=0.802;图1)。这表明,NMES的应用并未加剧肌营养不良动物中所观察到的变性-再生级联反应,因此不太可能引起肌肉损伤的加重。

采用CD31免疫荧光染色以研究为期4周的神经肌肉电刺激(NMES)方案对肌肉血管化的影响。简言之,肌肉切片经4%甲醛固定后,使用5%马血清(HS)进行封闭。切片与大鼠抗小鼠一抗(1:300稀释于5% HS中)孵育,随后用555标记的山羊抗大鼠二抗(1:300稀释于5% HS中)处理。为定量CD31阳性细胞总数,选取一个切片,采用荧光显微镜(Nikon Eclipse E800;日本)拍照。毛细血管总数通过Northern Eclipse软件(Empix Imaging Inc.)手动计数。接受NMES处理的动物组中CD31阳性细胞数量较对照组显著增加(p<0.01;图2),表明所述NMES方案可促进骨骼肌血管生成。

在体收缩功能测试:在完成神经肌肉电刺激(NMES)方案4周后,使用在体测试装置(型号809B,Aurora Scientific Inc,加拿大)、刺激器(型号701C,Aurora Scientific Inc,加拿大)和力传感器(Aurora Scientific Inc,加拿大)对前肌室肌肉进行收缩功能测试。简要而言,通过膝关节外侧的小切口分离麻醉动物的腓神经。随后将小鼠仰卧固定于平台,待测足部置于足板上。测试所用后肢通过胶带在膝部和足部进行固定。通过插入皮下的钩状电极对肌肉进行刺激。以150 Hz频率持续350 ms诱导肌肉强直性收缩,以评估为期4周的NMES方案是否可改善肌肉力量。实验结果按湿肌重量进行标准化处理。与对照组相比,接受NMES处理的动物强直性收缩力提高约30%(p=0.005)(图3),表明所述方案可改善mdx/SCID动物骨骼肌的收缩力量。

显示肌纤维排列的组织学切片,显微镜图像展示结构差异。
图 1. 营养不良(mdx)/免疫缺陷小鼠(4-5个月)骨骼肌的苏木精与伊红染色结果(10倍放大):A)未经处理的对照组,B)经4周神经肌肉电刺激(NMES)后的样本。

细胞培养物的荧光显微镜图像,显示比较分析中的蛋白质表达水平。
图 2. 营养不良(mdx)/免疫缺陷小鼠(4-5个月)骨骼肌中作为骨骼肌血管化标志物的CD31免疫荧光(红色)(20倍放大)A)未处理对照组,B)NMES治疗4周后。

扭矩-时间曲线;对照组与NMES组;比较肌肉反应;曲线分析;生理学研究。
图3. 对照组与接受为期4周NMES治疗动物的前部肌群收缩功能测试。mNm = 毫牛顿·米。点击此处查看高清大图

讨论

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这些结果表明,我们建立的小鼠NMES模型可促进骨骼肌血管生成(图2)和肌肉增强(图3),但不会引起骨骼肌损伤(图1)。

需要注意的是,此处所述的刺激参数旨在对前部肌群产生肌肉超负荷效应。与临床情况类似,可根据需要调整电极放置位置以刺激其他肌群,但不同肌群对神经肌肉电刺激(NMES)的反应可能因其肌纤维类型组成不同而有所差异。根据研究设计,可调整NMES的持续时间、治疗总次数以及重复总次数。

与任何实验方案一样,本方法也存在一些需要注意的局限性。在本研究中,刺激作用于腓深神经。然而,在临床实践中,刺激通常施加于运动单元。在动物模型中,刺激神经需要较低的强度即可引发完全的肌肉收缩。本模型的另一个局限性在于,由于动物处于麻醉状态,我们无法获得应用神经肌肉电刺激(NMES)过程中关于舒适度的信息。因此,难以评估临床人群中类似强度刺激的耐受性。然而,我们的组织学结果表明,所描述的NMES模型不会引起肌肉损伤。

开发能够模拟临床常用治疗模式的动物模型,为我们提供了有用的实验工具,有助于更深入地理解细胞和分子对治疗干预的反应。此外,这些模型还可用于开展临床前研究,以优化现有的康复方案并开发新的适应证。

披露

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我们无任何利益冲突需要披露。

致谢

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本工作由美国国立卫生研究院(NIH)物理治疗师和职业治疗师培训资助项目——康复研究综合培训机会(K12 HD055931)、物理治疗基金会以及匹兹堡克劳德·D·皮珀老年美国人独立中心(P30 AG024827)资助。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
带分叉焊片端子的向量线绕接柱Newark IncT68
向量电路板Newark Inc3662-2
Pomona 跳线Newark IncP-36-0
5 分钟环氧树脂VO Baker Co.4001
Spectra 360 电极凝胶Milliken MedicalMR41217
便携式神经肌肉刺激装置EMPI300pv

参考文献

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NMES compartment

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