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方法文章

在小鼠脊髓中进行病毒载体的立体定位注射以实现条件性基因操作

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DOI:

10.3791/50313

2013年3月18日

本文内容

摘要

病毒载体可实现靶向基因操作。本文演示一种在小鼠脊髓中进行条件性基因表达或基因剔除的方法,通过立体定位注射将病毒载体注入脊髓背角,此处是初级躯体感觉传入神经与中枢神经系统神经元之间突触联系的重要部位。

摘要

向脑实质内注射病毒载体可实现对中枢神经系统中特定神经元群体或特定区域的条件性基因操作。本文演示了一种立体定位注射技术,可在小鼠脊髓背角实现靶向基因表达或基因沉默。该手术过程简短,仅需切除单个椎骨的椎板,从而实现动物快速恢复及脊柱运动功能不受影响。通过控制低速注射少量病毒载体悬液,并使用带有斜面玻璃套管的微量注射器,可最大限度减少组织损伤。机体对病毒载体的局部免疫反应取决于所用病毒的内在特性;根据我们的经验,当使用重组腺相关病毒时,该反应轻微且持续时间短暂。报告基因(如增强型绿色荧光蛋白)有助于监测病毒载体的空间分布,以及转染效率和细胞特异性。

引言

小鼠中条件性基因操作的先进技术为探索中枢神经系统中的突触通路和功能连接提供了多方面的研究手段。转基因的表达可通过小分子效应物进行调控,例如四环素控制的转录激活因子(tetracycline-controlled transactivator)可被强力霉素(doxycycline)所调节,该系统可被设计为基因转录的抑制子或激活子;此外,他莫昔芬(tamoxifen)可识别雌激素受体中突变的配体结合结构域1。不可逆的转基因修饰通常通过脱氧核糖核酸(DNA)重组酶实现。Cre(causes recombination)和Flp(flippase recombination enzyme)分别催化位于loxP(locus of crossing over, P1)或Frt(flippase recognition target)位点之间的DNA片段发生切除、倒位或易位1。这些技术的应用包括基因的激活或沉默,以及可诱导的核糖核酸(RNA)干扰2。通过条件性表达荧光蛋白或酶报告基因(如β-半乳糖苷酶或碱性磷酸酶),可用于标记神经元并研究其空间分布与连接性3。北美地区(http://www.norcomm.org/index.htm)和欧洲(http://www.knockoutmouse.org/about/eucomm)的大规模诱变项目正在构建一系列小鼠胚胎干细胞克隆文库,这些克隆携带条件性基因靶点和基因捕获元件,最终将覆盖整个小鼠基因组。由这些克隆产生的小鼠可与越来越多的转基因小鼠品系杂交,后者在特定神经元群体特异的启动子或基因座驱动下表达DNA重组酶,从而实现靶向性的基因操作(http://nagy.mshri.on.ca/cre_new/index.php)。

然而,如果缺乏针对特定神经元群体的特异性启动子,或该启动子未在目标区域的所有神经元中表达,则仅依靠遗传靶向技术可能无法将基因操作限制在特定的神经元群体或特定感兴趣区域。在脊髓中,实验设计可能需要将基因操作的空间范围限制在一至两个颅尾向节段内。通过立体定位注射表达Cre或Flp的病毒载体,可将基因重组限制在小鼠脊髓中DNA片段两侧含有loxP或Frt位点(即所谓的floxed或flrted等位基因)的区域。与通过将动物与表达重组酶的小鼠杂交所导致的组成型DNA重排不同,该策略还可实现对基因激活或沉默的时间控制。携带floxed或flrted转基因的病毒载体则为在神经元特异性启动子驱动下表达相应重组酶的小鼠提供了反向基因操作的选择。目前已有多类具有神经元趋向性的重组载体可供使用4。高容量(无壳)腺病毒、腺相关病毒、单纯疱疹病毒和慢病毒是常用的嗜神经病毒载体。根据研究问题选择合适的病毒类型是实验设计中的关键环节,需综合考虑转基因的大小、递送途径、对神经元而非胶质细胞的感染特异性、感染效率以及炎症和毒性副作用等因素4

本文介绍了将病毒载体立体定位注射至脊髓背角的技术,该技术被我们用于疼痛神经生物学研究中的条件性基因调控。脊髓背角接收来自初级躯体感觉神经元(包括伤害性感受神经元)的传入输入。局部中间神经元对信息进行处理后,由投射神经元将信号从背角传递至大脑5。我们展示了在脊髓节段L4水平,利用嗜神经的重组腺相关病毒(rAAV)感染背角神经元,该病毒在组成型活性的巨细胞病毒启动子驱动下表达增强型绿色荧光蛋白(eGfp)。

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方案

所述手术程序已获得哥伦比亚大学机构动物护理与使用委员会(IACUC)的批准。

1. 设备与病毒颗粒悬液的制备

  1. 清洁并消毒设备,对将用于固定第一腰椎(L1)的手术器械和V型缺口棘突进行灭菌。
  2. 拉制并修整玻璃移液管。我们使用的移液管尖端直径为40 μm,并以20°角度修整。对玻璃移液管进行灭菌。
  3. 安装立体定位仪,将微量注射器固定在操纵器上,并将注射器与控制器连接。
  4. 使用压接套件将一根玻璃移液管连接到微量注射器上。
  5. 从微量注射器中取出活塞,用矿物油填充注射器。可在矿物油中加入油红O(1-(2,5-二甲基-4-(2,5-二甲基苯基偶氮)苯基偶氮)-2-萘酚)以增强其可见性。重新插入活塞并将其推至注射器尖端,注意避免产生气泡。
  6. 在生物安全柜中制备病毒颗粒悬液。将冷冻保存的病毒在冰上解冻,使用前用无菌磷酸盐缓冲液稀释至所需颗粒浓度。
  7. 将微量注射器插入注射装置的固定架中。
  8. 将5 μl病毒悬液移液至一小片塑料膜上, 例如 Parafilm。将玻璃移液器尖端插入液滴中,拉动活塞以填充微量注射器。在移液器尖端形成一个小的气泡,以防止堵塞。

2. 椎板切除术

  1. 使用消毒剂擦拭实验台和加热垫,准备手术区域。
  2. 对小鼠进行麻醉。我们采用异氟烷吸入麻醉(诱导时浓度为3%,维持时浓度为2%–3%)。
  3. 在每只眼睛上涂抹润滑剂,以防止手术过程中角膜干燥。
  4. 剃除小鼠从下背部至颈部的毛发,并使用局部抗菌剂(如氯己定或聚维酮碘)与70%乙醇交替擦拭皮肤进行消毒。用手术巾隔离无菌处理后的区域,并在切口部位浸润布比卡因(0.25%,用生理盐水1:10稀释)。
  5. 沿中线在肋骨后端处切开皮肤(2–3 cm),并分离覆盖脊柱的筋膜。
  6. 由于脊髓在出生后发育过程中比椎柱更早停止生长,因此脊髓节段L4位于第一腰椎(L1)下方。L1椎骨位于最后一对肋骨所附着的椎骨的尾侧。通过去除附着在其背侧的小型脊柱肌肉和韧带,识别并暴露L1椎骨。
  7. 用Adson镊子轻轻提起并固定L1椎骨。使用专用的椎板切除镊子去除椎骨的背侧部分(棘突和椎板),暴露脊髓。注意避免损伤脊髓。
  8. 将小鼠转移至立体定位仪中的加热板上。在后续操作过程中持续监测小鼠体温。

3. 注射

  1. 用V形槽钉固定第一腰椎(L1),确保脊柱稳定,防止椎体在呼吸过程中移动。
  2. 将微量注射器移近,使移液尖端位于椎板切除部位上方。缓慢下压推进器,直至观察到病毒悬液从移液尖端流出。使用无菌棉签清除液滴。
  3. 将移液尖端定位在暴露的脊髓最前端区域。将移液尖端置于后正中沟上方中央位置,然后将尖端向侧方移动500 μm。将尖端降至脊髓表面,刺穿硬脊膜;若使用的是无斜面玻璃移液管,可先用带斜面的钢制套管刺穿硬脊膜,再将玻璃移液管尖端插入脊髓300 μm深度。
  4. 以200 nl/min的速率注射1 μl病毒悬液。
  5. 注射结束后,至少等待2分钟,再缓慢撤出移液管。
  6. 在暴露的脊髓最尾端区域重复步骤3.3至3.5,以实现病毒载体在L4脊髓节段的完全分布。两个注射位点分别位于L4节段的头侧和尾侧,以避免对目标区域造成组织损伤。

4. 伤口闭合

  1. 松开固定腰椎 L1 的 V 型槽夹具,将小鼠从立体定位架上取出。
  2. 使用 5.0 Vicryl 线缝合筋膜。闭合的筋膜可覆盖椎板切除部位。
  3. 使用尼龙缝线或外科缝钉闭合皮肤。

5. 术后护理

  1. 将小鼠转移至带有柔软、无碎屑垫料的恢复笼中,侧放以利于舒适呼吸。持续监测动物状态,直至其完全清醒、能够自主活动并开始饮水。
  2. 术后提供为期72小时的镇痛处理,每日皮下注射卡洛芬(5.0 mg/kg)。
  3. 术后恢复期间,前3天每日检查一次,之后每周检查2至3次,直至实验结束。
  4. 手术后7至10天,当伤口完全愈合后,拆除皮肤缝线或钉合钉。
  5. 实验结束后,对动物实施安乐死。

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结果

成功的转染可在注射侧背角的神经元中实现高效的基因表达(图1),而不影响对侧背角、腹角以及背根神经节。

神经组织的荧光显微镜图像,合并图像中显示用于分析的红色和绿色标记。
图 1. 背角神经元的转染。 (A) 在立体定位注射rAAV-eGfp(血清型AAV2/8,109基因组拷贝/μl)两周后,L4脊髓左侧背角中荧光报告基因eGfp(绿色)的表达。神经元经神经元核蛋白(NeuN,红色)免疫染色标记。箭头指示背柱中散在的转染胶质细胞。比例尺,150 μm。(B) 背角内侧约80%的神经元被感染。比例尺,20 μm。免疫染色使用EMD Millipore公司的NeuN单克隆抗体,稀释比例为1:2,000。

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讨论

立体定位病毒载体注射可用于靶向脊髓神经元,以实现多种应用,例如基于跨突触病毒扩散的神经网络示踪6,7或光遗传学解析8、损伤后再生过程中的轴突导向9,10,以及用于预防或治疗神经退行性疾病的基因治疗11,12。病毒载体已被用于脊髓中的基因操作,以研究躯体感觉、运动及自主神经通路9,10,13-15。小鼠是进行脑或脊髓立体定位注射病毒载体研究中最广泛使用的模式生物,但该技术也已应用于其他物种,包括非人灵长类动物16

立体定位法将载体注射至小鼠脊髓是安全的;此处描述的手术过程仅需在注射部位进行一次椎板切除术,因此动物术后脊柱运动不会出现不稳。插管注射及缓慢撤出导管的操作在10分钟内完成,包括皮肤准备和伤口缝合在内的整个手术过程约持续40分钟。术后我们使用卡洛芬(carprofen)——一种非甾体抗炎镇痛药——提供长达72小时的镇痛处理。

为了尽量减少组织损伤,我们采用拉制的玻璃毛细管,其尖端直径为 4...

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披露

作者声明不存在任何竞争性财务利益。

致谢

我们感谢马萨诸塞州查尔斯顿市麻省总医院神经科学中心病毒载体开发与生产部主任 Bakhos A. Tannous 博士为我们提供 rAAV-eGfp 载体,以及 John Whang 提供的技术支持。本研究由美国国立神经疾病与中风研究所资助项目 R01 NS050408(J.S. 负责)支持。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
脊柱基板David Kopf Instruments912
小型动物立体定位仪David Kopf Instruments900
小动物气体麻醉头部固定器David Kopf Instruments923-B
可调式基座安装架David Kopf Instruments982
V型槽尖钉David Kopf Instruments987
小动物温控系统David Kopf InstrumentsTCAT-2LV
阿顿镊Fine Science Tools11006-12
椎板切除镊Fine Science Tools11223-20
UltraMicroPump(一台)配SYS-Micro4控制器World Precision InstrumentsUMP3-1
微量注射器,65RNHamilton7633-01
RN压缩接头,1 mmHamilton55750-01
硼硅酸盐玻璃毛细管World Precision Instruments1B100F-4
微量研磨器NarishigeEG-44

参考文献

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